MathJax.Hub.Config({tex2jax: {inlineMath: [['$','$'], ['\\(','\\)']]}}); 虫草素抗炎作用及机制研究
  天津中医药  2016, Vol. 33 Issue (5): 303-306

文章信息

李晖 , 孙佳瑜 , 廖康汉 , 王喆 , 单爱云
LI Hui , SUN Jia-yu , LIAO Kang-han , WANG Zhe , SHAN Ai-yun
虫草素抗炎作用及机制研究
Anti-inflammatory effect and mechanism study of Cordycepin
天津中医药, 2016, 33(5): 303-306
Tianjin Journal of Traditional Chinese Medicine, 2016, 33(5): 303-306
http://dx.doi.org/10.11656/j.issn.1672-1519.2016.05.12

文章历史

收稿日期: 2016-02-23
虫草素抗炎作用及机制研究
李晖1, 孙佳瑜2, 廖康汉1, 王喆3, 单爱云2     
1. 深圳市南山区医院, 深圳 518067;
2. 深圳市福田区中医院, 深圳 518033;
3. 中南大学湘雅医学院, 长沙 410013
摘要: [目的] 研究虫草素抗炎作用及机制。 [方法] 通过二甲苯致小鼠耳肿胀实验研究虫草素不同剂量(50、100、200 mg/kg)对耳肿胀的抑制作用,在细胞水平研究虫草素(12.5、25、50 μmol/L)对诱导型一氧化氮合酶(iNOS)和环氧酶-2(COX-2)表达和一氧化氮(NO)和前列腺素E2(PGE2)产生的影响。 [结果] 虫草素(200 mg/kg)能够抑制二甲苯致小鼠耳肿胀(P<0.05)和耳片中一氧化氮(NO)和前列腺素E2(PGE2)的产生(P<0.05)。在细胞水平虫草素(25、50 μmol/L)能够抑制诱导型一氧化氮合酶(iNOS)和环氧酶-2(COX-2)表达(P<0.05),一氧化氮(NO)和前列腺素E2(PGE2)的产生(P<0.05)。 [结论] 虫草素具有抗炎作用。
关键词: 虫草素     抗炎     一氧化氮     前列腺素E2     诱导型一氧化氮合酶     环氧酶-2    

虫草素即3’-脱氧腺苷(3’-deoxyadenosine)为核苷酸的衍生物,属于嘌呤碱,天然存在于冬虫夏草和蛹虫草(北虫草)中,是主要活性成分,为白色针片状结晶,其分子量为251.24。由苏格兰科学家Cunningham等在1951年首次从蛹虫草原浆液中分离得到[1],自从虫草素发现以来,国内外学者对其进行广泛研究,发现虫草素具有广泛药理作用和生物活性,研究中发现虫草素具有抗肿瘤、抗病毒、抗菌等多种药理作用[2-7],对于虫草素的研究与开发,一直是国内外学者研究的热点,笔者主要通过建立体内外炎症模型研究虫草素抗炎作用和相应机制。

1 实验药品、材料与动物 1.1 药品与试剂主要化学药品和试剂

虫草素(C3394,Sigma公司,美国),脂多糖(055:B5 L4005 sigma公司美国),前列腺素E2检测试剂盒(minneapolis,MN,美国),一氧化氮检测试剂盒(南京建成),COX-2和iNOS一抗(CST,美国),二抗和β-actin (Santa cruz,美国),DMEM细胞培养液(Corning,美国),胎牛血清(Hyclone,美国)

1.2 实验动物与细胞

BALB/c小鼠,50只,体质量18~22 g,广东省医学实验动物中心提供。饲养环境为SPF级。随机分笼饲养。巨噬细胞RAW264.7细胞购买于协和医科大学细胞库。

2 实验方法 2.1 实验分组

将50只BALB/c小鼠随机分为五组,分别为对照组、阳性药物组、虫草素高、中、低剂量组,给药途径为腹腔注射,对照组给等体积的生理盐水、阳性药物为赖氨匹林给药剂量为100 mg/kg,虫草素高、中、低给药分别为50、100、200 mg/kg,虫草素超声溶解在生理盐水中,每日给药1次,连续给药7 d。

2.2 二甲苯致小鼠耳肿胀

各组小鼠末次给药后0.5 h,用二甲苯(200 μL/耳)均匀涂抹于小鼠右耳廓内外两侧致急性炎症,20 min后用小鼠耳廓打孔器将小鼠左右耳冲下等面积耳片,称质量后以自身的右左耳质量之差表示肿胀度。

肿胀度=自身右耳片质量-自身左耳片质量

2.3 耳片组织中NO和PGE2的含量测定

将各组冲下来的耳片组织液氮冷冻后加入适量PBS仔细研磨,低温离心取上清[8],分别检测研磨后组织上清液中NO和PGE2的含量。

2.4 虫草素对NO和PGE2产生的影响

将RAW264.7细胞按密度5×106/孔平均铺于6孔板中,24 h后将不同浓度虫草素(12.5、25、50 μmol/L)和LPS(2 μg/mL)共孵育12 h,取细胞上清液,测其上清液中NO和PGE2的含量[8],测定每孔细胞总蛋白量作为对比。

2.5 虫草素对iNOS和COX-2表达的影响

将RAW264.7细胞按密度5×106/mL平均铺于6 cm平皿中,24 h后将不同浓度虫草素(12.5、25、50 μmol/L)和LPS(2 μg/mL)共孵育12 h后,提取每皿细胞总蛋白用免疫印迹检测iNOS和COX-2的表达情况[9]

3 数据处理

实验数据均以均数±标准差(x±s)表示,用ANOVA进行统计学检验,组间比较P<0.05视为差异有统计学意义。

4 实验结果 4.1 虫草素对小鼠耳肿胀的影响

二甲苯致小鼠耳肿胀实验中,阳性药物赖氨匹林100 mg/kg给药后小鼠耳肿胀度为(6.21±1.81) mg(P<0.01);虫草素低、中、高3个剂量(50、100、200 mg/kg)后小鼠耳肿胀度分别为(12.34±1.58) mg、(11.67±1.73) mg和(6.92±1.82) mg(P<0.05);虫草素高剂量组与模型组比较有统计学差异,与阳性药物赖氨匹林作用大致相当,但中低剂量组对其肿胀没有抑制作用,见图 1

图 1 虫草素对二甲苯致小鼠耳肿胀的抑制作用 Fig. 1 Inhibitory effects of Cordycepin on xylene-induced ear swelling in mice 与模型组比较,*P约0.05,**P约0.01;x±sn=10
4.2 虫草素对小鼠耳片中NO和PGE2含量的影响

取耳片组织匀浆后上清液,检测上清液中的NO和PGE2含量,实验结果提示,腹腔注射赖氨匹林100 mg/kg后小鼠耳片中NO的含量为(8.14±1.35) μmol/g(P<0.05),PGE2的含量为(122.45±8.72) mg/L(P<0.01);虫草素低、中、高3个剂量(50、100、200 mg/kg)腹腔注射后小鼠耳片中NO分别为(14.25±1.81) μmol/g、(13.13±1.25) μmol/g和(9.15±1.67) μmol/g(P<0.05),见图 2,PGE2的含量分别为(238.52±13.54) mg/L、(222.17±10.12) mg/L、(132.15±12.17) mg/L(P<0.05)(见图 3),虫草素低、中剂量组对NO和PGE2的影响与模型组比较没有统计学差异,高剂量组与阳性药物大致相当。

图 2 虫草素对小鼠耳片一氧化氮的抑制作用 Fig. 2 Inhibitory effects of Cordycepin on NO production in mice ear 与正常组比较,###P约0.001;与模型组比较,*P约0.05,**P约0.01;x±sn=10
图 3 虫草素对小鼠耳片前列腺素E2的抑制作用 Fig. 3 Inhibitory effects of Cordycepin on PGE2 production in mice ear 与正常组比较,###P约0.001;与模型组比较,**P约0.01,*P约0.05;x±sn=10
4.3 虫草素对细胞NO和PGE2产生的影响

LPS刺激RAW264.7细胞后,NO和PGE2的含量分别为(45.26±2.53) μmol/L和(90.96±2.68) mg/L与正常组比较有统计学差异(P<0.001)。虫草素3个剂量(12.5、25、50 μmol/L)给药后NO的含量分别为(40.7±2.35) μmol/g、(29.35±2.18) μmol/g(P<0.05)和(22.13±2.95) μmol/g(P<0.01),低剂量组的虫草素与模型组比较没有统计学差异(见图 4);PGE2的含量分别为(88.27±2.93) mg/L、(60.97±2.51) mg/L(P<0.05)和(50.13±2.62) mg/L(P<0.05),低剂量组的虫草素与模型组比较无统计学差异(见图 5)。

图 4 虫草素对RAW264.7细胞一氧化氮产生抑制作用 Fig. 4 Inhibitory effects of Cordycepin on NO production in RAW264.7 macrophages 与正常组比较,###P约0.001;与模型组比较,*P约0.05,**P约0.01;x±sn=10
图 5 虫草素对RAW264.7细胞前列腺素E2产生抑制作用 Fig. 5 Inhibitory effects of Cordycepin on PGE2 production in RAW264.7 macrophages 与正常组比较,###P约0.001;与模型组比较,*P约0.05;x±sn=10
4.4 虫草素对细胞培养iNOS和COX-2表达的影响

LPS刺激RAW264.7细胞建立细胞炎症模型,其iNOS和COX-2表达量与正常组比较有统计学差异(P<0.001)。不同浓度的虫草素(12.5、25、50 μmol/L)与LPS共刺激RAW264.7细胞后,中高剂量组与LPS刺激的模型组比较有统计学差异(P<0.05),结果提示虫草素能够抑制与炎症相关的iNOS和COX-2蛋白的表达。见图 6图 7

图 6 RAW264.7细胞虫草素对iNOS表达的影响 Fig. 6 Effects of Cordycepin on iNOS expression in RAW264.7 macrophages 与正常组比较,###P约0.001;与模型组比较,*P约0.05;x±sn=3
图 7 RAW264.7细胞虫草素对COX-2表达的影响 Fig. 7 Effects of Cordycepin on COX-2 expression in RAW264.7 macrophages 与正常组比较,###P约0.001;与模型组比较,*P约0.05,**P约0.01;x±sn=3
5 讨论

虫草素又称蛹虫草菌素,是冬虫夏草和蛹虫草里的活性成分,也是第一个从真菌中分离出来的核苷类抗生素,具有抗肿瘤、抗病毒、抗菌和调节免疫等多种生物活性[10],自从虫草素发现以来,其广泛的药理作用和生物活性成为国内外研究的热点,开发前景广阔。炎症是机体对于致炎因子的防御性反应,炎症细胞和炎症介质参与的一些列的病理生理反应,在炎症反应中毛细血管通透性增加,炎性细胞趋化游走,炎性介质释放[11]。在炎症反应中,NO和PGE2是重要的炎性介质,参与和介导炎性反应,过量的产生NO和PGE2都会加重炎症反应对机体的损伤。研究认为NO是体内重要的细胞因子,参与包括有血管舒张、血小板聚集、神经传递、抗癌抗菌等过程,尤其是在炎症反应中能够介导产生炎症因子,如肿瘤坏死因子-α、白细胞介素-1等,具有细胞毒作用加剧炎症反应[12-13],PGE2是重要的炎症介质之一,在炎症早期,PGE2能够促进血管舒张和增加神经对疼痛的敏感性,会增加炎症组织水肿和疼痛,同时也会增加其他炎症介质的作用如缓激肽的作用[14-15],目前普遍认为NO和PGE2均参与炎症反应,加重炎症反应对机体的损伤,与急慢性炎症有密切的关系[16-17],因此,抑制NO和PGE2的产生能够抑制炎症反应,减少炎症对机体的损伤,是抗炎的主要途径之一。iNOS和COX-2是产生NO和PGE2的限速酶[9],抑制iNOS和COX-2蛋白的表达,能够抑制了NO 和PGE2的产生,发挥抗炎作用。本研究中通过二甲苯诱导小鼠耳肿胀建立急性炎症模型,给予浓度梯度虫草素发现能够抑制小鼠的耳肿胀以及炎性组织中NO和PGE2的产生,提示虫草素具有抑制炎症的作用,同时在RAW264.7细胞上,用LPS刺激建立细胞炎症模型,给予虫草素,实验结果提示虫草素能够抑制炎性相关蛋白iNOS和COX-2的表达和NO和PGE2的产生,综上所述,提示虫草素具有抗炎作用,虫草素的抗炎作用可能是通过抑制iNOS 和COX-2的表达和相应的NO 和PGE2的介导的。本实验研究表明虫草素具有抗炎的作用,这为虫草素的进一步的研究与开发提供了科学依据。

参考文献
[1] 余伯成, 唐永范, 唐亮, 等. 虫草素的药理作用研究进展[J]. 现代药物与临床,2011,265 (5) : 349–352
[2] Kodama EN, McCaffrey RP, Yusa K, et al. Antileukemic activity and mechanism of action of cordycepin against terminal deoxynucleotidal transferase-positive (TdT+) leukemic cells[J]. Biochem Pharmacol,2000,59 (3) : 273–281
[3] 李婧, 何肇晴, 龚皓, 等. 国产虫草素对HeLa细胞 MMP-9、TIMP-1 及 TIMP-1 mRNA 表达的调节[J]. 现代肿瘤医学,2009,17 (9) : 1615–1618
[4] Xu FL, Lee YL, Tsai WY, et al. Effect of cordycepin on Hantaan virus 76-118 infection of primary human embryonic pulmonary fibroblasts-characterization of apoptot ic effects[J]. Acta Virol,2005,49 (3) : 183–193
[5] Nakamura K, Yoshikawa N, Yamaguchi Y, et al. Antitumor effect of cordycepin (3'-deoxyadenosine) on mouse melanoma and lung carcinoma cells involves adenosine A3 receptor stimulation[J]. Anticancer Res,2006,26 (IA) : 43–48
[6] 苏哈道尼克 R.J., 谢 其明. 核苷类抗菌素[M]. 北京: 科学出版社, 1982 : 476 .
[7] Kim HG, Shrestha B, Lim SY, et al. Cordycepin inhibits lipopoIysac charide induced inflammation by the suppression of NF-kappa B through Akt and p38 inhibitionin RAW 264. 7 macrophage cells[J]. Eur J Pharmacol,2006,545 (2-3) : 192
[8] Huang MT, Liu Y, Ramji D, et al. Inhibitory effects of black tea theaflavin derivatives on12-O-tetradecanoylphorbol-13-acetate-induced inflammation and arachidonic acid metabolism in mouse ears[J]. Molecular Nutrition and Food Research,2006 : 115–122
[9] Zhang Bo, Yan Lingdi, Zhou Peilan, et al. CHP1002, a novel andrographolide derivative, inhibits pro-inflammatory inducible nitric oxide synthase and cyclooxygenase-2 expressions in RAW264.7 macrophagesvia up-regulation of heme oxygenase-1 expression[J]. International Immunopharmacology,2013 : 289–295
[10] 黄冕, 张松. 虫草素生理功效的研究进展[J]. 菌物研究,2010,8 (4) : 234–238
[11] Zeng HW, Liu XH, Dou SS, et al. Huang-Lian-JieDu-Tang exerts anti-inflammatory effects in rats through inhibition of nitric oxide production and eicosanoid biosynthesis via the lipoxygenase pathway[J]. Journal of Pharmacy and Pharmacology,2009 : 1699–1707
[12] 周武庆, 郑家润. 一氧化氮在炎症和免疫调节中的作用[J]. 国外医学·皮肤性病学分册,1999,25 (4) : 233–235
[13] Wanda N, Anne GB, Daniele CN, et al. Nitric oxide enhances Th9 cell differentiation and airway inflammation[J]. Nat Commun,2014 : 4575
[14] Masako N, Daniel WR. Multifaceted roles of PGE2 in inflammation and cancer[J]. Semin Immunopathol,2014,35 (2) : 123–137
[15] Kalinski P. Regulation of immune responses by prostaglandin E2[J]. J Immunol,2012,188 (1) : 21
[16] 吴洋, 王洋, 张瑶, 等. 苦参碱对脂多糖诱导肠组织炎症小鼠血清和组织NO及ADMA代谢通路的影响[J]. 中国中药杂志,2014,39 (12) : 2318–2321
[17] 陈兰英, 王昌琴, 刘荣华, 等. 芍药甘草汤对角叉菜胶诱导的炎症相关指标时序性变化研究[J]. 中国实验方剂学杂志,2014,20 (4) : 115–118
Anti-inflammatory effect and mechanism study of Cordycepin
LI Hui1, SUN Jia-yu2, LIAO Kang-han1, WANG Zhe3, SHAN Ai-yun2     
1. Shenzhen Nanshan District Hospital, Shengzhen 518067, China;
2. Shenzhen Futian District Traditional Chinese Medicine Hospital, Shengzhen 518033, China;
3. Central South University Xiangya School of Medicine, Changsha 410013, China
Abstract: [Objective] To study the anti-inflammatory effect of Cordycepin. [Methods] By Xylene induce ear swelling test in mice, the inhibition of Cordycepin (50, 100, 200 mg/kg)was evaluated for ear swelling. At the cellular level, the effect of Cordycepin(12.5, 25, 50 μmol/L)was evaluated for iNOS and COX-2 expression, NO and PGE2 production. [Results] Cordycepin(200 mg/kg)inhibited ear swelling of mice (P<0.05), NO and PGE2 production in mouse ear piece(P<0.05). At the cellular model, Cordycepin (25, 50 μmol/L)inhibited iNOS and COX-2 expression(P<0.05),NO and PGE2 production(P<0.05). [Conclusion] Cordycepin have anti-inflammatory effect.
Key words: Cordycepin     anti-inflammation     NO     PGE2     iNOS     COX-2