文章信息
- 曲怡, 李阳, 王建波, 张立德
- QU Yi, LI Yang, WANG Jian-bo, ZHANG Li-de
- 补阳还五汤对高血压前期大鼠T淋巴细胞亚群的影响
- Effect of Buyang Huanwu decoction on the T lymphocyte subsets of prehypertension rats
- 天津中医药, 2017, 34(9): 617-620
- Tianjin Journal of Traditional Chinese Medicine, 2017, 34(9): 617-620
- http://dx.doi.org/10.11656/j.issn.1672-1519.2017.09.14
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文章历史
- 收稿日期: 2017-06-25
自从美国高血压预防治疗指南(JNC7)提出“高血压前期”概念后[1],高血压前期逐渐为人们所关注,De Marco等[2]研究发现高血压前期人群4 a后进展至高血压的比例为38%,孙佳艺等[3]对国内35~64岁人群10 a的跟踪调查发现高血压前期进展至高血压的比例为52.6%。基于近年来中国流行病学、临床实践以及对高血压病的研究,以高盐为代表的环境因素已成为高血压前期[血压120~139/80~89 mmHg(1 mmHg=0.133 kPa,下同)]的主要危险因素[4]。因此,在高血压前期进行干预,从调控环境因素入手,将血压防治重心前移,有望成为延缓高血压病发生和发展的一种新手段。
目前,中医还没有关于高血压前期的辨证分型标准和有效的治疗方法,但有调查表明,大部分高血压前期患者已有神疲乏力、四肢困倦、腹胀体胖、少气懒言、头晕目眩、舌淡胖、苔白腻等气虚的症状[5-6], 根据“盐者胜血”的中医理论[7-9],以及中医治未病的思想[10-11],笔者选用具有“补气活血,祛瘀通络”功效的补阳还五汤进行治疗。本实验采用公认的高盐所致高血压作为环境因素诱导的Dahl盐敏感大鼠复制高血压前期模型,研究大鼠血液中T淋巴细胞亚群CD4+和CD8+的比例与肿瘤坏死因子-α(TNF-α)、γ-干扰素(INF-γ)的含量。通过观察T淋巴细胞亚群CD4+与CD8+淋巴细胞比值、TNF-α、INF-γ的含量变化,探讨高血压前期与机体免疫功能相关性,并以期阐释补阳还五汤调节机体T细胞的免疫功能,改善血压高值状态的作用机制。
1 材料与方法 1.1 实验动物选用7周龄雄性盐敏感大鼠(DS)与盐抵抗大鼠(SS),各20只,共40只。许可证编号:SCXK(京)2012-0001,动物由北京维通利华实验动物技术有限公司提供。
1.2 药物与试剂补阳还五汤(黄芪30 g,赤芍4.5 g,川芎3 g,当归6 g,地龙3 g,桃仁3 g,红花3 g),购于辽宁省中医院中药局;大鼠外周血淋巴细胞分离液(天津市灏洋生物制品科技有限责任公司);CD3/CD8/CD4检测试剂盒(美国BD公司BD PharmingenTM);大鼠INF -γ酶联免疫吸附测定(ELISA)试剂盒(上海艾莱萨生物科技有限公司);大鼠TNF-α ELISA试剂盒(上海艾莱萨生物科技有限公司)。
1.3 仪器FACSAria Ⅲ流式细胞仪(美国BD医疗器械有限公司);智能无创血压计(BP-2010A日本);多功能酶标仪(SpectraMax I3奥地利Molecular Devices公司)。
2 方法 2.1 动物分组与造模选取7周龄DS大鼠与SS大鼠各20只,SS大鼠随机分为正常组和正常给药组,DS大鼠随机分为模型组和治疗组。各组大鼠在SPF级动物实验中心以室温18~23 ℃、相对湿度45%~55%、自由饮水、普通饲料(由辽宁本溪长生生物技术有限公司提供)进食的条件下适应性喂养1周后,改用8%氯化钠(NaCl)高盐饲料(由北京科奥协力饲料有限公司提供)喂养。在高盐喂食期间,每日采用大鼠智能无创血压计监测大鼠尾动脉收缩压,12 d后其血压值升高至120~139/80~89 mmHg时,确定为高血压前期大鼠模型。
2.2 干预方法补阳还五汤:黄芪30 g,赤芍4.5 g,川芎3 g,当归6 g,地龙3 g,桃仁3 g,红花3 g,以上为成人1日剂量,共52.5 g。按照每千克体质量大鼠的给药量为人的6.3倍换算,给药量为0.55 g。将补阳还五汤水提浓缩至0.55 g/mL后,装入药瓶中,置于4 ℃冰箱保存备用,用前加热至37 ℃。正常给药组和模型给药组大鼠每天灌胃1次,连续治疗5周。正常组和模型组灌服等量蒸馏水,方法同上。
2.3 标本取材SS和DS大鼠治疗结束后,每组大鼠禁食不禁水12 h后,腹腔注射20%氨基甲酸乙酯溶液,剂量按照0.4 mL/100 g给药,待其完全麻醉后,固定于实验台上,用0.5%碘伏消毒大鼠腹部皮肤,沿腹中线迅速打开腹腔,取腹主动脉新鲜血液2 mL,抽入含有肝素钠的抗凝采血管中,上下反复颠倒8~10次,使血液与肝素钠充分混匀,6 h内采用流式技术上机处理。
2.4 检测方法 2.4.1 流式细胞术检测大鼠全血中CD4+与CD8+的百分率1)血液中单细胞悬液的制备:取12支15 mL离心管,分别加入2 mL大鼠淋巴细胞分离液。将样本血液缓慢加在分离液的液面上,18~22 ℃,1 800 r/min离心15 min。离心后吸出上层分离液(包含淋巴细胞的细胞层),弃去剩余液体。缓慢吸取分离液层及淋巴细胞层置转移至新的5 mL离心管内。加入3 mL细胞洗涤液混匀。1 800 r/min离心15 min,弃上清,再加入3 mL细胞洗涤液重悬所得细胞,1 800 r/min离心15 min,弃上清,重复以上步骤后以0.05 mL磷酸液缓冲液(PBS)后续实验所需相应液体重悬所得细胞。2)样品制备:取12支流式上样管,制备好加完50 μL PBS的单细胞悬浮液并进行编号,分为4组,每组3管样品;依次加入单标记的CD4+、CD8+荧光抗体各20 μL,涡旋均匀。室温避光孵育20 min;每管分别加入2 mL PBS,混合均匀,300 g离心5 min,弃上清;每管再分别加入0.6 mL PBS涡旋混匀,4 ℃避光1 h内上机检测。3)流式细胞术检测T淋巴细胞中CD4+与CD8+的百分率:创建新实验的12个采集管命名;选中采集管,设置参数,仅保留与本实验相关的荧光参数,荧光参数选择对数,散射光参数选择线性,参数均选择A面积信号;调电压,切阈值,设门;调自动补偿;进行检测统计。
2.4.2 ELISA方法检测大鼠血清中TNF-α、INF-γ的含量设置标准品孔和样本孔,配置不同浓度的标准品并向不同标准品孔中加入标准品50 μL,样品孔加入40 μL样品稀释液与10 μL样品即血清,空白孔不加;用封板膜封住反应孔,37 ℃水浴30 min;弃去液体,用洗涤液反复洗涤3次;各孔加入酶标试剂50 μL,37 ℃避光30 min;再次洗涤3次;每孔加入A显色剂50 μL,B显色剂50 μL,37 ℃避光显色15 min;加入终止液50 μL,15 min内在450 nm波长测定各孔OD值;通过标准曲线方程计算样品浓度。
2.5 统计分析采用SPSS 19.0统计软件对实验数据进行分析,全部数据先进行正态性检验及方差齐性检验,再进行单因素方差分析。组间两两比较方差齐采用LSD法分析。结果以均数±标准差(x±s)表示,P<0.05认为有统计学差异。
3 实验结果 3.1 各组大鼠全血中CD4+/CD8+的比值与正常组相比,模型组大鼠血中CD4+/CD8+的比值下降,具有差异性(P < 0.05);与模型组相比较,治疗组大鼠血中CD4+/CD8+的比值升高,具有统计学差异(P < 0.05)。见表 1、图 1。
组别 | 样品数 | CD4+(%) | CD8+(%) | CD4+/CD8+ |
正常组 | 3 | 45.50±1.48 | 19.03 ±0.45 | 2.50±0.04 |
模型组 | 3 | 47.85±2.96 | 22.06±0.71 | 2.12±0.12* |
治疗组 | 3 | 34.81±5.15 | 14.03±0.43 | 2.48±0.32# |
正常给药组 | 3 | 45.25±2.03 | 20.10±0.12 | 2.35±0.29# |
注:与正常组比较,*P < 0.05;与模型组比较,#P < 0.05。 |
与正常组相比,模型组大鼠血清中INF-γ、TNF-α的含量升高,具有差异性(P < 0.05);与模型组相比较,治疗组大鼠血清中INF-γ、TNF-α含量降低,具有统计学差异(P < 0.05)。见表 2。
ng/L | |||
组别 | 动物数 | INF-y | TNF-a |
正常组 | 10 | 1 242.47±233.14 | 233.53±27.21 |
模型组 | 10 | 1 495.44±206.21* | 328.63±29.16* |
治疗组 | 10 | 1 299.96±166.03# | 259.15±38.19# |
正常给药组 | 10 | 1 247.96±125.23# | 231.98±42.60# |
注:与正常组比较,*P < 0.05;与模型组比较,#P < 0.05。 |
高血压前期是介于正常血压与高血压之间的阶段,没有明显的可查症状,既是属于“病虽未成,已有征兆”的未病状态,又是血压从正常高值到高值的关键过渡期。《黄帝内经》中提出了“盐者胜血”的理论,即高盐饮食或过食食盐可以伤及血脉,导致血液运行不畅,容易引起血脉的瘀滞[12],加之多数高血压前期患者在这一状态下又出现了气虚的症状,气虚与血瘀并见,与补阳还五汤方证相合。另有研究表明,在这一时期机体免疫细胞数量发生改变,尤其是血液中白细胞(WBC)计数升高[13],而补阳还五汤可以减少自身免疫性脑脊髓炎脾脏的CD4+ IFN-γ+T细胞,增加CD4+CD25+、CD4+IL-10+ T细胞数量,抑制TNF-α、IFN-γ等炎性因子的释放,具有促进炎性Th1细胞转化为抗炎的Th2型及调节性T细胞, 抑制炎性反应, 降低T细胞趋化因子的表达的作用[14]。
已经研究证实,免疫系统异常是引起血压升高的重要机制之一[15-16],T淋巴细胞作为主要的淋巴细胞,在机体细胞免疫的过程中发挥着重要作用。成熟的T细胞按CD表型不同分为CD4+T淋巴细胞和CD8+T淋巴细胞两大类[17]。活化的CD4+T淋巴细胞的主要功能是产生细胞因子产生免疫应答或调节免疫应答。如CD4+T淋巴细胞亚群中的Th1细胞可分泌INF-γ、TNF-α等细胞因子。INF-γ可以促进Th1细胞分化以及内皮细胞黏附因子的表达,抑制Th2细胞分化[18]。TNF-α通过促进血管平滑肌细胞迁移与增殖,改变血管通透性,同时介导多条与炎症有关的信号通路,发生炎症反应[19]。活化的CD8+T淋巴细胞最突出的作用是特异性杀伤靶细胞,因此又被称为细胞毒性T细胞。机体生理状态下CD4+/ CD8+两者保持一定比例,会处于相对平衡稳定的状态。当他们比例失调时,会引起机体一系列的病理生理改变[20]。
本实验研究结果表明,与正常组比较,模型组大鼠血液中CD4+T与CD8+T淋巴细胞百分比增加,CD4+/CD8+比值下降,说明高血压前期大鼠机体T淋巴细胞亚群比例失调,免疫功能紊乱。血清中INF-γ与TNF-α的含量上升,提示由于大鼠T淋巴细胞亚群比例的异常变化,引起Th1细胞分泌的INF-γ与TNF-α等炎症因子分泌增多,可能辅助CTL、NK细胞、巨噬细胞的活化和增殖,促进Th1细胞或相关内皮细胞表达黏附因子,亦或激活了由TNF-α介导的信号通路,加强了炎症反应程度。补阳还五汤干预后,治疗组大鼠CD4+T与CD8+T淋巴细胞百分比下降,CD4+/CD8+比值上升,INF-γ与TNF-α的含量下降,表明补阳还五汤可能是通过调节CD4+T与CD8+T淋巴细胞百分比CD4+/CD8+T淋巴细胞比例,改善机体免疫能力,抑制INF-γ与TNF-α炎性因子的分泌以及由他们导致的病理生理过程,延缓高血压前期的发展进程。
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