天津中医药  2021, Vol. 38 Issue (11): 1472-1477

文章信息

胡亚丽, 杨杰, 庞茜茜
HU Yali, YANG Jie, PANG Qianqian
葛根素诱导人肝癌HepG2细胞凋亡与自噬及其分子机制研究
Study of puerarin induce apoptosis and autophagy in human liver cancer HepG2 cells and its molecular mechanism
天津中医药, 2021, 38(11): 1472-1477
Tianjin Journal of Traditional Chinese Medicine, 2021, 38(11): 1472-1477
http://dx.doi.org/10.11656/j.issn.1672-1519.2021.11.22

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收稿日期: 2021-06-28
葛根素诱导人肝癌HepG2细胞凋亡与自噬及其分子机制研究
胡亚丽 , 杨杰 , 庞茜茜     
河北北方学院附属第一医院, 张家口 075000
摘要:[目的] 探索葛根素(Puerarin)诱导人肝癌HepG2细胞凋亡与自噬及其可能的分子机制。[方法] 以二甲基亚砜(DMSO,空白组)、葛根素(50、100、200 μg/mL)、顺铂20 μg/mL分别干预对数生长期人肝癌HepG2细胞。48 h后,CCK-8法检测细胞增殖抑制率,Annexin V-FITC/PI双染法检测细胞凋亡水平,吖啶橙染色法观察细胞自噬状况,蛋白免疫印迹法(Western blot)检测蛋白激酶B(Akt)、磷酸化Akt(p-Akt)、激活型半胱氨酸蛋白酶(Cleaved Caspase-3)、B淋巴细胞瘤-2(Bcl-2)、Bcl-2相关X蛋白(Bax)、磷酸化哺乳动物雷帕霉素靶蛋白(p-mTOR)、酵母ATG6同源物(Beclin1)、微管相关蛋白1轻链3(LC3)蛋白表达。[结果] 与空白组比较,葛根素100、200 μg/mL组和顺铂20 μg/mL组HepG2细胞增殖抑制率和凋亡率显著升高(P < 0.01),自噬溶酶体数量明显增多(P < 0.01),p-Akt、p-mTOR、bcl-2表达明显下调而Cleaved Caspase-3、Bax、Beclin1、LC3-I、LC3-Ⅱ表达明显上调(P < 0.05或P < 0.01),Akt磷酸化(p-Akt/Akt比值)降低且Bax/bcl-2、LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ比值升高(P < 0.01)。与顺铂20 μg/mL组比较,葛根素200 μg/mL组细胞增殖抑制率和凋亡率显著升高(P < 0.05或P < 0.01),自噬溶酶体数量明显增多(P < 0.05),p-Akt、p-mTOR表达下调而Cleaved Caspase-3、Bax、Beclin1、LC3-Ⅱ明显上调(P < 0.05或P < 0.01),Akt磷酸化降低且Bax/Bcl-2、LC3-Ⅱ/LC3-I比值升高(P < 0.01)。[结论] 葛根素具有诱导人肝癌HepG2细胞凋亡与自噬的作用,该作用具有一定的剂量依赖性;抑制Akt/mTOR/Beclin1通路进而诱导促凋亡、促自噬相关蛋白表达和活化可能是其重要的分子机制。
关键词葛根素    肝癌    凋亡    自噬    Akt/mTOR/Beclin1通路    

肝癌是威胁中国人民生命健康的主要恶性肿瘤之一,发病率居恶性肿瘤第4位、病死率居第3位[1]。手术切除并辅以放化疗是临床治疗肝癌的首选方案,但术后5年复发率超过60%、5年生存率不足40%[2]。中医药抗肿瘤逐渐得到人们的关注与认可,葛根素(Puerarin)是从中药葛根中提取的1类具有异黄酮类化合物,包括葛根素、胡萝卜苷、β-谷甾醇等活性成分,呈白色至微黄色结晶性粉末、微溶于水,具有抗炎、抗氧化、降血压、调节血脂、抗心律失常等多种药理学作用[3]。近年来葛根素抗肿瘤活性很受关注,对胰腺癌、非小细胞肺癌、结肠癌等均具有一定的抑制作用[4]。阻滞肿瘤细胞周期进程、诱导肿瘤细胞凋亡和自噬是葛根素抗肿瘤的作用机制[5-6]。本实验以临床治疗肝癌一线化疗用药顺铂为阳性对照,设葛根素3个剂量组进行干预,研究不同剂量葛根素对人肝癌HepG2细胞凋亡、自噬的影响并探讨其可能的分子机制。

1 材料与方法 1.1 细胞

人肝癌HepG2细胞购自上海中科院细胞库。HepG2细胞接种于含10%胎牛血清和双抗(100 U/mL链霉素-青霉素)的DMEM培养基,置细胞培养箱(37℃、5% CO2)中进行培养,细胞贴壁生长,细胞汇合度约80%时进行传代。取第3代对数生长期HepG2细胞开展实验研究,设空白组、葛根素(50、100、200 μg/mL)组和顺铂20 μg/mL组[7-8]

1.2 药物与试剂

葛根素购自上海源叶生物科技有限公司(纯度≥99%,批号:B21028);注射用顺铂购自齐鲁制药有限公司(国药准字H37021357,规格20 mg/支,批号:1905016);DMEM培养基、二甲基亚砜(DMSO)、胰酶、胎牛血清购自上海源叶生物科技有限公司;CCK-8试剂盒购自北京索莱宝科技有限公司;Annexin V-FITC/PI凋亡试剂盒、BCA蛋白浓度测定试剂盒、山羊抗兔IgG二抗购自上海碧云天生物技术研究所;兔抗人蛋白激酶B(Akt)、磷酸化Akt(p-Akt)、激活型半胱氨酸蛋白酶(Cleaved Caspase-3)、B淋巴细胞瘤-2(Bcl-2)、Bcl-2相关X蛋白(Bax)、磷酸化哺乳动物雷帕霉素靶蛋白(p-mTOR)、酵母ATG6同源物(Beclin1)、微管相关蛋白1轻链3(LC3)抗体购自北京中杉金桥生物技术有限公司;二氨基联苯胺(DAB)显色试剂盒购自杭州四季青生物工程材料有限公司。

1.3 主要仪器

BB15型细胞培养箱(德国Heraeus公司);LB940型酶标仪(德国Berthold公司);SE300型电泳仪、TE22型转膜仪(美国Hoefer公司);FACSAria型流式细胞仪(美国BD公司);BX53型荧光显微镜(日本Olympus公司)。

1.4 细胞增殖抑制率检测

取对数生长期HepG2细胞,消化、重悬并计数后调整细胞浓度为1×105个/mL,100 μL/孔接种于96孔培养板,培养24 h后更换培养液,并以DMSO(空白组)和终浓度(50、100、200 μg/mL)葛根素、20 μg/mL顺铂进行干预,每组设10个复孔,继续培养48 h后每孔10 μL加入CCK-8溶液,放回培养箱继续培养2 h后通过酶标仪检测450 nm处吸光度值(A),细胞增殖抑制率(%)=(1-A药物组/A空白组)×100%

1.5 细胞凋亡水平检测

取浓度1×105个/mL的HepG2细胞悬液,500 μL/孔接种于6孔细胞培养板,培养24 h后更换培养液,分组并分别以相应浓度药物进行干预,每组设10个复孔,继续培养48 h后通过不含乙二胺四乙酸(EDTA)的胰酶消化、离心(2 000 r/min,离心半径8 cm,5 min)收集细胞,经磷酸盐缓冲液(PBS)洗涤后,按照Annexin V-FITC/PI试剂盒操作说明依次处理,通过流式细胞仪分析细胞凋亡水平。

1.6 细胞自噬溶酶体水平检测

取浓度1×105个/mL的HepG2细胞悬液,200 μL/孔接种于24孔板,培养24 h后更换培养液,分组并分别以相应浓度药物进行干预,每组设10个复孔,继续培养48 h后弃培养液、PBS洗涤3次,500 μL/孔滴加吖啶橙溶液(1 mg/L)避光孵育15 min,PBS洗涤3次后通过荧光显微镜观察(自噬溶酶体呈红色荧光)。

1.7 细胞蛋白表达检测

取对数生长期HepG2细胞,消化、重悬并计数后调整细胞浓度为1×106个/mL,每孔1 mL接种于60 mm培养皿,放回细胞培养箱继续培养24 h后更换培养液,分组并分别以相应浓度药物进行干预,每组设10个皿,继续培养48 h后消化、离心(2 000 r/min,离心半径8 cm,5 min)收集细胞,冰上裂解30 min,低温4 ℃离心(12 000 r/min,离心半径8 cm,15 min)取上清液,BCA法检测总蛋白浓度、95 ℃水浴10 min蛋白变性,取总蛋白30 μg行十二烷基硫酸钠聚丙烯酰胺凝胶电泳、湿转法将蛋白转移到聚偏二氟乙烯(PVDF)膜上、置5%蛋白免疫印迹封闭液室温封闭2 h,滴加Akt、p-Akt、Cleaved Caspase-3、Bcl-2、Bax、p-mTOR、Beclin1、LC3、β-actin抗体4 ℃孵育过夜,洗膜后滴加二抗室温孵育1 h,洗膜后滴加DAB显色,应用ImageJ软件进行分析,以β-actin为内参半定量目标蛋白相对表达量。

1.8 统计学处理

采用GraphPad prism 6软件进行统计分析,计量资料以均数±标准差(x±s)表示,多组间比较采用单因素方差分析,组间两两比较采用LSD法检测,P < 0.05为差异有统计学意义。

2 结果 2.1 各组HepG2细胞增殖抑制率比较

与空白组比较,葛根素50、100、200 μg/mL组和顺铂20 μg/mL组HepG2细胞增殖抑制率显著升高(P < 0.01);与顺铂20 μg/mL组比较,葛根素200 μg/mL组细胞增殖抑制率升高(P < 0.05)。见表 1

表 1 各组HepG2细胞增殖抑制率和凋亡率比较(x±s Tab. 1 Comparison of proliferation inhibition rate and apoptosis rate of HepG2 cells in each group(x±s)
2.2 各组HepG2细胞凋亡水平比较

与空白组比较,葛根素50、100、200 μg/mL组和顺铂20 μg/mL组HepG2细胞凋亡数量明显增多,凋亡率显著升高(P < 0.01);与顺铂20 μg/mL组比较,葛根素200 μg/mL组HepG2细胞凋亡率升高(P < 0.05)。见图 1表 1

注:A.空白组;B.葛根素50 μg/mL组;C.葛根素100 μg/mL组;D.葛根素200 μg/mL组;E.顺铂20 μg/mL组。 图 1 各组HepG2细胞凋亡水平比较 Fig. 1 Comparison of apoptosis levels of HepG2 cells in each group
2.3 各组HepG2细胞自噬水平比较

与空白组比较,葛根素50、100、200 μg/mL组和顺铂20 μg/mL组自噬溶酶体(亮红色荧光)呈不同程度增多,葛根素作用呈现一定剂量依赖性,葛根素200 μg/mL组自噬溶酶体数量明显多于其他组,提示葛根素具有诱导HepG2细胞自噬的作用。见图 2

注:A.空白组;B.葛根素50 μg/mL组;C.葛根素100 μg/mL组;D.葛根素200 μg/mL组;E.顺铂20 μg/mL组。 图 2 各组HepG2细胞自噬水平比较(吖啶橙染色,×200倍) Fig. 2 Comparison of autophagy levels of HepG2 cells in each group (acridine orange staining, ×200)
2.4 各组HepG2细胞Akt、p-Akt、p-mTOR表达及Akt磷酸化(p-Akt/Akt比值)比较

与空白组比较,葛根素100、200 μg/mL组和顺铂20 μg/mL组HepG2细胞p-Akt、p-mTOR表达明显下调(P < 0.01),Akt表达差异无统计学意义(P > 0.05),Akt磷酸化明显降低(P < 0.01);与顺铂20 μg/mL组比较,葛根素200 μg/mL组p-Akt、p-mTOR表达下调(P < 0.05或P < 0.01),Akt磷酸化降低(P < 0.01)。见图 3表 2

注:A.空白组;B.葛根素50 μg/mL组;C.葛根素100 μg/mL组;D.葛根素200 μg/mL组;E.顺铂20 μg/mL组。 图 3 各组HepG2细胞Akt、p-Akt、p-mTOR表达比较 Fig. 3 Comparison of Akt, p-Akt, p-mTOR expression of HepG2 cells in each group
表 2 各组HepG2细胞Akt、p-Akt、p-mTOR表达及Akt磷酸化比较(x±s Tab. 2 Comparison of Akt, p-Akt, p-mTOR expression and Akt phosphorylation of HepG2 cells in each group(x±s)
2.5 各组HepG2细胞Cleaved Caspase-3、Bcl-2、Bax、Beclin1、LC3表达及Bax/Bcl-2、LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ比值比较

与空白组比较,葛根素100、200 μg/mL组和顺铂20 μg/mL组HepG2细胞Cleaved Caspase-3、Bax、Beclin1、LC3-Ⅰ、LC3-Ⅱ表达明显上调而Bcl-2表达下调(P < 0.01),Bax/Bcl-2、LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ比值显著升高(P < 0.01);与顺铂20 μg/mL组比较,葛根素200 μg/mL组Cleaved Caspase-3、Bax、Beclin1、LC3-Ⅱ上调(P < 0.05或P < 0.01),两组间Bcl-2表达差异无统计学意义(P > 0.05),Bax/Bcl-2、LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ比值升高(P < 0.05或P < 0.01)。见图 4表 3表 4

注:A.空白组;B.葛根素50 μg/mL组;C.葛根素100 μg/mL组;D.葛根素200 μg/mL组;E.顺铂20 μg/mL组。 图 4 各组HepG2细胞Cleaved Caspase-3、bcl-2、Bax、Beclin1、LC3表达比较 Fig. 4 Comparison of Cleaved Caspase-3, bcl-2, Bax, Beclin1, LC3 expression of HepG2 cells in each group
表 3 各组HepG2细胞Cleaved Caspase-3、Bcl-2、Bax表达及Bax/Bcl-2比值比较(x±s Tab. 3 Comparison of Cleaved Caspase-3, Bcl-2, Bax expression and the ratio of Bax/Bcl-2 of HepG2 cells in each group(x±s)
表 4 各组HepG2细胞Beclin1、LC3-Ⅰ、LC3-Ⅱ表达及LC3-II/LC3-I比值比较(x±s Tab. 4 Comparison of Beclin1, LC3-Ⅰ, LC3-Ⅱ expression and the ratio of LC3-II/LC3-I of HepG2 cells in each group(x±s)
3 讨论

肝癌是世界范围内常见恶性肿瘤之一,每年新发病例超过100万,其中40%以上的患者分布在中国,中国肝癌发病率居恶性肿瘤第四位、病死率居第3位[9]。虽然近年来人民生活条件明显改善、乙型肝炎疫苗得到普及,但肝癌发病率并未出现下降趋势。因此,寻找新型高效的抗肝癌药物仍是目前医药工作者的研究热点。

肝癌在中医属“癥瘕”“臌胀”“黄疸”等范畴,中药葛根以豆科植物野葛的干燥根入药,收入《中国药典》,是长期应用于临床的中药品种,葛根素是提取自葛根的一种异黄酮类化合物,目前临床上主要用于缺血性心脑血管疾病的治疗,近年来葛根素抗肿瘤活性得到广泛关注。本实验研究发现,经葛根素干预能够明显提高人肝癌HepG2细胞增殖抑制率和凋亡率,诱导自噬溶酶体生成;葛根素200 μg/mL组效果优于顺铂20 μg/mL组,提示葛根素具有诱导HepG2细胞凋亡和自噬的药理学作用。

凋亡和自噬是细胞程序性自主死亡的两种主要途径,均由多种基因调控[10]。线粒体介导的内源性凋亡途径由Bcl-2家族、Caspase家族蛋白等参与调控[11]。肿瘤发病过程中,由于肿瘤细胞过度增殖但新生血管相对缺乏而局部缺氧,引发氧化应激、炎症反应、Ca2+超载等而病理性刺激Bcl-2家族蛋白Bax上调表达并移位到线粒体膜、导致膜通透性改变,细胞色素C(Cyt C)释放,从而启动细胞凋亡。Cyt C是Caspase家族蛋白的主要激活因子,其中Cleaved Caspase-3将通过剪切细胞结构蛋白等而诱导细胞凋亡,是细胞凋亡最重要的执行者;Bcl-2蛋白位于线粒体膜,能够与Bax形成异源二聚体而抑制Bax促凋亡活性,保护线粒体膜通透性,表现出抑凋亡活性[12]。LC3蛋白位于于自噬溶酶体膜,能够与线粒体受体蛋白结合而诱导期降解,因此LC3可作为细胞自噬活性的标志蛋白[13]。LC3以LC3-Ⅰ和LC3-Ⅱ两种亚型存在,LC3-Ⅱ具有自噬活性,当细胞自噬发生时无活性的LC3-Ⅰ将转化为LC3-Ⅱ,因此LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ比值能够反映细胞自噬水平[14]。本研究发现,经葛根素干预能够明显上调人肝癌HepG2细胞Cleaved Caspase-3、Bax、LC3-I、LC3-Ⅱ表达并下调Bcl-2表达,提高Bax/Bcl-2、LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ比值,并且葛根素200 μg/mL组对上述蛋白表达的调节作用优于顺铂20 μg/mL组。

Akt是一种原癌基因,被磷酸化(p-Akt)激活后能够诱导Caspase家族蛋白磷酸化而失活,抑制Bax表达与转移[15]。mTOR为Akt下游基因,能够被p-Akt诱导mTOR磷酸化(p-mTOR)而激活,进而诱导细胞周期素上调表达而促进细胞增殖、清除泛素蛋白而抑制细胞自噬[16]。此外,p-mTOR能够诱导下游自噬特征蛋白Beclin1磷酸化而失活,Beclin1是介导LC3等自噬蛋白位移至自噬体的关键因子,从而间接促进细胞自噬[17]。本研究发现,经葛根素干预能够明显下调p-Akt、p-mTOR表达并抑制Akt磷酸化,上调Beclin1表达,并且葛根素200 μg/mL组对p-Akt、p-mTOR、Beclin1表达及Akt磷酸化的调控作用优于顺铂20 μg/mL组,提示葛根素对HepG2细胞凋亡、自噬的调控作用可能与抑制Akt/mTOR/Beclin1通路有关。

综上所述,葛根素具有诱导人肝癌HepG2细胞凋亡与自噬的药理学作用,抑制Akt/mTOR/Beclin1通路进而诱导促凋亡、促自噬相关蛋白表达与活化可能是其重要的分子机制。本研究为体外细胞实验,结果提示葛根素具有较良好的抗肝癌细胞活性,但肝癌的发生发展具有复杂的病理机制,受多种因素影响,因此葛根素抗肝癌作用及相关机制仍需体内实验进一步研究。

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Study of puerarin induce apoptosis and autophagy in human liver cancer HepG2 cells and its molecular mechanism
HU Yali , YANG Jie , PANG Qianqian     
The First Affiliated Hospital of Hebei North University, Zhangjiakou 075000, China
Abstract: [Objective] To study the effects of puerarin induce apoptosis and autophagy in human liver cancer HepG2 cells and its molecular mechanism. [Methods] The DMSO (blank control group), puerarin (50, 100, 200 μg/mL) and cisplatin 20 μg/mL were used to interfere with human liver cancer HepG2 cells in logarithmic growth respectively. 48h later, the proliferation inhibition rate of HepG2 cells was detected by CCK-8 method, the apoptosis level was detected by Annexin V-FITC/PI double staining; the autophagy of cells was observed by acridine orange staining; the expression of Akt, p-Akt, Cleaved Caspase-3, bcl-2, Bax, p-mTOR, Beclin1, LC3 proteins were detected by Western blot. [Results] Compared with blank group, the proliferation inhibition rate and apoptosis rate of puerarin 100 μg/mL group. Puerarine 200 μg/mL group and cisplatin 20 μg/mL group were increased (P < 0.01), the number of autophagolysosomes was significantly increased (P < 0.01);the expression of p-Akt, p-mTOR, bcl-2 were down-regulated and the expression of Cleaved Caspase-3, Bax, Beclin1, LC3-Ⅰ, LC3-Ⅱ were up-regulated (P < 0.05 or P < 0.01), the Akt phosphorylation ratio (p-Akt/Akt) was decreased and the Bax/bcl-2, LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ ratio were increased (P < 0.01). Compared with Cisplatin 20 μg/mL group, the proliferation inhibition rate and apoptosis rate of puerarin 200 μg/mL group were increased(P < 0.01 or P < 0.01), the number of autophagolysosomes was significantly increased (P < 0.05);the expression of p-Akt, p-mTOR were down-regulated and the expression of Cleaved Caspase-3, Bax, Beclin1, LC3-Ⅱ were up-regulated (P < 0.05 or P < 0.01), the Akt phosphorylation ratio was decreased and the Bax/bcl-2, LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰratio were increased (P < 0.01). [Conclusion] Puerarin can induce apoptosis and autophagy in human liver cancer HepG2 cells, which has a dose-dependent effect; inhibiting Akt/mTOR signaling pathway to induce pro-apoptosis, autophagy-related protein expression and activation may be its important molecular mechanism.
Key words: puerarin    liver cancer    apoptosis    autophagy    Akt/mTOR/Beclin1 pathway