天津中医药  2017, Vol. 34 Issue (9): 617-620

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曲怡, 李阳, 王建波, 张立德
QU Yi, LI Yang, WANG Jian-bo, ZHANG Li-de
补阳还五汤对高血压前期大鼠T淋巴细胞亚群的影响
Effect of Buyang Huanwu decoction on the T lymphocyte subsets of prehypertension rats
天津中医药, 2017, 34(9): 617-620
Tianjin Journal of Traditional Chinese Medicine, 2017, 34(9): 617-620
http://dx.doi.org/10.11656/j.issn.1672-1519.2017.09.14

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收稿日期: 2017-06-25
补阳还五汤对高血压前期大鼠T淋巴细胞亚群的影响
曲怡, 李阳, 王建波, 张立德     
辽宁中医药大学中医脏象理论及应用教育部重点实验室, 沈阳 110847
摘要:[目的]通过观察补阳还五汤对高盐所致高血压前期大鼠T淋巴细胞亚群比例及γ-干扰素(INF-γ)、肿瘤坏死因子-α(TNF-α)的影响,探讨补阳还五汤在调节高血压前期T细胞免疫中的作用机制。[方法]选取7周龄盐敏感大鼠(DS)与盐抵抗大鼠(SS)各20只,SS大鼠随机分为正常组和正常给药组,DS大鼠随机分为模型组和治疗组。各组大鼠适应性喂养后,改用高盐饲料喂养,同时监测大鼠尾动脉收缩压,待其血压值升高至120~139/80~89 mmHg(1 mmHg=0.133 kPa)这一范围时,确定为高血压前期大鼠模型,并以补阳还五汤灌胃治疗。治疗结束后大鼠腹主动脉取血,以流式细胞术检测全血中T淋巴细胞CD4+与CD8+的百分率,并计算CD4+/CD8+的比值。采用酶联免疫吸附测定(ELISA)方法检测血清中INF-γ、TNF-α的含量。[结果]补阳还五汤可以下调CD4+T淋巴细胞及CD8+T淋巴细胞百分率,上调CD4+/CD8+的比值,降低TNF-α、INF-γ的含量。[结论]补阳还五汤可能是通过下调CD4+T淋巴细胞与CD8+T淋巴细胞的百分率以及INF-γ、TNF-α细胞因子的表达,改善高血压前期机体T细胞免疫功能及其炎症反应,延缓高血压前期的发展进程。
关键词补阳还五汤    盐敏感大鼠    高血压前期    T淋巴细胞亚群比例    

自从美国高血压预防治疗指南(JNC7)提出“高血压前期”概念后[1],高血压前期逐渐为人们所关注,De Marco等[2]研究发现高血压前期人群4 a后进展至高血压的比例为38%,孙佳艺等[3]对国内35~64岁人群10 a的跟踪调查发现高血压前期进展至高血压的比例为52.6%。基于近年来中国流行病学、临床实践以及对高血压病的研究,以高盐为代表的环境因素已成为高血压前期[血压120~139/80~89 mmHg(1 mmHg=0.133 kPa,下同)]的主要危险因素[4]。因此,在高血压前期进行干预,从调控环境因素入手,将血压防治重心前移,有望成为延缓高血压病发生和发展的一种新手段。

目前,中医还没有关于高血压前期的辨证分型标准和有效的治疗方法,但有调查表明,大部分高血压前期患者已有神疲乏力、四肢困倦、腹胀体胖、少气懒言、头晕目眩、舌淡胖、苔白腻等气虚的症状[5-6], 根据“盐者胜血”的中医理论[7-9],以及中医治未病的思想[10-11],笔者选用具有“补气活血,祛瘀通络”功效的补阳还五汤进行治疗。本实验采用公认的高盐所致高血压作为环境因素诱导的Dahl盐敏感大鼠复制高血压前期模型,研究大鼠血液中T淋巴细胞亚群CD4+和CD8+的比例与肿瘤坏死因子-α(TNF-α)、γ-干扰素(INF-γ)的含量。通过观察T淋巴细胞亚群CD4+与CD8+淋巴细胞比值、TNF-α、INF-γ的含量变化,探讨高血压前期与机体免疫功能相关性,并以期阐释补阳还五汤调节机体T细胞的免疫功能,改善血压高值状态的作用机制。

1 材料与方法 1.1 实验动物

选用7周龄雄性盐敏感大鼠(DS)与盐抵抗大鼠(SS),各20只,共40只。许可证编号:SCXK(京)2012-0001,动物由北京维通利华实验动物技术有限公司提供。

1.2 药物与试剂

补阳还五汤(黄芪30 g,赤芍4.5 g,川芎3 g,当归6 g,地龙3 g,桃仁3 g,红花3 g),购于辽宁省中医院中药局;大鼠外周血淋巴细胞分离液(天津市灏洋生物制品科技有限责任公司);CD3/CD8/CD4检测试剂盒(美国BD公司BD PharmingenTM);大鼠INF -γ酶联免疫吸附测定(ELISA)试剂盒(上海艾莱萨生物科技有限公司);大鼠TNF-α ELISA试剂盒(上海艾莱萨生物科技有限公司)。

1.3 仪器

FACSAria Ⅲ流式细胞仪(美国BD医疗器械有限公司);智能无创血压计(BP-2010A日本);多功能酶标仪(SpectraMax I3奥地利Molecular Devices公司)。

2 方法 2.1 动物分组与造模

选取7周龄DS大鼠与SS大鼠各20只,SS大鼠随机分为正常组和正常给药组,DS大鼠随机分为模型组和治疗组。各组大鼠在SPF级动物实验中心以室温18~23 ℃、相对湿度45%~55%、自由饮水、普通饲料(由辽宁本溪长生生物技术有限公司提供)进食的条件下适应性喂养1周后,改用8%氯化钠(NaCl)高盐饲料(由北京科奥协力饲料有限公司提供)喂养。在高盐喂食期间,每日采用大鼠智能无创血压计监测大鼠尾动脉收缩压,12 d后其血压值升高至120~139/80~89 mmHg时,确定为高血压前期大鼠模型。

2.2 干预方法

补阳还五汤:黄芪30 g,赤芍4.5 g,川芎3 g,当归6 g,地龙3 g,桃仁3 g,红花3 g,以上为成人1日剂量,共52.5 g。按照每千克体质量大鼠的给药量为人的6.3倍换算,给药量为0.55 g。将补阳还五汤水提浓缩至0.55 g/mL后,装入药瓶中,置于4 ℃冰箱保存备用,用前加热至37 ℃。正常给药组和模型给药组大鼠每天灌胃1次,连续治疗5周。正常组和模型组灌服等量蒸馏水,方法同上。

2.3 标本取材

SS和DS大鼠治疗结束后,每组大鼠禁食不禁水12 h后,腹腔注射20%氨基甲酸乙酯溶液,剂量按照0.4 mL/100 g给药,待其完全麻醉后,固定于实验台上,用0.5%碘伏消毒大鼠腹部皮肤,沿腹中线迅速打开腹腔,取腹主动脉新鲜血液2 mL,抽入含有肝素钠的抗凝采血管中,上下反复颠倒8~10次,使血液与肝素钠充分混匀,6 h内采用流式技术上机处理。

2.4 检测方法 2.4.1 流式细胞术检测大鼠全血中CD4+与CD8+的百分率

1)血液中单细胞悬液的制备:取12支15 mL离心管,分别加入2 mL大鼠淋巴细胞分离液。将样本血液缓慢加在分离液的液面上,18~22 ℃,1 800 r/min离心15 min。离心后吸出上层分离液(包含淋巴细胞的细胞层),弃去剩余液体。缓慢吸取分离液层及淋巴细胞层置转移至新的5 mL离心管内。加入3 mL细胞洗涤液混匀。1 800 r/min离心15 min,弃上清,再加入3 mL细胞洗涤液重悬所得细胞,1 800 r/min离心15 min,弃上清,重复以上步骤后以0.05 mL磷酸液缓冲液(PBS)后续实验所需相应液体重悬所得细胞。2)样品制备:取12支流式上样管,制备好加完50 μL PBS的单细胞悬浮液并进行编号,分为4组,每组3管样品;依次加入单标记的CD4+、CD8+荧光抗体各20 μL,涡旋均匀。室温避光孵育20 min;每管分别加入2 mL PBS,混合均匀,300 g离心5 min,弃上清;每管再分别加入0.6 mL PBS涡旋混匀,4 ℃避光1 h内上机检测。3)流式细胞术检测T淋巴细胞中CD4+与CD8+的百分率:创建新实验的12个采集管命名;选中采集管,设置参数,仅保留与本实验相关的荧光参数,荧光参数选择对数,散射光参数选择线性,参数均选择A面积信号;调电压,切阈值,设门;调自动补偿;进行检测统计。

2.4.2 ELISA方法检测大鼠血清中TNF-α、INF-γ的含量

设置标准品孔和样本孔,配置不同浓度的标准品并向不同标准品孔中加入标准品50 μL,样品孔加入40 μL样品稀释液与10 μL样品即血清,空白孔不加;用封板膜封住反应孔,37 ℃水浴30 min;弃去液体,用洗涤液反复洗涤3次;各孔加入酶标试剂50 μL,37 ℃避光30 min;再次洗涤3次;每孔加入A显色剂50 μL,B显色剂50 μL,37 ℃避光显色15 min;加入终止液50 μL,15 min内在450 nm波长测定各孔OD值;通过标准曲线方程计算样品浓度。

2.5 统计分析

采用SPSS 19.0统计软件对实验数据进行分析,全部数据先进行正态性检验及方差齐性检验,再进行单因素方差分析。组间两两比较方差齐采用LSD法分析。结果以均数±标准差(x±s)表示,P<0.05认为有统计学差异。

3 实验结果 3.1 各组大鼠全血中CD4+/CD8+的比值

与正常组相比,模型组大鼠血中CD4+/CD8+的比值下降,具有差异性(P < 0.05);与模型组相比较,治疗组大鼠血中CD4+/CD8+的比值升高,具有统计学差异(P < 0.05)。见表 1图 1

表 1 各组大鼠全血中CD4+、CD8+细胞百分率以及CD4+/CD8+比值(x±s Tab. 1 CD4+, CD8+ cell percentage in blood and CD4+/CD8+ ratio of rats in each group(x±s)
组别 样品数 CD4+(%) CD8+(%) CD4+/CD8+
正常组 3 45.50±1.48 19.03 ±0.45 2.50±0.04
模型组 3 47.85±2.96 22.06±0.71 2.12±0.12*
治疗组 3 34.81±5.15 14.03±0.43 2.48±0.32#
正常给药组 3 45.25±2.03 20.10±0.12 2.35±0.29#
注:与正常组比较,*P < 0.05;与模型组比较,#P < 0.05。
图 1 各组大鼠CD4++、CD8+流式散点图 Fig. 1 CD4+, CD8+ flow type scatter plotn of rats in each group
3.2 各组大鼠血清中INF-γ、TNF-α含量

与正常组相比,模型组大鼠血清中INF-γ、TNF-α的含量升高,具有差异性(P < 0.05);与模型组相比较,治疗组大鼠血清中INF-γ、TNF-α含量降低,具有统计学差异(P < 0.05)。见表 2

表 2 各组大鼠血清中INF-γ、TNF-α的含量(x±s Tab. 2 Contents of INF-γ、TNF-α in serum of rats in each group(x±s)
ng/L
组别 动物数 INF-y TNF-a
正常组 10 1 242.47±233.14 233.53±27.21
模型组 10 1 495.44±206.21* 328.63±29.16*
治疗组 10 1 299.96±166.03# 259.15±38.19#
正常给药组 10 1 247.96±125.23# 231.98±42.60#
注:与正常组比较,*P < 0.05;与模型组比较,#P < 0.05。
4 讨论

高血压前期是介于正常血压与高血压之间的阶段,没有明显的可查症状,既是属于“病虽未成,已有征兆”的未病状态,又是血压从正常高值到高值的关键过渡期。《黄帝内经》中提出了“盐者胜血”的理论,即高盐饮食或过食食盐可以伤及血脉,导致血液运行不畅,容易引起血脉的瘀滞[12],加之多数高血压前期患者在这一状态下又出现了气虚的症状,气虚与血瘀并见,与补阳还五汤方证相合。另有研究表明,在这一时期机体免疫细胞数量发生改变,尤其是血液中白细胞(WBC)计数升高[13],而补阳还五汤可以减少自身免疫性脑脊髓炎脾脏的CD4+ IFN-γ+T细胞,增加CD4+CD25+、CD4+IL-10+ T细胞数量,抑制TNF-α、IFN-γ等炎性因子的释放,具有促进炎性Th1细胞转化为抗炎的Th2型及调节性T细胞, 抑制炎性反应, 降低T细胞趋化因子的表达的作用[14]

已经研究证实,免疫系统异常是引起血压升高的重要机制之一[15-16],T淋巴细胞作为主要的淋巴细胞,在机体细胞免疫的过程中发挥着重要作用。成熟的T细胞按CD表型不同分为CD4+T淋巴细胞和CD8+T淋巴细胞两大类[17]。活化的CD4+T淋巴细胞的主要功能是产生细胞因子产生免疫应答或调节免疫应答。如CD4+T淋巴细胞亚群中的Th1细胞可分泌INF-γ、TNF-α等细胞因子。INF-γ可以促进Th1细胞分化以及内皮细胞黏附因子的表达,抑制Th2细胞分化[18]。TNF-α通过促进血管平滑肌细胞迁移与增殖,改变血管通透性,同时介导多条与炎症有关的信号通路,发生炎症反应[19]。活化的CD8+T淋巴细胞最突出的作用是特异性杀伤靶细胞,因此又被称为细胞毒性T细胞。机体生理状态下CD4+/ CD8+两者保持一定比例,会处于相对平衡稳定的状态。当他们比例失调时,会引起机体一系列的病理生理改变[20]

本实验研究结果表明,与正常组比较,模型组大鼠血液中CD4+T与CD8+T淋巴细胞百分比增加,CD4+/CD8+比值下降,说明高血压前期大鼠机体T淋巴细胞亚群比例失调,免疫功能紊乱。血清中INF-γ与TNF-α的含量上升,提示由于大鼠T淋巴细胞亚群比例的异常变化,引起Th1细胞分泌的INF-γ与TNF-α等炎症因子分泌增多,可能辅助CTL、NK细胞、巨噬细胞的活化和增殖,促进Th1细胞或相关内皮细胞表达黏附因子,亦或激活了由TNF-α介导的信号通路,加强了炎症反应程度。补阳还五汤干预后,治疗组大鼠CD4+T与CD8+T淋巴细胞百分比下降,CD4+/CD8+比值上升,INF-γ与TNF-α的含量下降,表明补阳还五汤可能是通过调节CD4+T与CD8+T淋巴细胞百分比CD4+/CD8+T淋巴细胞比例,改善机体免疫能力,抑制INF-γ与TNF-α炎性因子的分泌以及由他们导致的病理生理过程,延缓高血压前期的发展进程。

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Effect of Buyang Huanwu decoction on the T lymphocyte subsets of prehypertension rats
QU Yi, LI Yang, WANG Jian-bo, ZHANG Li-de     
Key Laboratory of Ministry of Education for Traditional Chinese Medicine Viscera-State Theory and Applications, Liaoning University of Traditional Chinese Medicine, Shenyang 110847, China
Abstract: [Objective] To investigate the effect of Buyang Huanwu decoction on the T lymphocyte subsets of prehypertension rat and expression of associated cell factor INF-γ, TNF-α. [Methods] The 20 male salt sensitive rats (DS) of 7 weeks were selected and randomly divided into normal group and normal administration group. The 20 male salt resistant rats(SS) of 7 weeks were selected and randomly divided into model group and treatment group. After one week of adaptive feeding, rats were fed by 8% high-salt feed began to make the model, systolic arterial pressure(SAP) of tail was detected at the same time. When the SAP was at the range of 120~139/80~89 mmHg (1 mmHg=0.133 kPa), the model was successfully established, and rats in treatment group and normal administration group treated with Buyang Huanwu decoction gavage. Abdominal aortic blood of all the rats was taken after the end of the treatment. Flow cytometer was used to the percent of CD4+ T lymphocytes and CD8+ T lymphocytes, and the ratio of CD4+/CD8+ was calculated. ELISA method was used to detect the content of INF-γ and TNF-α in serum. [Results] Buyang Huanwu decoction can down the percent of CD4+ T lymphocytes and CD8+ T lymphocytes, increase the ratio of CD4+/CD8+ and decrease the contents of INF-γ and TNF-α. [Conclusion] Buyang Huanwu decoction can improve the body's immune function and inflammation to delay the progress of prehypertension by decreasing the percent of CD4+ T lymphocytes and CD8+ T lymphocytes and the expression of associated cell factor INF-γ, TNF-α probably.
Key words: Buyang Huanwu decoction     salt sensitive rat     prehypertension     the percent of T lymphocyte subsets