天津中医药  2020, Vol. 37 Issue (7): 818-823

文章信息

任秋月, 田翰林, 常柏
REN Qiuyue, TIAN Hanlin, CHANG Bai
抵挡汤在高糖、高糖波动环境下对人脐静脉血管内皮细胞能量代谢相关因子表达的影响
Effect of Didang Decoction on the expression of energy metabolism related factors in human umbilical vein endothelial cells under high glucose and high glucose fluctuating
天津中医药, 2020, 37(7): 818-823
Tianjin Journal of Traditional Chinese Medicine, 2020, 37(7): 818-823
http://dx.doi.org/10.11656/j.issn.1672-1519.2020.07.25

文章历史

收稿日期: 2020-02-15
抵挡汤在高糖、高糖波动环境下对人脐静脉血管内皮细胞能量代谢相关因子表达的影响
任秋月1 , 田翰林2 , 常柏3     
1. 天津中医药大学, 天津 301617;
2. 铜仁市碧江区中医医院, 铜仁 554300;
3. 天津医科大学朱宪彝纪念医院, 天津 300134
摘要:[目的] 通过观察抵挡汤在高糖、高糖波动环境下对人脐静脉血管内皮细胞(HUVECs)磷酸化腺苷酸活化蛋白激酶(p-AMPK)、过氧化物酶体增殖物激活受体γ(PPARγ)共激活因子1α(PGC-1α)、内皮细胞型一氧化氮合酶(eNOS)、半胱氨酸天门冬氨酸特异性蛋白酶3(caspase-3)表达的影响, 探讨抵挡汤对血管内皮细胞保护作用。[方法] 模拟高糖、高糖波动环境培养HUVECs并分别进行抵挡汤、辛伐他汀、二甲双胍干预, 各组培养48 h后, 蛋白免疫印迹(Western Blot)检测p-AMPK、PGC-1α、eNOS蛋白表达, 逆转录-聚合酶链式反应(RT-PCR)检测caspase-3基因含量, 流式细胞仪检测细胞凋亡率。[结果] 高糖组、高糖波动组p-AMPK、PGC-1α、eNOS表达均显著下降, 且以高糖波动组最低。抵挡汤干预后p-AMPK、PGC-1α、eNOS表达均显著上调, 与二甲双胍干预无差异。高糖组、高糖波动组caspase-3 mRNA表达均明显升高, 抵挡汤干预后均明显降低, 且与二甲双胍干预组无差异。[结论] 抵挡汤在高糖、高糖波动环境下均可磷酸化AMPK, 上调PGC-1α、eNOS蛋白表达、下调caspase-3基因表达, 影响能量代谢和线粒体合成, 减少内皮细胞凋亡, 从而保护血管内皮。
关键词抵挡汤    高糖波动    能量代谢    p-AMPK    PGC-1α    eNOS    caspase-3    

糖尿病大血管病变是糖尿病的主要并发症之一, 糖尿病患者中, 大血管病变的患病风险是非糖尿病患者的2~4倍[1]。研究表明, 相比持续性高糖, 高糖波动更易导致大血管并发症[2-3], 目前研究机制多涉及氧化应激、炎症反应等[4-5]。腺苷酸活化蛋白激酶(AMPK)即AMP依赖的蛋白激酶, 是细胞的能量变化感受器, 已成为研究糖尿病及其他代谢相关疾病的核心。过氧化物酶体增殖物激活受体γ(PPARγ)共激活因子1α(PGC-1α)是一种转录共激活因子, 在线粒体生物合成和氧化、骨骼肌葡萄糖摄取方面起到调节作用, 可由磷酸化的AMPK介导激活, 其下调时可直接导致线粒体功能障碍。抵挡汤方出于《伤寒论》, 为破血逐瘀名方。前期研究基础表明, 抵挡汤可明显改善2型糖尿病患者血管内皮舒张功能, 减轻2型糖尿病大鼠大血管并发症炎症反应[6-7]。因此, 本研究试图通过观察抵挡汤干预对人脐静脉血管内皮细胞(HUVECs)磷酸化腺苷酸活化蛋白激酶(p-AMPK)、PGC-1α、一氧化氮合酶(eNOS)、半胱氨酸天门冬氨酸特异性蛋白酶3(caspase-3)的影响, 明确抵挡汤是否对高糖波动下血管内皮细胞起保护作用, 并探讨其可能机制。

1 材料和方法 1.1 试剂与仪器

DMEM培养基、胎牛血清、0.25%胰蛋白酶消化液均购于Gibco公司; 青霉素/链霉素购于Biosharp公司; p-AMPKα(Thr172)抗体、PGC-1α抗体、eNOS抗体、β-actin均购买于Abbiotec公司; 超纯RNA提取试剂盒购于北京康为试剂生物科技有限公司; Annexin V-FITC/PI试剂盒购于美国碧迪公司; 倒置显微镜、全自动图像分析仪购于日本奥林巴斯公司; 台式低/高速离心机购于德国Eppendorf公司; 荧光定量聚合酶链反应(PCR)仪购于Applied Biosystems公司; 流式细胞仪购于美国碧迪公司。

1.2 药物

抵挡汤(熟大黄10 g, 水蛭3 g, 桃仁5 g, 虻虫1.5 g)购于天津中医药大学第一附属医院药剂科, 盐酸二甲双胍和辛伐他汀标准品均购买于MCE公司。

1.3 抵挡汤含药血清制备

8只大鼠, 雌雄各半, 适应性喂养1周后, 随机分2组, 对照组、抵挡汤组。采用人鼠等效剂量, 抵挡汤水煎剂3 g (/kg·d)灌胃, 每日1次, 连续7 d, 对照组给以同剂量的生理盐水灌胃。末次灌胃前禁食12 h。末次灌胃后1 h, 腹主动脉采血, 静置2 h, 离心半径160 mm, 3 000 r/min离心15 min, 分离血清, 经56℃, 30 min灭活处理后, 用0.45 μm (或0.22 μm)微孔滤膜过滤除菌, 置-20℃保存备用。

1.4 细胞培养及分组

HUVECs由天津市内分泌研究所馈赠。复苏后用含10%胎牛血清、青霉素/链霉素的DMEM培养基, 置于37℃, 5%二氧化碳(CO2)无菌培养箱中培养。取对数生长期的细胞, 胰蛋白酶消化后制成细胞悬液, 以1×105/浓度接种于六孔板中。根据不同的培养环境分为9组:1)正常对照组(NG):5 mmol/L葡萄糖, 正常糖环境, 48 h。2)高糖组(HG):25 mmol/L葡萄糖, 高糖环境, 10%对照组血清, 48 h。3)高糖辛伐他汀组(HG-S):25 mmol/L葡萄糖24 h+25 mmol/L葡萄糖、10 μmmol/L辛伐他汀[8]24 h。4)高糖抵挡汤组(HG-D):25 mmol/L葡萄糖24 h+25 mmol/L葡萄糖、10%抵挡汤24 h。5)高糖盐酸二甲双胍组(HG-M):25 mmol/L葡萄糖24 h+25 mmol/L葡萄糖、2 mmol/L盐酸二甲双胍[9]24 h。6)高糖波动组(FG):(5 mmol/L葡萄糖、25 mmol/L葡萄糖每6 h交换1次, 24 h后, 25 mmol/L葡萄糖24 h)。7)高糖波动辛伐他汀组(FG-S):5 mmol/L葡萄糖、25 mmol/L葡萄糖每6 h交换1次, 24 h后, 25 mmol/L葡萄糖、10 μmmol/L辛伐他汀24 h。8)高糖波动抵挡汤组(FG-D):5 mmol/L葡萄糖、25 mmol/L葡萄糖每6 h交换1次, 24 h后, 25 mmol/L葡萄糖、10%抵挡汤24h。9)高糖波动盐酸二甲双胍组(FG-M):5 mmol/L葡萄糖、25 mmol/L葡萄糖每6 h交换1次, 24 h后, 25 mmol/L葡萄糖、2 mmol/L盐酸二甲双胍24 h。

1.5 蛋白免疫印迹(Western Blot)

各组加入细胞裂解液(北京索莱宝公司), 离心半径125 mm, 12 000 r/min、4℃离心10 min, 取上清液。采用BCA蛋白定量测定试剂盒(上海碧云天公司)测定总蛋白量。取样品上样, 蛋白质双向电泳(SDS-PAGE)分离, 转膜, 10 V恒压通电80 min。加I抗:抗p-AMPKα(Thr172)(1:1 000稀释)、抗PGC-1α(1:1 000稀释)、eNOS (1:1 000), 4℃过夜孵育。辣根过氧化物酶(HRP)标记的特异性Ⅱ抗(1:2 000)及HRP标记的生物素抗体(1:1 000)室温下孵育1 h。配置ECL发光液(北京索莱宝公司), 曝光, 保存条带, 灰度值分析, 以β-actin为内参, 对蛋白条带进行相对定量分析。

1.6 逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR)

超纯RNA提取试剂盒提取内皮细胞中总RNA, 取RNA5 μL, 用1%琼脂糖凝胶进行电泳。用DNase Ⅰ试剂盒(2 μL 10×buffer、2 μL DNase Ⅰ、2 μL RNA、14 μL RNaseFreewater)对RNA中残留的基因组DNA进行消化, 37℃孵育30 min, 向每个反应管中加入2 μL 200 mmol/L EDTA, 65℃保温10 min, 使DNaseⅠ失活。HiFi-MMLVcDNA第一链合成试剂盒进行反转录, 37℃孵育50 min, 70℃保温10 min。反应结束后的cDNA放置-20℃保存。扩增程序为:95℃ 10 min, (95℃ 15 s, 60℃ 60 s)×45个循环。反应体系:0.4 μL上游引物(10 μmol/L), 0.4 μL下游引物(10 μmol/L), 10 μL 2 ×UltraSYBR Mixture, 2 μL模板, 并加入灭菌蒸馏水至20 μL。引物序列:caspase-3上游5'TACTGCCGGAGTCTGACTG3'下游5'CTCCAGGAATAGTAACCAGG3'。应用ABI 7500型荧光定量PCR仪, 并采用2-ΔΔCT法, 对数据的相对定量进行分析。

1.7 流式细胞术

使用冷的磷酸缓冲溶液(PBS)洗细胞2次, 1×Binding Buffer缓冲液制成1×106细胞/mL悬液, 试管中加入100 μL细胞悬液, 按体积加入Annexin V与PI染料, 混匀, 室温避光放置15 min, 使用Annexin V-Biotin试剂进行检测, 各试管中分别加入1×Binding Buffer缓冲液400 μL, 流式细胞仪测定结果。

1.8 统计学方法

数据分析采用SPSS 21.0软件。计量资料采用均数±标准差(x±s)表示, 多组间均数比较采用单因素方差分析, 组间两两比较若方差齐采用LSD法, 方差不齐采用Dunnet's T3法, P < 0.05为差异具有统计学意义。

2 结果 2.1 Western-blot检测各组内皮细胞p-AMPK、PGC-1a、eNOS蛋白表达

与NG相比, HG组和FG组p-AMPK、PGC-1α、eNOS表达均下降(P < 0.05), 且以FG组最低(P < 0.05)。高糖各干预组中, HG-D组p-AMPK、PGC-1a、eNOS表达均高于HG-S组(P < 0.05), 且与HG-M组比较无统计学差异。高糖波动各干预组中, FG-D组p-AMPK、PGC-1α、eNOS表达均高于FG-S组(P < 0.05), 且与FG-M组比较无统计学差异。见图 1

注:*P < 0.05,NG:正常对照组;HG:高糖组;HG-S:高糖+辛伐他汀组;HG-D:高糖+抵挡汤组;HG-M:高糖+盐酸二甲双胍组;FG:高糖波动组;FG-S:高糖波动+辛伐他汀组;FG-M:高糖波动+抵挡汤组;FG-M:高糖波动+盐酸二甲双胍组。 图 1 Western blot检测各组p-AMPK、PGC-1α、eNOS蛋白表达情况 Fig. 1 The protein expression of p-AMPK, PGC-1a, and eNOS by Western blot test in each group
2.2 RT-PCR法检测各种内皮细胞caspase-3 mRNA表达

HG、FG组caspase-3 mRNA表达明显高于NG (P < 0.05), 且FG组最高(P < 0.05)。高糖各干预组中, HG-D组caspase-3mRNA含量低于HGS组(P < 0.05), 且与HG-M组比较无统计学差异。高糖波动各干预组中, FG-D组caspase-3mRNA含量低于FG-S组(P < 0.05), 且与FG-M组比较无统计学差异。见图 2

注:*P < 0.05,NG:正常对照组;HG:高糖组;HG-S:高糖+辛伐他汀组;HG-D:高糖+抵挡汤组;HG-M:高糖+盐酸二甲双胍组;FG:高糖波动组;FG-S:高糖波动+辛伐他汀组;FG-M:高糖波动+抵挡汤组;FG-M:高糖波动+盐酸二甲双胍组 图 2 RT-PCR检测各组caspase-3 mRNA表达情况 Fig. 2 Caspase-3 mRNA expression by RT-PCR detection in each group
2.3 流式细胞术检测各组内皮细胞凋亡情况

与NG相比, HG组和FG组均可促进细胞凋亡(P < 0.05), 且以FG组凋亡率较高(P < 0.05)。高糖各干预组中, HG-D组细胞凋亡率低于HG、HG-S组(P < 0.05), 且与HG-M组比较无统计学差异(P>0.05)。高糖波动各干预组中, FG-D组细胞凋亡率低于FD、FG-S组(P < 0.05), 且与FG-M组比较无统计学差异(P>0.05)。提示抵挡汤干预可削弱高糖、高糖波动对细胞的促凋亡作用, 其抑制内皮细胞凋亡作用优于辛伐他汀, 与盐酸二甲双胍比较无统计学差异。见图 3

注:*P<0.05,NG:正常对照组;HG:高糖组;HG-S:高糖+辛伐他汀组;HG-D:高糖+抵挡汤组;HG-M:高糖+盐酸二甲双胍组;FG:高糖波动组;FG-S:高糖波动+辛伐他汀组;FG-D:高糖波动+抵挡汤组;FG-M:高糖波动+盐酸二甲双胍组。 图 3 流式细胞术检测各组细胞凋亡情况 Fig. 3 Apoptosis of cells by flow cytometry detection in each group
3 讨论

糖尿病大血管病变作为糖尿病慢性并发症之一, 严重影响患者的生存质量, 是致死、致残的主要因素。血管内皮是由血管内皮细胞通过细胞间的连接而形成的单细胞层屏障, 糖尿病大血管病变中, 内皮细胞是高血糖损伤的重要靶点, 高血糖可导致内皮细胞损伤和凋亡, 血管内皮完整性和血管功能破坏。研究显示, 与无大血管并发症的糖尿病患者相比, 合并大血管病变的糖尿病患者的血糖标准差、平均血糖波动幅度、最大血糖波动幅度均明显增高[10]。高糖波动较持续性高糖更易导致血管损伤, 对其机制研究多涉及氧化应激、细胞凋亡、炎症、止血凝血等[11-13]。本研究显示, 相比与持续性高糖环境, 高糖波动环境更能损伤内皮细胞, 促进其凋亡, 与既往研究结果一致。

线粒体的结构和功能变化是细胞凋亡的枢纽环节, 过量的活性氧簇(ROS)能引发内源性细胞凋亡途径[14-15]。线粒体作为细胞能量代谢的场所, 是细胞内三磷酸腺苷(ATP)的主要生产中心。AMPK作为细胞能量代谢的主要调控者, 其活性受一磷酸腺苷(AMP)/ATP比值调控, 线粒体抑制、营养匮乏和运动等多种生理条件都能激活AMPK。越来越多的证据表明, AMPK是合成线粒体、维持线粒体稳态的关键调节因子, 通过调节下游信号通路来维持线粒体的最佳状态[16]。AMPK还可通过促进游离脂肪酸(FFA)的氧化从而拮抗FFA造成的内皮细胞毒性, 进而保护血管内皮[17]。PGC-1α是AMPK下游效应物, 在能量压力下, AMPK可激活PGC-1α, 通过与PPARγ或雌激素相关受体(ERRs)相互作用激活线粒体生物合成的基因, 这一途径被认为可能是修复和维持血管内皮细胞线粒体功能的一项主要机制[18]。eNOS广泛存在于内皮细胞中, 其激活可改善内皮和血管功能, 可通过调控内皮源性一氧化氮产生的关键酶, 促进细胞增殖、黏附、迁移和血管新生[19], 另外在循环系统中eNOS是AMPK的一个重要靶标。Caspase家族在细胞凋亡转导通路尤其是线粒体途径中起到至关重要的调控作用, 其中caspase-3在凋亡过程中占据核心地位, 被称为"死亡执行蛋白酶", 其激活标志着细胞凋亡进入不可逆阶段[20-21]

2型糖尿病大血管病变属于中医"消渴"变证, 气阴两虚, 阴损及阳, 渐致痰浊瘀毒等病理产物积聚, 络瘀脉损。而瘀血贯穿于2型糖尿病大血管病变的始终, 所以治疗上把握脉络瘀阻的主要病机。抵挡汤方出于《伤寒论》, 原方由大黄、水蛭、桃仁、虻虫组成, 以善饮血之水蛭为君, 善吮血之虻虫为臣, 善破诸经瘀血之桃仁为佐, 善行君令之将军大黄为使, 破血逐瘀, 荡涤邪热, 推陈出新。研究表明, 二甲双胍可阻碍细胞线粒体呼吸链复合体的电子传递过程, 降低ATP合成, 增加AMP水平, 升高AMP/ATP比例, 从而直接或间接激活AMPK[22-24]。本研究显示, 抵挡汤在持续高糖和高糖波动环境下均可磷酸化AMPK, 上调eNOS、PGC-1α蛋白表达, 减少内皮细胞凋亡, 且与盐酸二甲双胍干预无差异, 表明抵挡汤可通过影响线粒体合成和能量代谢, 减少内皮细胞凋亡, 从而保护血管内皮, 为临床破血化瘀法论治糖尿病大血管病变提供了理论依据。

参考文献
[1]
The Emerging Risk Factors Collaboration. Diabetes mellitus, fasting blood glucose concentration, and risk of vascular disease:a collaborative meta-analysis of 102 prospective studies[J]. Lancet, 2010, 375(9733): 2215-2222. DOI:10.1016/S0140-6736(10)60484-9
[2]
LI H, LUO H Y, LIU Q, et al. Intermittent high glucose exacerbates A-FABP activation and inflammatory response through TLR4-JNK signaling in THP-1 cells[J]. Journal of Immunology Research, 2018, 4(11): 272-281.
[3]
CERIELLO A, ESPOSITO K, PICONI L, et al. Oscillating glucose is more deleterious to endothelial function and oxidative stress than mean glucose in normal and type 2 diabetic patients[J]. Diabetes, 2008, 57(5): 1349-1354. DOI:10.2337/db08-0063
[4]
TAO S, REN Y, ZHENG H, et al. Salvianolic acid B inhibits intermittent high glucose-induced INS-1 cell apoptosis through regulation of Bcl-2 proteins and mitochondrial membrane potential[J]. European Journal of Pharmacology, 2017, 11(5): 56-62.
[5]
KIM Y J, PARK S M, JUNG H S, et al. Ginsenoside Rg3 prevents INS-1 cell death from intermittent high glucose stress[J]. Islets, 2016, 8(3): 57-64. DOI:10.1080/19382014.2016.1161874
[6]
常柏, 潘从清, 孟东, 等. 抵挡汤对2型糖尿病患者血管内皮功能影响的临床研究[J]. 天津中医药, 2011, 28(6): 457-458.
CHANG B, PAN C Q, MENG D, et al. Clinical research on effect of Didang decoction on endothelial function in patients with type 2 diabetes[J]. Tianjin Journal of Traditional Chinese Medicine, 2011, 28(6): 457-458.
[7]
常柏, 李巧芬, 常宝成, 等. 抵挡汤早期干预对2型糖尿病大鼠肿瘤坏死因子-α与血管细胞黏附分子-1表达的影响[J]. 中国中医药信息杂志, 2012, 19(10): 38-40.
CHANG B, LI Q F, CHANG B C, et al. Effects of early intervention with Didang Decoction on expression of VCAM-1 and TNF-α in experimental type 2 diabetic rats[J]. Chinese Journal of Information on Traditional Chinese Medicine, 2012, 19(10): 38-40. DOI:10.3969/j.issn.1005-5304.2012.10.015
[8]
KUREISHI Y, LUO Z, SHIOJIMA I. The HMG-CoA reductase inhibitor simvastatin activates the protein kinase Akt and promotes angiogenesis in normocholesterolemic animals[J]. Nature Medicine, 2000, 6(9): 1004-1010. DOI:10.1038/79510
[9]
XUE J, ZHANG H, LIU W, et al. Metformin inhibits growth of eutopic stromal cells from adenomyotic endometrium via AMPK activation and subsequent inhibition of AKT phosphorylation:a possible role in the treatment of adenomyosis[J]. Reproduction, 2013, 146(4): 397-406. DOI:10.1530/REP-13-0135
[10]
段建芳, 王艳妮, 金凤钟, 等. 血糖波动与糖尿病大血管并发症的相关性[J]. 心脏杂志, 2018, 30(2): 173-177.
DUAN J F, WANG Y N, JIN F Z, et al. The relationship between glucose fluctuation and macrovascular complications in type 2 diabetes[J]. Chinese Heart Journal, 2018, 30(2): 173-177.
[11]
ZHOU H, SUN Y, ZHANG L, et al. The RhoA/ROCK pathway mediates high glucose-induced cardiomyocyte apoptosis via oxidative stress, JNK, and p38MAPK pathways[J]. Diabetes Metabolish Research and Reviews, 2018, 34(6): 3022-3028. DOI:10.1002/dmrr.3022
[12]
JADAUN P, YADAV D, BISEN P S. Spirulina platensis prevents high glucose-induced oxidative stress mitochondrial damage mediated apoptosis in cardiomyoblasts[J]. Cytotechnology, 2018, 70(2): 523-536. DOI:10.1007/s10616-017-0121-4
[13]
李云程, 应长江, 李伟. 2型糖尿病合并血管并发症患者纤维蛋白原水平的变化及其与血糖波动的相关性研究[J]. 中国糖尿病杂志, 2018, 26(10): 830-834.
LI Y C, YING C J, LI W. Correlation of fibrinogen and glucose fluctuation in type 2 diabetic patients with vascular complication[J]. Chinese Journal Diabetes, 2018, 26(10): 830-834. DOI:10.3969/j.issn.1006-6187.2018.10.009
[14]
SZIGETI A, HOCSAK E, RAPOLTI E, et al. Facilitation of mitochondrial outer and inner membrane permeabilization and cell death in oxidative stress by a novel Bcl-2 homology 3 domain protein[J]. Journal of Biological Chemistry, 2010, 285(3): 2140-2151. DOI:10.1074/jbc.M109.015222
[15]
CHEN H B, GAO W W, YANG Y, et al. Inhibition of VDAC1 prevents Ca(2+)-mediated oxidative stress and apoptosis induced by 5-aminolevulinic acid mediated sonodynamic therapy in THP-1 macrophages[J]. Apoptosis:An International Journal on Programmed Cell Death, 2014, 19(12): 1712-1726. DOI:10.1007/s10495-014-1045-5
[16]
HERZIG, SÉBASTIEN, SHAW R J. AMPK:guardian of metabolism and mitochondrial homeostasis[J]. Nature Reviews Molecular Cell Biology, 2018, 19(2): 121-135.
[17]
LOCHNER M, BEROD L, SPARWASSER T. Fatty acid metabolism in the regulation of T cell function[J]. Trends in Immunology, 2015, 36(2): 81-91. DOI:10.1016/j.it.2014.12.005
[18]
PARK D R, KIM J S, KIM C K. The effect of SIRT1 protein knock down on PGC-1α acetylation during skeletal muscle contraction[J]. Journal of Exercise &Nutrition Biochemistry, 2014, 18(1): 1-7.
[19]
VIMALRAJ S, BHUVANESWARI S, LAKSHMIKIRUPA S, et al. Nitric oxide signaling regulates tumor induced intussusceptive-like angiogenesis[J]. Microvascular Research, 2018, 119(5): 47-59.
[20]
ALLURI H, STAGG H W, WILSON R L, et al. Reactive oxygen species-caspase-3 relationship in mediating blood-brain barrier endothelial cell hyperpermeability following oxygen-glucose deprivation and reoxygenation[J]. Microcirculation, 2014, 21(2): 187-195. DOI:10.1111/micc.12110
[21]
SNIGDHA S, SMITE D H, PRIETO G A, et al. Caspase-3 activation as a bifurcation point between plasticity and cell death[J]. Neuroscice Bull, 2012, 28(1): 14-24. DOI:10.1007/s12264-012-1057-5
[22]
SUKRITI S, TAUSEEF M, YAZBECK P, et al. Mechanisms regulating endothelial permeability[J]. Pulmonary Circulation, 2014, 4(4): 535-551. DOI:10.1086/677356
[23]
HOWELL J J, HELLBERG K, TURNER M, et al. Metformin inhibits hepatic mTORC1 signaling via dose-dependent mechanisms involving AMPK and the TSC complex[J]. Cell Metabolism, 2017, 25(2): 463-471. DOI:10.1016/j.cmet.2016.12.009
[24]
KAJIWARA C, KUSAKA Y, KIMURA S, et al. Metformin mediates protection against legionella pneumonia through activation of AMPK and mitochondrial reactive oxygen species[J]. Journal of Immunology, 2018, 200(2): 623-631. DOI:10.4049/jimmunol.1700474
Effect of Didang Decoction on the expression of energy metabolism related factors in human umbilical vein endothelial cells under high glucose and high glucose fluctuating
REN Qiuyue1 , TIAN Hanlin2 , CHANG Bai3     
1. Tianjin University of Traditional Chinese Medicine, Tianjin 301617, China;
2. Tongren City Bijing District Hospital of Traditional Chinese Medicine, Tongren 554300, China;
3. Tianjin Medical University ZHU Xianyi Memorial Hospital, Tianjin 300134, China
Abstract: [Objective] To observe the effect of Didang Decoction (DDD) on the expression of phosphorylated adenylate activated protein kinase (p-AMPK), peroxisome proliferator activated receptor γ co-activated activator 1α (PGC-1α), endothelial nitric oxide synthase (eNOS), caspase-3 in human umbilical vein endothelial cells (HUVECs) under high glucose and high glucose fluctuation environment, the protective effect of DDD on vascular endothelial cells was discussed. [Methods] HUVECs were cultured in a simulated environment with high glucose and high glucose fluctuation and were intervened by DDD, simvastatin, and metformin respectively. After 48 hours of culture in each group, the protein expressions of p-AMPK, PGC-1α and eNOS were detected by Western blot, the gene content of caspase-3 was detected by real-time PCR (RT-PCR), and the apoptosis rate was detected by flow cytometry. [Results] The expression of p-AMPK, PGC-1α and eNOS in high glucose group and high glucose fluctuation group decreased significantly, and the lowest expression was found in high glucose fluctuation group. The expression of p-AMPK, PGC-1α and eNOS protein were significantly up-regulated after the intervention of DDD, and there was no difference with the intervention of metformin. Caspase-3 gene expression in high glucose group and high glucose fluctuation group were significantly increased, and significantly decreased after intervention with DDD, and there was no difference between them and metformin intervention group. [Conclusion] DDD can promote AMPK phosphorylation, up-regulate the expression of PGC-1α and eNOS proteins, reduce caspase-3 gene level, regulate endothelial cell mitochondrial synthesis and energy metabolism, and reduce endothelial cell apoptosis under high glucose and high glucose fluctuation environment, thus protecting vascular endothelium.
Key words: Didang Decoction    high glucose fluctuating    energy metabolism    p-AMPK    PGC-1α    eNOS    caspase-3