天津中医药  2022, Vol. 39 Issue (3): 386-391

文章信息

马漪, 谢琼
MA Yi, XIE Qiong
苦参碱对结肠癌肝转移小鼠SCAP/SREBP1信号通路的调节作用研究
Regulatory effect of matrine on SCAP/SREBP1 signal pathway in mice with liver metastasis of colon cancer
天津中医药, 2022, 39(3): 386-391
Tianjin Journal of Traditional Chinese Medicine, 2022, 39(3): 386-391
http://dx.doi.org/10.11656/j.issn.1672-1519.2022.03.23

文章历史

收稿日期: 2021-12-22
苦参碱对结肠癌肝转移小鼠SCAP/SREBP1信号通路的调节作用研究
马漪 , 谢琼     
湖南中医药大学第一附属医院肿瘤科,长沙 410000
摘要:[目的] 研究苦参碱对结肠癌肝转移小鼠肿瘤抑制作用及对SCAP/SREBP1信号通路的调节作用。[方法] 72只小鼠随机分为空白对照组、肝转移模型组、苦参碱低、中、高剂量组及卡培他滨组,每组12只,采用脾内注射结肠癌HCT116细胞法建立结肠癌肝转移小鼠模型,苦参碱低、中、高剂量组分别灌胃给予12.5、25、50 mg/kg的苦参碱,给药21 d,卡培他滨组按照267 mg/kg灌胃给予卡培他滨,测定小鼠肝脏质量及肝转移结节数,酶联免疫吸附法(ELISA)测定肝组织转化生长因子β1蛋白(TGF-β1)、白介素(IL)-6水平,苏木精-伊红(HE)染色法检查肝组织病理学,实时定量聚合酶链式反应(PCR)测定肿瘤组织SCAP、SREBP1 mRNA水平,免疫印迹(Western blot)法测定肿瘤组织SCAP、SREBP1水平。[结果] 与空白对照组比较,肝转移模型组小鼠肝脏质量、肝转移结节数、肝组织TGF-β1及IL-6水平、肿瘤组织SCAP、SREBP1 mRNA及蛋白水平显著升高(P < 0.05);与肝转移模型组比较,苦参碱各剂量组肝脏质量、肝转移结节数、肝组织TGF-β1及IL-6水平、肿瘤组织SCAP、SREBP1 mRNA及蛋白水平显著降低(P < 0.05),随着苦参碱剂量的增加,各项指标降低更明显。[结论] 苦参碱能够显著抑制结肠癌肝转移,缓解肝组织病理学改变,其机制可能与调节SCAP/SREBP1信号通路有关。
关键词苦参碱    结肠癌肝转移    SCAP/SREBP1信号通路    

结直肠癌是最常见的消化道恶性肿瘤之一,发病率居女性第2位,男性第3位[1]。目前,结肠癌的发病率和病死率呈逐年上升趋势,其主要治疗方法是手术治疗,但对于晚期复发或转移的患者,手术治疗效果并不理想。研究表明[2]肿瘤转移是大多数癌症患者死亡和治疗失败的主要原因,而通过血液途径转移到肝脏被认为是结肠癌患者死亡的主要原因。研究证实[3]结肠癌的预后与转移尤其是肝转移密切相关,因此抑制肝转移的发生是提高结肠癌的治疗效果的手段之一。因此,结肠癌肝转移的治疗是目前临床的迫切需要。苦参碱是从中药材苦参中提取得到的生物碱类物质,近年来研究证实[4-5]其对于结肠癌的治疗表现出显著效果。本文通过研究苦参碱对结肠癌肝转移小鼠的肿瘤抑制作用及对SCAP/SREBP1通路的调节作用,为苦参碱的药理作用研究提供参考。

1 材料与方法 1.1 细胞株人结肠癌

HCT116细胞购自中科院上海细胞库。

1.2 实验动物

雄性Balb/c裸小鼠,SPF级,6~8周龄,22~24g,购自于长沙市天勤生物技术有限公司[实验动物许可证号SCXK(湘)2019-0014],饲养于SPF级实验动物房。

1.3 药品及试剂

苦参碱(上海纯优生物科技有限公司,批号19080911,纯度 > 98%);卡培他滨(上海罗氏制药有限公司,批号20191011);SCAP、SREBP1兔多克隆抗体(艾博抗上海贸易有限公司,货号ab190103、ab28481);辣根过氧化物酶标记山羊抗兔IgG、转化生长因子β1蛋白(TGF-β1)及白介素(IL)-6酶联免疫吸附法(ELISA)试剂盒(碧云天生物科技有限公司,货号A0208、PT878、PI328);TRIzol试剂、cDNA提取试剂盒(赛默飞世尔科技有限公司,货号15596018、K1672);苏木精-伊红(HE)染色试剂盒、高效RIPA裂解液、ECL Plus超敏发光液、DMEM培养基(北京索莱宝科技有限公司,货号G1120、R0010、PE0010、11995)。

1.4 设备与仪器

BX51型倒置显微镜(日本奥林巴斯公司);QuantStudio 3实时PCR系统(赛默飞世尔科技有限公司);CUT4060石蜡切片机(德国MicroTel公司);GelDoc Go凝胶成像系统(伯乐生命医学有限公司);Allegra X-15R台式冷冻离心机(贝克曼库尔特商贸有限公司);7000CO2细胞培养箱(美国Napco公司)。

1.5 分组及给药

取结肠癌HCT116细胞,加入DMEM培养基,培养于5%CO2培养箱中,隔天进行传代培养,当细胞活力达到95%时,使用胰蛋白酶消化细胞,收集细胞并调整细胞密度为2×107个/mL。

72只小鼠随机分为空白对照组、肝转移模型组、苦参碱低、中、高剂量组及卡培他滨组,每组12只,参照文献方法[6]建立结肠癌肝转移小鼠模型,小鼠麻醉后称质量,取仰卧位将小鼠固定于手术台上,沿腹部正中切开,从脾下极贴近脾包膜向脾内注射0.2 mL HCT116细胞悬液,缝合,关腹,空白对照组小鼠只进行假手术,不注射细胞悬液,7 d后小鼠腹部超声显示肝脏部位可见直径为1 cm左右肿瘤生成视为造模成功。苦参碱低、中、高剂量组分别灌胃给予12.5、25、50 mg/kg[7]的苦参碱,给药21 d[8],卡培他滨组按照267 mg/kg[9]灌胃给予卡培他滨,给药14 d,停药7 d,空白对照组及肝转移模型组灌胃给予生理盐水。

1.6

小鼠肝脏质量及肝转移结节数的测定小鼠处死后分离肝脏,并进行称质量,检查各组小鼠肝脏表面肝转移结节数。

1.7 肝组织TGF-β1、IL-6测定

取小鼠肝组织样品在4 ℃预冷磷酸盐缓冲液中研磨匀浆,15 000 r/min,离心半径10 cm,4℃离心15 min,取上清液,用TGF-β1、IL-6 ELISA试剂盒检测肝组织上清液中TGF-β1、IL-6水平。

1.8 HE染色

小鼠肝组织在4%中性甲醛固定24 h,脱水、透明处理后,石蜡包埋,石蜡切片机进行5 μm切片,经常规HE染色后,在显微镜下采用盲法进行组织病理学检查。

1.9 肿瘤组织SCAP、SREBP1 mRNA测定

小鼠处死后,分离肿瘤组织,使用TRIzol试剂进行总RNA提取,用cDNA逆转录酶试剂盒将总RNA逆转录成cDNA。各基因引物如表 1所示,应用梯度实时定量聚合酶链式反应(PCR)扩增系统,PCR检测SCAP、SREBP1mRNA在肿瘤组织中的表达。结果以GAPDH为内参,采用2-ΔΔCT法计算SCAP、SREBP1 mRNA相对表达水平。

表 1 各基因引物序列 Tab. 1 Primer sequence of genes
1.10 肿瘤组织SCAP、SREBP1蛋白水平测定

小鼠处死后取肿瘤组织,加入裂解液,研磨匀浆并离心后,测定蛋白浓度,各组取含有50 μg蛋白的上清液,进行十二烷基硫酸钠聚丙烯酰胺凝胶电泳、分离后将蛋白转移到聚偏氟乙烯膜上,用5%牛血清白蛋白室温封闭1 h,用SCAP、SREBP1(1∶1 000稀释)兔多克隆抗体和辣根过氧化物酶标记山羊抗兔二抗(1∶2 000稀释)孵育,使用ECL试剂和凝胶成像系统成像,ImageJ14.0软件定量分析SCAP、SREBP1蛋白水平。

1.11 数据处理数据

所有统计分析使用SPSS 20.0软件进行,数据用均数±标准差(x±s)表示。计量资料符合正态分布且方差齐,多组间比较采用单因素方差分析,组间两两比较采用LSD-t检验,P < 0.05为差异有统计学意义。

2 结果 2.1 苦参碱对结肠癌肝转移小鼠肝脏质量及肝转移结节数的影响

苦参碱对结肠癌肝转移小鼠肝脏重量及肝转移结节数的影响如图 1图 2所示,与空白对照组比较,肝转移模型组小鼠肝脏质量及肝转移结节数显著增加(P < 0.05);与肝转移模型组比较,苦参碱各剂量组及卡培他滨组肝脏质量及肝转移结节数显著减少(P < 0.05),随着苦参碱剂量的增加,肝脏质量及肝转移结节数降低更明显。

注:1.空白对照组;2.肝转移模型组;3.苦参碱低剂量组;4.苦参碱中剂量组;5.苦参碱高剂量组;6.卡培他滨组。与空白对照组比较,*P < 0.05;与肝转移模型组比较,#P < 0.05;与苦参碱低剂量组比较,P < 0.05;与苦参碱中剂量组比较,P < 0.05。 图 1 各组小鼠肝脏质量比较结果 Fig. 1 Comparison of liver weights of mice in each group
注:1.空白对照组;2.肝转移模型组;3.苦参碱低剂量组;4.苦参碱中剂量组;5.苦参碱高剂量组;6.卡培他滨组。与空白对照组比较,*P < 0.05;与肝转移模型组比较,#P < 0.05;与苦参碱低剂量组比较,P < 0.05;与苦参碱中剂量组比较,P < 0.05。 图 2 各组小鼠肝转移结节数比较结果 Fig. 2 Comparison of the number of liver metastasis nodules in each group of mice
2.2 苦参碱对结肠癌肝转移小鼠肝组织TGF-β1、IL-6的影响

苦参碱对结肠癌肝转移小鼠肝组织TGF-β1、IL-6的影响如图 3图 4所示,与空白对照组比较,肝转移模型组小鼠肝组织TGF-β1、IL-6水平显著升高(P < 0.05);与肝转移模型组比较,苦参碱各剂量组及卡培他滨组肝组织TGF-β1、IL-6水平显著降低(P < 0.05),随着苦参碱剂量的增加,肝组织TGF-β1、IL-6水平降低更明显。

注:1.空白对照组;2.肝转移模型组;3.苦参碱低剂量组;4.苦参碱中剂量组;5.苦参碱高剂量组;6.卡培他滨组。与空白对照组比较,*P < 0.05;与肝转移模型组比较,#P < 0.05;与苦参碱低剂量组比较,P < 0.05;与苦参碱中剂量组比较,P < 0.05。 图 3 各组小鼠肝组织TGF-β1水平比较结果 Fig. 3 Comparison of TGF-β1 levels in liver tissues of mice in each group
注:1.空白对照组;2.肝转移模型组;3.苦参碱低剂量组;4.苦参碱中剂量组;5.苦参碱高剂量组;6.卡培他滨组。与空白对照组比较,*P < 0.05;与肝转移模型组比较,#P < 0.05;与苦参碱低剂量组比较,P < 0.05;与苦参碱中剂量组比较,P < 0.05。 图 4 各组小鼠肝组织IL-6水平比较结果 Fig. 4 Comparison of IL-6 levels in liver tissues of mice in each group
2.3 肝组织HE染色结果

肝组织病理学检查如图 5所示,空白对照组小鼠肝组织未见明显病理学变化,与空白对照组比较,肝转移模型组小鼠肝组织肿瘤细胞聚集,伴肝组织细胞炎症浸润及坏死脱落;与肝转移模型组比较,苦参碱各剂量组及卡培他滨组肝组织肿瘤细胞聚集减轻,病理学改善。

注:A.空白对照组;B.肝转移模型组;C.苦参碱低剂量组;D.苦参碱中剂量组;E.苦参碱高剂量组;F.卡培他滨组。箭头:炎性细胞浸润;箭标:肿瘤细胞聚集。 图 5 肝组织病理学检查结果(HE染色,×400) Fig. 5 Liver histopathological examination results (HE staining, ×400)
2.4 苦参碱对结肠癌肝转移小鼠肿瘤组织SCAP、SREBP1 mRNA的影响

苦参碱对结肠癌肝转移小鼠肿瘤组织SCAP、SREBP1 mRNA的影响如图 6所示,与空白对照组比较,肝转移模型组小鼠肿瘤组织SCAP、SREBP1 mRNA水平显著升高(P < 0.05);与肝转移模型组比较,苦参碱各剂量组及卡培他滨组肿瘤组织SCAP、SREBP1 mRNA水平显著降低(P < 0.05),随着苦参碱剂量的增加,肿瘤组织SCAP、SREBP1 mRNA水平降低更明显。

注:1.空白对照组;2.肝转移模型组;3.苦参碱低剂量组;4.苦参碱中剂量组;5.苦参碱高剂量组;6.卡培他滨组。与空白对照组比较,*P < 0.05;与肝转移模型组比较,#P < 0.05;与苦参碱低剂量组比较,P < 0.05;与苦参碱中剂量组比较,P < 0.05。 图 6 小鼠肿瘤组织SCAP、SREBP1 mRNA水平比较结果 Fig. 6 Comparison of SCAP and SREBP1 mRNA levels in mouse tumor tissues
2.5 苦参碱对结肠癌肝转移小鼠肿瘤组织SCAP、SREBP1蛋白表达的影响

苦参碱对结肠癌肝转移小鼠肿瘤组织SCAP、SREBP1蛋白表达的影响如图 7所示,与空白对照组比较,肝转移模型组小鼠肿瘤组织SCAP、SREBP1蛋白水平显著升高(P < 0.05);与肝转移模型组比较,苦参碱各剂量组及卡培他滨组肿瘤组织SCAP、SREBP1蛋白水平显著降低(P < 0.05),随着苦参碱剂量的增加,肿瘤组织SCAP、SREBP1蛋白水平降低更明显。

注:1.空白对照组;2.肝转移模型组;3.苦参碱低剂量组;4.苦参碱中剂量组;5.苦参碱高剂量组;6.卡培他滨组。与空白对照组比较,*P < 0.05;与肝转移模型组比较,#P < 0.05;与苦参碱低剂量组比较,P < 0.05;与苦参碱中剂量组比较,P < 0.05。 图 7 苦参碱对结肠癌肝转移小鼠肿瘤组织SCAP、SREBP1蛋白表达的影响 Fig. 7 The effect of matrine on the expression of SCAP and SREBP1 protein in tumor tissues of mice with liver metastases from colon cancer
3 讨论

结肠癌肝转移是结肠癌进展过程中常见的远处转移现象之一,临床中表现出进行性贫血、低热、肝肿大、黄疸和腹水等多种症状,严重影响患者生存质量及预后。研究表明[10]结肠癌肝转移的发病率较高,约有50%的结肠癌患者会并发肝转移。目前临床中对于结肠癌肝转移的治疗采用全身化疗和局部手术治疗,尽管肝切除是目前最有效的局部控制治疗,但肝切除后患者5年生存率较低,且手术治疗后复发率高达70%[11]。同时目前结肠癌肝转移的临床化疗方案中卡培他滨作为一线推荐药物,但在临床使用过程中存在耐药率高、不良反应大等多种缺点,所以目前对于结肠癌肝转移的治疗药物的开发仍是临床的迫切需求。

苦参碱是从豆科植物苦参(Sophora flavescens Alt.)的干燥根、植株、果实中提取得到的生物碱,近年来研究表明[12-13],苦参碱对酒精性脂肪肝、神经病理性疼痛、萎缩性胃炎、宫颈癌等疾病具有显著的药理作用。近年来研究表明苦参碱对于结肠癌具有显著的治疗作用,缪冬映[4]研究表明苦参碱能够通过调节Akt通路显著抑制结肠癌SW480细胞增殖并促进其凋亡;王伟等[5]研究发现苦参碱能够抑制P-糖蛋白的表达,进而调控结肠癌对奥沙利铂的耐药性;常城等[14]报道了苦参碱能够诱导结肠癌HT29细胞周期阻滞,抑制HT29细胞增殖并诱导其凋亡。同时,有研究表明苦参碱对于结肠癌HT-29细胞及结肠癌肝转移均有显著的抑制作用[15-16]

肝脏质量及肝转移结节数能够反映结肠癌肝转移的严重程度及肝组织炎症水平状态;TGF-β1及IL-6是肝组织炎症病变及病理进展的重要指标之一,近年来有学者发现其在内源性肿瘤肝转移的发生过程中起到一定的促进作用,檀谊洪等[17]研究发现小鼠结肠癌组织会释放TGF-β1进而促使肝脏Th1/Th2样细胞因子漂移,诱导结肠癌肝转移;黄晓明等[18]发现CT26细胞可诱导肝脏分泌TGF-β1,进而促进小鼠结肠癌肝转移瘤的形成;任淑萍等[19]研究发现IL-6肿瘤间质血管中表达升高,进而促进结肠癌肝转移;黄伟华等[20]报道了肝再生磷酸酶-3通过上调IL-6水平进而诱导结肠癌肝转移。本实验研究表明,与肝转移模型组比较,苦参碱各剂量组肝脏质量、肝转移结节数、肝组织TGF-β1及IL-6水平均明显降低,这提示苦参碱能够成剂量依赖性的抑制结肠癌肝转移,缓解肝组织病理进展,并降低结肠癌肝转移小鼠TGF-β1及IL-6水平,进而抑制结肠癌肝转移进一步恶化。

SCAP/SREBP1通路是维持体内糖代谢、胆固醇及脂类代谢平衡的重要信号通路。SCAP作为SREBP1蛋白激活的重要调节蛋白,SCAP在内质网中与SREBP1结合形成新的复合物,并通过囊泡被转运到高尔基体膜上,经过高尔基体膜上相应蛋白水解后转运到细胞核中被激活并发挥相应作用。近年来有学者研究发现SCAP/SREBP1通路与肿瘤疾病的发生及肿瘤转移密切相关。邓嘉成[21]研究报道了SCAP诱导的SREBP1的激活是肿瘤生长所必需的条件,同时阻断SREBP1的激活能够抑制胶质细胞瘤的增殖;Jump等[22]研究发现在结肠癌等肿瘤细胞中均发现SCAP/SREBP1过度激活;罗吉等[23]研究发现抑制SREBP1的表达则能够通过抑制PIK3R3基因进而诱导肝癌细胞周期阻滞,并诱导其凋亡;李卫华等[24]研究发现SREBP1在正常子宫细胞中低表达,而在子宫内膜癌中高表达,抑制SREBP1的表达则能够抑制子宫内膜癌的增殖和转移侵袭能力,由此可见SCAP/SREBP1的过度表达在肿瘤的发生发展中起到重要作用。本实验结果表明,与肝转移模型组比较,肿瘤组织SCAP、SREBP1 mRNA及蛋白水平显著降低,提示苦参碱成剂量依赖性的抑制SCAP/SREBP1通路的过度激活,进而抑制结肠癌肝转移进展。

综上所述,苦参碱能够显著抑制结肠癌肝转移,缓解肝组织病理学改变,其机制可能与调节SCAP/SREBP1信号通路有关。

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Regulatory effect of matrine on SCAP/SREBP1 signal pathway in mice with liver metastasis of colon cancer
MA Yi , XIE Qiong     
Department of Oncology, The First Hospital of Hunan University of Chinese Medicine, Changsha 410000, China
Abstract: [Objective] To study the inhibitory effect of matrine on liver metastasis of colon cancer and its regulation on SCAP/SREBP1 signal pathway in mice. [Methods] The 72 mice were randomly divided into blank control group, liver metastasis model group, low, middle and high dose matrine groups and capecitabine group, with 12 mice in each group. The mouse model of colon cancer liver metastasis was established by intrasplenic injection of HCT116 cells. The low, middle and high dose matrine groups were given 12.5, 25, 50 mg/kg, for 21 days. Capecitabine group was given capecitabine by intragastric administration according to 267 mg/kg. The liver weight and the number of liver metastatic nodules were measured. The levels of transforming growth factor(TGF-β1) and interleukin (IL)-6 in liver tissue were measured by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Liver histopathology was examined by hematoxylin-eosin (HE) staining. The levels of SCAP and SREBP1 mRNA in tumor tissue were determined by real-time quantitative polymerase chain reaction (PCR). The levels of SCAP and SREBP1 in tumor tissue were determined by Western blot. [Results] Compared with the blank control group, the liver weight, the number of hepatic metastatic nodules, the levels of TGF-β1 and IL-6 in liver tissue, and the levels of SCAP, SREBP1 mRNA and protein in tumor tissue in liver metastasis model group were significantly higher than those in control group(P < 0.05). Compared with the liver metastasis model group, the liver weight, the number of liver metastatic nodules, the levels of TGF-β1 and IL-6 in liver tissue, and the levels of SCAP, SREBP1 mRNA and protein in tumor tissue in each dose group were significantly lower than those in the liver metastasis model group(P < 0.05). [Conclusion] Matrine can significantly inhibit liver metastasis of colon cancer and alleviate liver histopathological changes, and its mechanism may be related to the regulation of SCAP/SREBP1 signal pathway.
Key words: matrine    liver metastasis of colon cancer    SCAP/SREBP1 signal pathway