天津中医药  2018, Vol. 35 Issue (9): 710-713

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朱涛, 王永翠
ZHU Tao, WANG Yongcui
萝卜硫素通过Traf6/TAK1信号通路介导人胃癌细胞凋亡的机制研究
Mechanism study of sulforaphane on cell apoptosis in human gastric cancer cells through Traf6/TAK1 signaling pathway
天津中医药, 2018, 35(9): 710-713
Tianjin Journal of Traditional Chinese Medicine, 2018, 35(9): 710-713
http://dx.doi.org/10.11656/j.issn.1672-1519.2018.09.19

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收稿日期: 2018-05-20
萝卜硫素通过Traf6/TAK1信号通路介导人胃癌细胞凋亡的机制研究
朱涛1 , 王永翠2     
1. 恩施土家族苗族自治州中心医院消化内科, 恩施 445000;
2. 恩施州妇幼保健计划生育服务中心, 恩施 445000
摘要:[目的]探讨萝卜硫素对人胃癌(HGC27)细胞增殖、凋亡的影响,并观察其可能作用的机制。[方法]将对数生长期的HGC27细胞分为空白对照组、15 μg/mL萝卜硫素、30 μg/mL萝卜硫素及60 μg/mL萝卜硫素,用不同浓度药物处理细胞后,采用CCK8法检测各组细胞的增殖情况,流式细胞术检测各组细胞的凋亡率,免疫印迹技术检测细胞中凋亡蛋白及肿瘤坏死因子受体相关分子6(Traf6)/转化生长因子-β活化激酶1(TAK1)信号通路蛋白表达量。[结果]与空白对照组相比,不同浓度萝卜硫素组细胞增殖抑制率及凋亡率明显升高(P < 0.05);促凋亡蛋白半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶-3(Caspase-3)、Bcl-2相关X蛋白(Bax)表达水平显著升高,而抗凋亡蛋白B淋巴细胞瘤-2(Bcl-2)水平则显著降低(P < 0.05);Traf6、p-TAK1蛋白表达量相对于空白对照组显著升高(P < 0.05)。[结论]萝卜硫素可以抑制人胃癌细胞的增殖,促进细胞的凋亡,Traf6/TAK1信号通路可能参与了萝卜硫素对肿瘤细胞的抑制作用。
关键词萝卜硫素    人胃癌细胞    增殖    凋亡    机制    

胃癌是比较常见的消化道恶性肿瘤,在全球恶性肿瘤发病率中居前列,而且其病死率也较高,位于肿瘤致死率的第2位。调查发现,由于食品安全及环境生化毒性物质的累积,消化道肿瘤的发病率呈逐年上升的趋势。胃癌的早期诊断率较低,而且是一种多因素导致、致病机制复杂的肿瘤,在胃癌研究与诊治方面仍然需要大量研究[1-3]。萝卜硫素主要提取于十字花科蔬菜中的一种异硫氰酸酯类活性物质,包括西兰花、花椰菜及甘蓝菜等[4]。近年来较多的研究发现萝卜硫素可以预防、延缓及逆转肿瘤发生之前的病理改变,并且对多种肿瘤表现出较好的药理作用[5-8],也许会成为临床上常用的抗肿瘤药物。早期报道肿瘤坏死因子受体相关分子6(Traf6)/转化生长因子-β活化激酶1(TAK1)信号通路的活化在细胞凋亡中起着重要的作用,Traf6作为一种衔接蛋白可以介导LTR4信号的传导,最终激活核转录因子-κB(NF-κB)信号通路,诱导细胞凋亡的发生[9-10]。贺云冲等[11]研究发现萝卜硫素可以抑制胃癌细胞的生长和侵袭,抑制炎症因子的表达,也许是胃癌辅助治疗的新途径,但对其作用机制目前尚不清楚。因此,本实验研究Traf6/TAK1信号通路在萝卜硫素诱导胃癌细胞(HGC27)凋亡中的作用。

1 材料及方法 1.1 药品及试剂

萝卜硫素(上海宝曼生物科技有限公司,批号:4478-93-7,纯度≥99%);DMEM培养基及0.25%胰酶(上海谷歌生物有限公司);胎牛血清(美国Gibco公司,批号:110524);CCK8试剂盒(江苏碧云天生物科技研究所,批号:WH1175);Annexin-FITC细胞凋亡试剂盒(江苏凯基生物有限公司,批号:KGA106);BCA试剂盒(上海威奥生物科技有限公司,批号:WB0123);SDS-PAGE试剂盒(武汉谷歌生物有限公司,批号:P1320);兔抗人Traf6、TAK1、p-TAK1、半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶-3(Caspase-3)、B淋巴细胞瘤-2(Bcl-2)、Bcl-2相关X蛋白(Bax)及β-actin等多克隆一抗(英国Abcam公司),HRP标记山羊抗兔IgG(武汉谷歌生物科技有限公司)。

1.2 细胞培养与药物处理

人胃癌细胞株HGC27购自武汉巴菲尔生物有限公司,HGC27细胞用1640培养基进行培养,包含10%胎牛血清和1%青霉素-链霉素,然后置于37 ℃、5% CO2的恒湿培养箱中进行培养。待细胞生长至培养瓶底的90%左右时便可进行消化传代培养。然后取对数生长期的细胞接种于96孔板或6孔板,待细胞贴壁后加入不同浓度的萝卜硫素(15、30、60 mg/L)处理细胞,再进行后续实验。

1.3 细胞活力检测

取生长对数期细胞,0.25%Trypsin+0.02%EDTA消化离心,计数后,以1×104/孔细胞铺96孔板,37 ℃、5% CO2的恒湿培养箱中孵育培养过夜。然后分别加药(正常组、15、30、60 mg/L组),分别培养24、48、72 h后,使用CCK8试剂盒检测细胞活力。独立重复实验4次。

1.4 细胞凋亡检测

取生长对数期细胞,然后以1×105/孔细胞数接种于6孔板中,培养过夜后,吸尽旧培养基,然后加入含不同浓度萝卜硫素(15、30、60 mg/L)的新鲜培养基继续孵育处理24 h后,除去孔内培养基,用磷酸盐缓冲液(PBS)清洗细胞3次,加入不含乙二胺四乙酸(EDTA)的胰酶进行消化收集细胞,再用PBS清洗细胞3次,5 000 r/min离心6 min,收集细胞。然后将细胞重悬后加入5 μL PI混匀,利用流式细胞仪检测细胞凋亡率。

1.5 蛋白免疫印迹(Western Blot)检测蛋白表达

取生长对数期细胞,然后以1×105/孔细胞数接种于6孔板中,培养过夜后,吸尽旧培养基,然后加入含不同浓度萝卜硫素(15、30、60 mg/L)的新鲜培养基继续孵育处理24 h后,收集细胞裂解,检测蛋白浓度,然后每孔以50 μg蛋白量上样进行凝胶电泳分离,电压设置为70 V;待分离完成后进行转膜,电流设定为275 mA、时间为70 min。接着将膜放入5%脱脂奶粉中封闭1 h,孵育一抗过夜,用TBST洗膜3次后室温条件孵育对应HRP标记二抗1 h,再次洗膜3次,ECL显影后便可进行蛋白表达分析。

1.6 统计学分析

采用SPSS 20.0软件进行统计分析,实验数据用均数±标准差(x±s)表示,细胞增殖抑制实验采用重复测量方差分析,其他实验结果组间比较采用单因素方差分析,P < 0.05表示差异具有统计学意义。

2 结果 2.1 HGC27细胞增殖抑制实验结果

经不同剂量萝卜硫素作用后的HGC27细胞,生长活性受到不同程度的抑制,见表 1。以正常细胞为对照,低剂量萝卜硫素对HGC27细胞的抑制率较低,差异有统计学意义(P < 0.05)。随着药物浓度和处理时间的增加,HGC27细胞的增殖抑制率明显升高,相对于对照组而言差异均有统计学意义(P < 0.05),且细胞的增殖抑制率呈时间-浓度依赖性。

表 1 萝卜硫素对HGC27细胞增殖的抑制作用(x±s Tab. 1 The inhibitory effect of sulforaphane on the proliferation of HGC27 cells(x±s)
2.2 HGC27细胞凋亡率检测结果

不同剂量的萝卜硫素对HGC27细胞凋亡率的影响结果如图 1表 2所示。药物处理细胞24 h后,与正常对照组相比,3种浓度药物干预组中细胞的凋亡率显著升高(P < 0.05)。正常细胞的凋亡率为(5.42±0.42)%,而低、中、高剂量萝卜硫素组中细胞的凋亡率上升至(12.52±1.21)%、(21.46±2.14)%及(33.41±3.94)%。

图 1 萝卜硫素对HGC27细胞凋亡的影响 Fig. 1 The effect of sulforaphane on the apoptosis of HGC27 cells a:对照组;b:15 μg/mL萝卜硫素组;c:30 μg/mL萝卜硫素组;d:60 μg/mL萝卜硫素组
表 2 萝卜硫素对HGC27细胞凋亡率的影响(x±s Tab. 2 The effect of sulforaphane on the apoptosis rates of HGC27 cells(x±s)
2.3 HGC27细胞凋亡相关蛋白Caspase-3、Bax及Bcl-2表达水平检测

采用Western Blot方法,以未加药物处理细胞为对照,HGC27细胞经低、中、高剂量萝卜硫素作用24 h后,凋亡相关蛋白发生不同程度的变化,如图 2。其中促凋亡蛋白Caspase-3和Bax表达随着药物浓度的升高而增强,而抗凋亡蛋白Bcl-2表达水平则随药物剂量的升高而降低,他们与空白对照组相比差异均有统计学意义(P < 0.05),表现出浓度依赖性。

图 2 萝卜硫素对Caspase-3、Bax及Bcl-2蛋白表达水平的影响 Fig. 2 The effect of sulforaphane on the expression of Caspase-3, Bax and Bcl-2 protein a:空白对照组;b:15 μg/mL萝卜硫素组;c:30 μg/mL萝卜硫素组;d:60 μg/mL萝卜硫素组。与空白对照组比较,*P < 0.05;与15 μg/mL萝卜硫素组比较,#P<0.05;与30 μg/mL萝卜硫素组比较,ΔP < 0.05
2.4 HGC27细胞Traf6/TAK1信号通路蛋白检测结果

采用Western blot方法,以未加药物处理细胞为对照,HGC27细胞经低、中、高剂量萝卜硫素作用24 h后,Traf6/TAK1信号通路蛋白表达量发生不同程度的变化,如图 3。Traf6蛋白在萝卜硫素的诱导下,其表达量随着药物浓度的升高而增强,说明萝卜硫素可以促进Traf6表达;与此同时,TAK1的磷酸化水平也显著升高,呈现出剂量依赖性,与正常对照组相比差异有统计学意义(P < 0.05)。由此说明,萝卜硫素可以通过活化Traf6/TAK1信号通路诱导细胞凋亡的发生。

图 3 萝卜硫素对Traf6/TAK1信号通路的影响 Fig. 3 The effect of sulforaphane on the Traf6/TAK1 signaling pathway a:空白对照组;b:15 μg/mL萝卜硫素组;c:30 μg/mL萝卜硫素组;d:60 μg/mL萝卜硫素。与空白对照组比较,*P < 0.05;与15 μg/mL萝卜硫素组比较,#P < 0.05;与30 μg/mL萝卜硫素组比较,ΔP < 0.05
3 讨论

细胞凋亡是机体保证内环境平衡的自我调控机制[12],细胞增殖与凋亡相互之间的稳定在多种肿瘤的发生发展中有着重要作用[13],细胞凋亡是一种程序化、多基因调节的细胞死亡过程,这一过程在抗肿瘤的治疗方面上已成为研究的主要方向。本实验结果发现,萝卜硫素在15~60 μg/mL浓度范围内,均可以表现出对胃癌HGC27细胞增殖的抑制作用,并且随着药物剂量及药物作用时间的延长,细胞增殖抑制率也随之显著升高,呈现出一定浓度和时间依赖性。接着采用流式细胞仪对HGC27细胞凋亡的情况进行研究发现,细胞凋亡率随着药物剂量的升高而增加,表现出明显的剂量依赖性。实验结果说明萝卜硫素可以抑制胃癌细胞的增殖,并促使其发生早期凋亡。

TAK1受多种因素的刺激可以介导胞外信号的传导,转化生长因子-β(TGF-β)、Toll样受体(TLR)、CD4及B细胞受体等细胞因子介导的信号均可由TAK1的磷酸化发挥相应的生物学效应[14]。研究报道Traf6表达水平上升可促使TAK1的磷酸化,进而诱导细胞炎症、凋亡及氧化应激损伤的发生[15]。并且Trfa6/TAK1通路可介导TLR4信号传导激活NF-κB通路介导细胞凋亡的发生[9-10]。其中TAK1的磷酸化可以活化或者阻滞多条信号传导,如Bcl-2/Bax、mTOR及Caspase-9等。其中Bcl-2/Bax通路蛋白在细胞凋亡发生过程中起着关键的作用,也是TAK1信号传导的重要下游靶标[16]。Bcl-2家族包括抗凋亡相关蛋白(如Bcl-2)和促凋亡相关蛋白(如Bax)等,在细胞凋亡中起着关键作用,其中Bcl-2/Bax蛋白含量的平衡在细胞是否发生凋亡中起着决定性作用。本实验结果也发现萝卜硫素可以明显诱导Traf6及p-TAK1水平,还抑制了抗凋亡蛋白Bcl-2的表达,并诱导了促凋亡蛋白Caspase-3、Bax的表达。于是,萝卜硫素可以活化Traf6/TAK1的信号传导,使Bcl-2/Bax蛋白表达量出现失衡,活化凋亡信号,诱导胃癌细胞的凋亡。

综上所述,萝卜硫素能够抑制人胃癌细胞的增殖,诱导其凋亡,其作用机制可能与活化Traf6/TAK1信号通路相关。

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Mechanism study of sulforaphane on cell apoptosis in human gastric cancer cells through Traf6/TAK1 signaling pathway
ZHU Tao1, WANG Yongcui2     
1. Department of Gastroenterology, Central Hospital of En-shi Autonomous Prefecture, Enshi 445000, China;
2. Enshi Maternal and Child Health Care and Family Planning Service Center, Enshi 445000, China
Abstract: [Objective] To study the impacts of sulforaphane on the apoptosis of human gastric cancer HGC27 cells and its roles in Traf6/TAK1 signaling pathway, and to verify the mechanisms. [Methods] The HGC27 cells were divided into control group, low dose of sulforaphane group (15 μg/mL), middle dose of sulforaphane group (30 μg/mL), and high dose of sulforaphane group (60 μg/mL). After cells were supplemented with varying doses of sulforaphane, the inhibitory rates of cell proliferation were determined using CCK8 assay, the apoptotic rates were assessed using flow cytometry, and the expression levels of Caspase-3, Bax, Bcl-2, Traf6, TAK1 and p-TAK1 were observed by Western Blot. [Results] Compared with control group, the inhibitory rates of proliferation and the apoptotic rates of cells in different sulforaphane doses groups were greatly increased (P < 0.05); the expression levels of Caspase-3 and Bax were increased while the level of Bcl-2 was greatly decreased compared with control group (P < 0.05); the expression levels of Traf6, p-TAK1 were also greatly increased (P < 0.05). [Conclusions] Sulforaphane can suppress the proliferation of HGC27 cells and induce the apoptosis. Traff6/TAK1 signaling pathway may be involved in the inhibitory effect of sulforaphane on the tumor cells.
Key words: sulforaphane     human gastric cancer cell     proliferation     apoptosis     mechanism