天津中医药  2021, Vol. 38 Issue (11): 1443-1448

文章信息

郑东翔, 钟喨, 黄智峰, 曾建峰, 吴松
ZHENG Dongxiang, ZHONG Liang, HUANG Zhifeng, ZENG Jianfeng, WU Song
芍药甘草汤灌肠治疗大鼠氯胺酮相关性膀胱炎的实验研究
Effect of enema of Shaoyao Gancao Decoction in ketamine cystitis rats
天津中医药, 2021, 38(11): 1443-1448
Tianjin Journal of Traditional Chinese Medicine, 2021, 38(11): 1443-1448
http://dx.doi.org/10.11656/j.issn.1672-1519.2021.11.18

文章历史

收稿日期: 2021-05-13
芍药甘草汤灌肠治疗大鼠氯胺酮相关性膀胱炎的实验研究
郑东翔 , 钟喨 , 黄智峰 , 曾建峰 , 吴松     
中山市中医院泌尿外科, 中山 528400
摘要:[目的] 探讨芍药甘草汤灌肠治疗氯胺酮相关性膀胱炎(KC)模型大鼠的疗效及其作用机制。[方法] 选取SD雄性大鼠40只,随机分为空白组、模型组、左氧氟沙星组、芍药甘草汤组,每组10只。采用氯胺酮连续腹腔注射12周建立KC模型。芍药甘草汤组给予芍药甘草汤水煎剂灌肠治疗,以左氧氟沙星为阳性对照组,给予左氧氟沙星灌肠治疗,空白组给予等量生理盐水灌肠处理,每日1次,持续4周。治疗结束行膀胱尿动力学检测,比较各组大鼠膀胱残余尿量、最大膀胱容量、最大膀胱压力及膀胱顺应性变化情况;疼痛检测比较各组大鼠疼痛阈值;采用苏木精-伊红染色法和酶联免疫吸附法(ELISA)检测各组大鼠膀胱组织病理学改变及血清中白介素-1β(IL-1β)、白介素-6(IL-6)及肿瘤坏死因子-α(TNF-α)的表达变化,蛋白质免疫印迹法检测大鼠膀胱组织中核因子-κB p65(NF-κB p65)、核因子E2相关因子2(Nrf2)、环氧化酶-2(COX-2)蛋白表达水平,TransAMTM ELISA法检测NF-κB p65、Nrf2的DNA结合活性。[结果] 与模型组相比,芍药甘草汤组大鼠膀胱最大容量、残余尿量及膀胱顺应性明显降低,最大膀胱内压明显升高,疼痛阈值明显高于模型组,差异有统计学意义(P < 0.05)。芍药甘草汤组大鼠膀胱组织病理损伤明显改善,大鼠血清中IL-1β、TNF-α、IL-6炎症因子的表达明显降低,大鼠膀胱组织中NF-κB p65、COX-2的表达明显降低,Nrf2的蛋白表达显著上调,同时降低了NF-κB p65的活性,增高了Nrf2活性,差异有统计学意义(P < 0.05)。[结论] 芍药甘草汤能够通过调控NF-κB/COX-2/Nrf2信号通路抑制KC模型大鼠氧化应激及炎症反应,改善膀胱功能,减轻膀胱组织损伤,从而起到治疗KC的作用。
关键词芍药甘草汤    氯胺酮相关性膀胱炎    氧化应激    炎症因子    

氯胺酮是一种临床常见的麻醉药物,主要应用于小儿外科麻醉[1]。由于氯胺酮的兴奋及致幻作用,其逐渐成为娱乐场所滥用的新型毒品[2]。氯胺酮滥用患者多出现明显的泌尿系统损害,临床表现为尿频、尿急、血尿及膀胱区疼痛等,称为氯胺酮相关性膀胱炎(KC)[3]。目前针对KC的治疗药主要包括抗胆碱药物、非甾体类及甾体类抗炎药物,但部分患者药物疗效不佳[4]。多项研究发现,氯胺酮能够通过多种通路增强氧化应激反应,从而导致膀胱炎症的发生。在氯胺酮诱导的KC大鼠模型中,可见膀胱组织环氧化酶-2(COX-2)、一氧化氮合酶(iNOS)和内皮细胞一氧化氮合酶(eNOS)的表达上调,这些氧化应激酶的增加可能在KC发展中起到重要作用[5]。氯胺酮还可引起核因子κB(NF-κB)向核内易位,从而激活COX-2,导致大鼠膀胱炎症[6]。另有研究发现[7],氯胺酮可升高线粒体和内质网介导的氧化应激酶活性,从而导致溃疡性膀胱炎和膀胱细胞凋亡。中医认为KC归属为“淋症”范畴,治以清热利湿、活血祛瘀、通淋止痛为主。芍药甘草汤有养血敛阴,缓急止痛之效,为临床治疗石淋绞痛的常用方。现代药理学研究证明[8],其具有抗氧化、镇痛止痉及抗炎等作用,对尿路感染及尿路结石患者具有较好的疗效。本研究观察芍药甘草汤灌肠对KC模型大鼠的治疗作用,并通过NF-κB/COX-2/Nrf2通路探讨其抑制氧化应激及炎症反应,改善膀胱功能,减轻膀胱组织损伤的作用机制。

1 材料与方法 1.1 实验动物

雄性SD大鼠共40只,SPF级,体质量(200±20)g,饲养于室温18~25 ℃,相对湿度45%~55%环境中,实验前适应性饲养1周。

1.2 药物与试剂

盐酸氯胺酮注射液(2 mL∶0.1 g)购自武汉久安药业有限公司,批号:19011015。左氧氟沙星胶囊(100 mg/片)购自安徽三精万森制药有限公司,批号:181229。芍药甘草汤处方为:白芍30 g,生甘草10 g,由中山市中医院门诊部药房提供实验用生药,经广州中医药大学张丹雁教授鉴定,分别为毛茛科芍药属植物芍药(Paeonia lactiflora Pall.)的干燥根及豆科甘草属植物甘草(Glycyrrhiza uralensis Fisch.)的干燥根及根茎。药材参照《中国药典》2015年版现行标准,经薄层色谱法鉴别,甘草以乙酸乙酯-甲酸-冰醋酸-水(15∶1∶1∶2)为展开剂,甘草酸单铵盐(质量分数98.0%)为对照品;白芍以三氯甲烷-乙酸乙酯-甲醇-甲酸(40∶5∶10∶0.2)为展开剂,芍药苷(质量分数98.8%)为对照品,结果均具有鉴别特征,符合国家标准,可以入药。实验前将药材加水煎煮浓缩,贮存于4 ℃冰箱备用。苏木精-伊红(HE)染色试剂盒购自上海生工生物工程有限公司;IL-6、IL-8、肿瘤坏死因子-α(TNF-α)酶联免疫吸附法(ELISA法)检测试剂盒购自上海酶科生物科技有限公司;总蛋白提取试剂盒购自美国Sigama公司,Anti-NF-κB p65、Anti-COX-2、Anti-Nrf2、Anti-β-actin购自美国R & D公司,TransAMTM NF-κB p65、Nrf2活性检测试剂盒购自Active Motif公司。

1.3 实验方法 1.3.1 实验动物分组与给药

将40只SD大鼠随机分为4组:空白组、模型组、左氧氟沙星组、芍药甘草汤组,每组10只。以左氧氟沙星为阳性对照组,模型组、左氧氟沙星组及芍药甘草汤组采用氯胺酮(30 mg/kg)腹腔注射制备KC模型,每日1次,持续12周。造模停药3 d后,胶体金法检测大鼠尿液标本中氯胺酮浓度,质控区(C)检测线处出现红色条带,而测试区(T)未出现紫红色条带为阳性,证实造模成功。模型制备成功后,芍药甘草汤组按生药量3.6 g/kg保留灌肠,药液临用前用生理盐水稀释至终浓度为0.72 g/mL,加热至30 ℃,采用2 mL注射器连接小儿导尿管缓慢推入。左氧氟沙星组给予40 mg/kg灌肠,正常组给予生理盐水灌肠,给药体积均按5 mL/kg计,每日1次,持续4周。

1.3.2 膀胱尿流动力学检测

各组大鼠腹腔注射水合氯醛(200 mg/kg)麻醉,固定大鼠四肢,行耻骨上缘纵向切口,以直径1 mm的硬膜外导管经尿道插入膀胱,导管连接三通管,三通管与微量灌注泵相连,用生理盐水以0.2 mL/min速率灌注,另一端连接尿动力检测仪的压力换能器,记录大鼠膀胱残余尿量、膀胱最大容量、最大膀胱内压及膀胱顺应性变化,膀胱顺应性=膀胱最大容量/最大膀胱内压。

1.3.3 疼痛阈值检测

参照文献[9]方法,将大鼠单独放置于有金属网格的透明塑料测试笼,适应30 min后,分别以1.0、2.0、4.0、8.0、15.0、20.0 g的纤维细丝依次刺激大鼠肛门与尿道口之间区域,每根纤维刺激10次,每次持续1~2 s,大鼠出现弓背、跳跃,舔咬下腹部等动作为有反应,将反应次数大于5次的纤维力度定为大鼠的疼痛阈值。

1.3.4 HE染色观察膀胱组织病理学变化

取部分膀胱组织于4%多聚甲醛中固定,脱水、透明后石蜡包埋,作5 μm厚切片,再经烤片、脱蜡至水、HE染色、70%盐酸乙醇分化、脱水透明、中性树胶封片等操作后完成制片,光学显微镜下观察膀胱组织的形态学变化。

1.3.5 血清中炎性因子含量检测

大鼠眼球取血,离心后取血清于-20 ℃冰箱保存待测。血清常温下放置1 h后3 000 r/min离心15 min,离心半径13.5 cm,加入样品稀释剂40 μL,抗体100 μL,血清10 μL,置于37℃孵育1 h,洗涤液清洗5次,加入显色液100 μL,37 ℃避光孵育15 min,加入终止液50 μL,于酶标仪450 nm下检测各反应孔OD值,绘制标准曲线,计算血清中白介素-1β(IL-1β)、白介素-6(IL-6)及TNF-α的含量。

1.3.6 膀胱组织中NF-κB p65、COX-2、Nrf2蛋白表达检测

取大鼠膀胱组织100~200 mg,剪碎后置于裂解液中,使用组织匀浆器冰上匀浆,4 ℃离心机12 000 r/min离心20 min,离心半径8 cm,提取总蛋白,BCA法测定蛋白浓度。进行制胶、上样、电泳、转膜和封闭后,一抗4 ℃孵育过夜,TBST洗膜,辣根过氧化物酶(HRP)标记的二抗37 ℃孵育1 h,TBST洗膜。ECL发光液孵育后,凝胶成像分析系统曝光图像,计算目标蛋白与相应内参的光密度比值,分析NF-κB p65、核因子E2相关因子2(Nrf2)、环氧化酶-2(COX-2)的蛋白含量。

1.3.7 膀胱组织中NF-κB p65、Nrf2的活性检测

将蛋白提取液A和B分别加入蛋白酶抑制剂混匀备用,大鼠膀胱组织解冻后,取100~200 mg加入预冷磷酸盐缓冲液(PBS)匀浆,4 ℃离心机离心5 min,离心半径8 cm,后弃上清液,加入蛋白提取液A,高速涡旋震荡,PBS洗涤后离心弃上清液,加入蛋白提取液B,高速涡旋震荡,离心后吸取上清液即得到核蛋白。采用BCA法测定核蛋白浓度,参照Trans AMTM检测试剂盒说明书测定膀胱组织NF-κB p65、Nrf2的DNA活性:分别设置空白孔、样本孔、特异性结合孔、非特异性竞争孔和阳性对照孔,按操作步骤加入反应试剂,于450 nm下测定各孔OD值,根据标准曲线计算NF-κB p65、Nrf2相对结合活性。

1.4 统计学方法

采用SPSS 24.0统计软件进行分析,实验数据以均值±标准差(x±s)表示,多组间比较采用单因素方差分析,组间两两比较采用LSD法。P<0. 05为差异有统计学意义。

2 结果 2.1 膀胱尿动力学检测结果

模型组大鼠膀胱最大容量、残余尿量及膀胱顺应性较空白组显著增加,最大膀胱内压显著降低,差异有统计学意义(P<0.05)。左氧氟沙星组及芍药甘草汤组大鼠膀胱最大容量、残余尿量及膀胱顺应性均低于模型组,最大膀胱内压均高于模型组,差异有统计学意义(P<0.05)。见表 1

表 1 各组大鼠尿动力学指标比较(x±s Tab. 1 Comparison of urodynamic indexes of rats in each group(x±s)
2.2 疼痛阈值比较

模型组大鼠与空白组大鼠比较,疼痛阈值明显降低,差异有统计学意义(P<0.05)。左氧氟沙星组及芍药甘草汤组大鼠与模型组相比,疼痛阈值明显升高,差异有统计学意义(P<0.05)。见表 2

表 2 各组大鼠疼痛阈值比较(x±s Tab. 2 Comparison of pain threshold of rats in each group(x±s)
2.3 膀胱组织病理形态学观察

光镜下可见,空白组大鼠膀胱平滑肌肌束排列有序,肌束间结构紧密,膀胱组织未见异常变化。模型组大鼠与空白组相比,膀胱平滑肌明显增生肥大,固有层充血、水肿,可见大量炎性细胞浸润。左氧氟沙星组及芍药甘草汤组大鼠膀胱组织损伤较模型组减轻,平滑肌增生肥大明显减轻,固有层可见少量炎性细胞浸润,膀胱炎症减轻。见图 1

注:A.空白组;B.模型组;C.左氧氟沙星组;D.芍药甘草汤组。 图 1 各组大鼠膀胱组织病理形态学改变(HE,×200) Fig. 1 Histopathological changes of bladder of rats(HE, ×200)
2.4 血清中IL-1β、IL-6、TNF-α炎症因子含量

模型组大鼠血清中IL-1β、IL-6、TNF-α的含量较空白组明显升高,差异有统计学意义(P<0.05)。左氧氟沙星组及芍药甘草汤组大鼠与模型组比较,IL-1β、IL-6、TNF-α的含量有所降低,差异有统计学意义(P<0.05)。见表 3

表 3 各组大鼠血清中IL-1β、IL-6、TNF-α的表达(x±s Tab. 3 IL-1β、IL-6、TNF-α in serum of rats in each group(x±s)
2.5 膀胱组织中NF-κB p65、COX-2、Nrf2的蛋白表达

模型组大鼠膀胱组织中NF-κB p65、COX-2的蛋白表达显著升高,而Nrf2的表达明显降低,差异有统计学意义(P<0.05)。与模型组比较,左氧氟沙星组及芍药甘草汤组大鼠膀胱组织中NF-κB p65、COX-2的蛋白表达均明显降低,Nrf2的表达显著增加,差异有统计学意义(P<0.05)。见图 2

注:A.空白组;B.模型组;C.左氧氟沙星组;D.芍药甘草汤组。 图 2 各组大鼠膀胱组织中NF-κB p65、COX-2、Nrf2的表达 Fig. 2 Expression of NF-κB p65, COX-2, Nrf2 in bladder tissue of rats in each group
2.6 膀胱组织NF-κB p65、Nrf2的DNA结合活性情况

模型组膀胱组织核蛋白中NF-κB p65的DNA结合活性显著升高,Nrf2的结合活性明显降低(P<0.05)。与模型组比较,左氧氟沙星及芍药甘草汤明显降低了NF-κB p65的DNA结合活性,升高了Nrf2的结合活性(P<0.05)。见表 4

表 4 各组大鼠膀胱组织NF-κB p65、Nrf2的DNA结合活性(x±s Tab. 4 DNA binding activity of NF-κB p65 and Nrf2 in bladder tissue of rats in each group(x±s)
3 讨论

氯胺酮具有麻醉、镇痛效用,常作为麻醉药物用于临床外科手术中,还可用于顽固性癌性疼痛的止痛治疗[1]。由于氯胺酮的中枢神经兴奋及致幻作用,使其成为娱乐场所滥用的新型毒品之一,俗称“K粉”。长期吸食氯胺酮会造成神经系统、心血管系统、泌尿系统等多系统组织器官的毒性损害[2]。近年来,氯胺酮相关性泌尿系统损害逐渐受到国内外学者的关注,尤其对KC的研究逐渐增多。KC临床表现为尿频、尿急、血尿及膀胱区疼痛等症状,目前的治疗方法以戒断氯胺酮为主,配合抗胆碱药物、非甾体类及甾体类抗炎药物,但仍有部分患者药物疗效不佳[3-4]。中医将KC归属为“淋症”范畴,症见小便短赤频数,淋沥刺痛,少腹拘急,或痛引腰腹,治以清热利湿,通淋止痛为主。芍药甘草汤最早记载于张仲景《伤寒论》,由白芍、甘草两味药组成。芍药性酸寒,具有敛阴养血之效,甘草性甘温,有缓急止痛之功,两者配伍可用于治疗肝脾不和,脘腹疼痛,及筋脉失养,腿脚挛急等症。后世医家用其治疗石淋绞痛,发现止痛效果突出[10]。现代药理学研究证实本方具有明显的抗氧化、镇痛止痉及抗炎等作用[6],方中有效成分芍药苷能显著抑制TNF-α的表达,减少炎症细胞浸润,从而缓解炎性疼痛[11]。甘草酸能够降低炎性细胞因子IL-6、IL-10的水平,提高抗氧化能力,缓解炎症症状[12]

KC发生的确切机制尚不清楚,目前发现的可能机制主要有膀胱黏膜毒性损伤、自身免疫反应及氧化应激等[13-15]。氧化应激相关酶COX-2可能在KC的发生过程中具有重要作用[16]。COX-2能够催化花生四烯酸转化为前列腺素,进而诱导炎症反应发生[17]。研究发现[18],氯胺酮能够促进膀胱组织中COX-2的表达,其表达的增加可能是通过NF-κB通路实现的。NF-κB是炎症过程中炎症介质的重要转录因子,与IL-6、TNF-α等多种促炎细胞因子的表达密切相关[19]。Nrf2则是调控抗氧化基因的重要调节因子,能够抑制氧化应激和NF-κB激活对炎症反应起到保护作用[20]。由此可见,NF-κB/COX-2/Nrf2通路在机体炎症反应过程中起着重要作用。

中药保留灌肠是一种中医外治疗法,能够使药物通过直肠静脉丛迅速吸收,并可经门静脉进入体循环,达到整体治疗的效果,与口服给药相比具有药物利用率高,不良反应少的优势[21]。本研究在前期临床试验中采用芍药甘草汤灌肠结合常规治疗方案,发现对KC患者效果显著,患者经治疗后临床症状明显减轻[22]。在此基础上,本研究通过腹腔注射氯胺酮建立大鼠KC模型,探讨芍药甘草汤灌肠治疗对KC的作用机制。实验结果显示,芍药甘草汤灌肠能够降低膀胱最大容量、残余尿量及膀胱顺应性,升高最大膀胱内压,并提高大鼠疼痛阈值,提示其能改善大鼠下尿路功能,减轻膀胱区及尿道疼痛。病理学结果显示,芍药甘草汤治疗后大鼠膀胱组织损伤明显改善,炎性细胞浸润减少,同时,芍药甘草汤能够有效降低IL-1β、TNF-α、IL-6炎症因子水平,降低膀胱组织中NF-κB p65、COX-2的蛋白表达上调Nrf2的表达。模型组大鼠膀胱组织NF-κB p65 DNA结合活性较空白组显著增高,Nrf2结合活性明显降低,提示氯胺酮通过激活NF-κB通路,促进了大鼠膀胱组织氧化应激的发生。芍药甘草汤治疗降低了NF-κB p65的脱氧核糖核酸结合活性,使Nrf2的结合活性增高,表明芍药甘草汤能够通过激活Nrf2增强大鼠抗氧化能力,抑制NF-κB介导的氧化应激及其诱导的炎症反应,从而起到对KC的治疗作用。

参考文献
[1]
曹帅, 王韵. 氯胺酮的临床作用与机制研究进展[J]. 科学通报, 2017, 62(1): 9-15.
CAO S, WANG Y. Research progress on clinical effect and mechanism of ketamine[J]. Chinese Science Bulletin, 2017, 62(1): 9-15.
[2]
彭澎. 氯胺酮成瘾者成瘾过程和滥用危害的调查[J]. 中国医药指南, 2018, 16(22): 297-298.
PENG P. Investigation on the addiction process and abuse harm of ketamine addicts[J]. Guide of China Medicine, 2018, 16(22): 297-298.
[3]
陈志健. 氯胺酮相关性膀胱炎临床研究新进展[J]. 中外医学研究, 2018, 16(4): 182-183.
CHEN Z J. New progress in clinical research of ketamine associated cystitis[J]. Chinese and Foreign Medical Research, 2018, 16(4): 182-183.
[4]
谭伟明, 米华. 氯胺酮相关性膀胱炎发生机制的研究进展[J]. 广东医学, 2016, 37(8): 1243-1245.
TAN W M, MI H. Research progress on pathogenesis of ketamine associated cystitis[J]. Guangdong Medical Journal, 2016, 37(8): 1243-1245.
[5]
CHUANG S M, LIU K M, LI Y L, et al. Dual involvements of cyclooxygenase and nitric oxide synthase expressions in ketamine-induced ulcerative cystitis in rat bladder[J]. Neurourol Urodyn, 2013, 32(8): 1137-1143. DOI:10.1002/nau.22367
[6]
YUNG S J, YI L L, CHENG Y L, et al. Translocation of NF-κB and expression of cyclooxygenase-2 are enhanced by ketamine-induced ulcerative cystitis in rat bladder[J]. American Journal of Pathology, 2015, 185(8): 2269-2285. DOI:10.1016/j.ajpath.2015.04.020
[7]
LIU K M, CHUANG S M, YU L C, et al. Ketamine-induced ulcerative cystitis and bladder apoptosis involve oxidative stress mediated by mitochondria and the endoplasmic reticulum[J]. Am J Physiol Renal Physiol, 2015, 309(4): F318-331. DOI:10.1152/ajprenal.00607.2014
[8]
朱广伟, 张贵君, 汪萌, 等. 中药芍药甘草汤基原及药效组分和药理作用研究概况[J]. 中华中医药杂志, 2015, 30(8): 2865-2869.
ZHU G W, ZHANG G J, WANG M, et al. Research situation about origin, active components alignment and phramacological actions of Shaoyao Gancao Decoction[J]. China Journal of Traditional Chinese Medicine and Pharmacy, 2015, 30(8): 2865-2869.
[9]
ASFAHA S, CENAC N, HOULE S, et al. Protease-activated receptor-4:a novel mechanism of inflammatory pain modulation[J]. British Journal of Pharmacology, 2007, 150(2): 176-185. DOI:10.1038/sj.bjp.0706975
[10]
刘淼, 庞立健, 吕晓东. 芍药甘草汤临证理论再探讨[J]. 中医药通报, 2018, 17(5): 10-13.
LIU M, PANG L J, LYU X D. Further discussion on clinical theory of Shaoyao Gancao Decoction[J]. Traditional Chinese Medicine Journal, 2018, 17(5): 10-13.
[11]
冯伟科, 郭平. 芍药苷药理作用研究进展[J]. 山东中医杂志, 2019, 38(1): 105-108.
FENG W K, GUO P. Research progress on pharmacological action of paeoniflorin[J]. Shandong Journal of Traditional Chinese Medicine, 2019, 38(1): 105-108.
[12]
李想, 李冀. 甘草提取物活性成分药理作用研究进展[J]. 江苏中医药, 2019, 51(5): 81-86.
LI X, LI J. Research progress on pharmacological action of active components of licorice extract[J]. Jiangsu Journal of Traditional Chinese Medicine, 2019, 51(5): 81-86. DOI:10.3969/j.issn.1672-397X.2019.05.029
[13]
许宁, 吴志辉, 瞿根义. 氯胺酮相关泌尿系统损害研究现状[J]. 现代泌尿外科杂志, 2017, 22(2): 152-156.
XU N, WU Z H, QU G Y. Research status of ketamine related urinary system damage[J]. Journal of Modern Urology, 2017, 22(2): 152-156. DOI:10.3969/j.issn.1009-8291.2017.02.018
[14]
袁源, 李晓东, 王乾兴. 氯胺酮诱导中枢神经/泌尿系统损伤的中药治疗机制研究进展[J]. 遵义医科大学学报, 2020, 43(3): 412-418.
YUAN Y, LI X D, WANG Q X. Research progress of traditional Chinese medicine treatment mechanism of ketamine induced central nervous/urinary system injury[J]. Journal of Zunyi Medical University, 2020, 43(3): 412-418.
[15]
谭伟明, 米华. 褪黑素对氯胺酮相关性大鼠膀胱损伤的保护作用[J]. 中国现代医药杂志, 2016, 18(3): 13-16.
TAN W M, MI H. Role of melatonin in protecting ketamine related rat bladder injury[J]. Modern Medicine Journal of China, 2016, 18(3): 13-16. DOI:10.3969/j.issn.1672-9463.2016.03.003
[16]
贺飞, 杨青山, 陈宋林, 等. 滥用氯胺酮导致膀胱功能障碍患者膀胱组织中COX-2的表达及意义[J]. 国际泌尿系统杂志, 2018, 38(5): 776-778.
HE F, YANG Q S, CHEN S L, et al. Expression of COX-2 in ketamine induced bladder dysfunction and its clinical significance[J]. International Journal of Urology and Nephrology, 2018, 38(5): 776-778. DOI:10.3760/cma.j.issn.1673-4416.2018.05.020
[17]
谢翔, 应炜阳, 金胜威. COX-2在炎症消退中的研究进展[J]. 生命的化学, 2016, 36(4): 461-464.
XIE X, YING W Y, JIN S W. Research progress of COX-2 in the regression of inflammation[J]. Chemistry of life, 2016, 36(4): 461-464.
[18]
卢勇, 谭伟明, 牛得草, 等. 褪黑素对氯胺酮所致大鼠膀胱氧化应激损伤的保护作用[J]. 右江民族医学院学报, 2018, 40(1): 13-15.
LU Y, TAN W M, NIU D C, et al. Protective effects of melatonin on oxidative stress injury induced by ketamine in rat bladder[J]. Journal of Youjiang Medical University for Nationalities, 2018, 40(1): 13-15. DOI:10.3969/j.issn.1001-5817.2018.01.004
[19]
孙伟东, 张志强, 朴大勋. NF-κB信号通路抑制结肠炎及炎症相关结肠癌的研究[J]. 医学综述, 2020, 26(8): 1521-1525.
SUN W D, ZHANG Z Q, PIAO D X. Research progress of NF-κB signaling pathway inhibition on colitis and inflammation-associated colon cancer[J]. Medical Recapitulate, 2020, 26(8): 1521-1525. DOI:10.3969/j.issn.1006-2084.2020.08.013
[20]
周秋丽, 周燕. Nrf2/ARE信号通路在氧化应激性疾病的作用研究进展[J]. 世界最新医学信息文摘, 2020, 20(26): 104-105.
ZHOU Q L, ZHOU Y. The research progress of Nrf2/ARE signaling pathway in oxidative stress diseases[J]. World Latest Medicine Information, 2020, 20(26): 104-105. DOI:10.3969/j.issn.1671-3141.2020.26.046
[21]
徐菊, 陆梅, 蒋丽娜, 等. 浅谈中药保留灌肠疗法的临床应用现状[J]. 影像研究与医学应用, 2017, 1(11): 7-8.
XU J, LU M, JIANG L N, et al. A brief discussion on the clinical application of TCM retention enema therapy[J]. Journal of Imaging Research and Medical Applications, 2017, 1(11): 7-8. DOI:10.3969/j.issn.2096-3807.2017.11.004
[22]
郑东翔, 钟喨, 黄智峰, 等. 芍药甘草汤灌肠治疗氯胺酮相关性膀胱炎的临床研究[J]. 中国实用医药, 2021, 16(7): 186-188.
ZHENG D X, ZHONG L, HUANG Z F, et al. Clinical study of Shaoyao Gancao Decoction enema in the treatment of ketamine associated cystitis[J]. China Practical Medicine, 2021, 16(7): 186-188.
Effect of enema of Shaoyao Gancao Decoction in ketamine cystitis rats
ZHENG Dongxiang , ZHONG Liang , HUANG Zhifeng , ZENG Jianfeng , WU Song     
Department of Urology, Zhongshan Hospital of Traditional Chinese Medicine, Zhongshan 528400, China
Abstract: [Objective] To investigate the effect and mechanism of Shaoyao Gancao Decoction enema on ketamine associated cystitis(KC) model rats. [Methods] Forty male SD rats were randomly divided into blank group, model group, levofloxacin group and Shaoyao Gancao Decoction group, with 10 rats in each group. KC model was established by intraperitoneal injection of ketamine for 12 weeks. After successful modeling, Shaoyao Gancao Decoction group was treated by Enema with 5 mL/kg, the positive control group was given levofloxacin, once a day for four weeks. Bladder urodynamic test was performed to compare the changes of residual urine volume, maximum bladder volume, maximum bladder pressure and bladder compliance in each group; pain threshold was detected and compared; He staining and ELISA were used to detect the pathological changes of bladder tissue and the levels of IL-1 β, IL-6 and TNF-α in serum. Western-blot was used to detect the protein expression of NF-κB p65, Nrf2 and COX-2 in bladder tissue. TransAMTM ELISA was used for the detection of DNA binding activity of NF-κB p65 and Nrf2. [Results] Compared with the model group, the maximum bladder volume, residual urine volume and bladder compliance in the Shaoyao Gancao Decoction group were significantly decreased, the maximum bladder internal pressure was increased, and the pain threshold was higher than model group (P < 0.05). And the pathological damage of bladder tissue was improved, the expression of IL-1 β, TNF-α, IL-6 in serum and NF-κB p65, COX-2 protein was decreased, the expression of Nrf2 was up-regulated, while NF-κB p65 activity was decreased and Nrf2 activity was increased (P < 0.05). [Conclusion] Shaoyao Gancao Decoction can inhibit oxidative stress and inflammatory reaction in KC model rats by regulating NF-KB/COX-2/Nrf2 signaling pathway, improve bladder function and reduce bladder tissue damage.
Key words: Shaoyao Gancao Decoction    ketamine cystitis    oxidative stress    inflammatory factor