天津中医药  2022, Vol. 39 Issue (5): 663-667

文章信息

赵海霞, 曹盼盼, 刘林昊, 刘风勋
ZHAO Haixia, CAO Panpan, LIU Linhao, LIU Fengxun
槲皮素对1型糖尿病肾病肾小管上皮细胞间质转分化的作用
Effect of quercetin on the mesenchymal transdifferentiation of renal tubular epithelial cells in type 1 diabetic nephropathy
天津中医药, 2022, 39(5): 663-667
Tianjin Journal of Traditional Chinese Medicine, 2022, 39(5): 663-667
http://dx.doi.org/10.11656/j.issn.1672-1519.2022.05.24

文章历史

收稿日期: 2022-01-08
槲皮素对1型糖尿病肾病肾小管上皮细胞间质转分化的作用
赵海霞1 , 曹盼盼1 , 刘林昊1 , 刘风勋2     
1. 河南省省立医院肾病风湿科,郑州 450000;
2. 郑州大学第一附属医院肾内科,郑州 450000
摘要:[目的] 研究槲皮素在1型糖尿病肾病(T1DN)肾小管上皮细胞间质转分化中的作用。[方法] 30只雄性SD大鼠随机分为3组:对照组、T1DN组和槲皮素组,每组10只。除对照组以外,其他大鼠空腹注射100 mg/kg链脲佐菌素,构建T1DN模型。槲皮素组大鼠灌胃100 mg/kg槲皮素,对照组和T1DN组大鼠灌胃同剂量的生理盐水,每日1次,持续8周。通过Masson和天狼星染色检测肾组织病理学变化;采用实时荧光定量聚合酶链反应(Real-time PCR)和蛋白质免疫印记法(Western blot)检测肾皮质中转化生长因子-β(TGF-β)/Smad信号通路、α-平滑肌肌动蛋白(α-SMA)、Snail和E-钙黏蛋白(E-cadherin)和基因的表达。[结果] 天狼星染色结果显示,对照组的肾组织结构完整,肾间质未见胶原纤维沉积,T1DN组肾组织结构破坏,间质胶原纤维沉积明显增加,槲皮素改善肾组织损伤,间质胶原纤维减少。Real-time PCR和Western blot结果显示,与对照组比较,T1DN组的TGF-β、Smad2/3、α-SMA、Snail蛋白和mRNA表达显著增加(P<0.05),E-cadherin的表达显著减少(P<0.05)。与T1DN组比较,槲皮素组的TGF-β、Smad2/3、α-SMA、Snail蛋白和mRNA表达显著降低(P<0.05),E-cadherin的表达显著增加(P<0.05)。[结论] 槲皮素可能通过降低TGF-β、Smad2/3、α-SMA、Snail的表达,促进E-cadherin的表达,从而抑制肾小管上皮细胞间质转分化和肾间质纤维化的发生发展。
关键词1型糖尿病肾病    肾小管上皮细胞间质转分化    槲皮素    大鼠实验    

糖尿病肾病(DN)是1型糖尿病(T1D)的常见微血管并发症之一,有15%~25%的1型糖尿病最终发展为1型糖尿病肾病(T1DN)[1]。T1DN是青少年末期肾病的主要类型,主要临床特征为尿蛋白异常、肾脏损伤、肾间质纤维化和肾小球硬化等[2]。肾间质纤维化形成与成纤维细胞有关,而肾小球上皮细胞的间充质转化是受损的肾产生成纤维细胞,并且最终导致肾纤维化的关键因素[3]。因此,基于T1DN的发病基质,寻求新型有效的预防和治疗药物来抑制T1DN的发生发展具有深远意义。

槲皮素是一种天然黄酮类化合物,其化学名为3,3,4,5,7-五羟基黄酮,广泛存在于蔬菜、水果等植物中[4]。槲皮素的主要药理作用为抗炎、抗氧化、免疫调节及心血管保护等作用[5]。研究表明,槲皮素可降低DN大鼠的血糖,改善DN的发展[6]。然而,槲皮素对T1DN的作用以及机制研究尚少。

本研究采用链脲佐菌素构建T1DN大鼠模型,检测槲皮素对血糖和肾脏病理学的影响,并探究槲皮素对T1DN大鼠肾脏肾小球上皮细胞的间充质转化及肾间质纤维化影响,为临床患者的治疗提供实验依据。

1 材料与方法 1.1 实验动物

SPF级的雄性SD大鼠30只[北京维通利华实验动物技术有限公司提供,许可证号:SCXK(鄂)2019-0023],12周龄,体质量(230±10)g。所有大鼠均饲养于恒温(25±2)℃,湿度50%~60%的无特殊病原体环境中,并可随意进食高压灭菌的水和饲料。本实验方案通过郑州大学实验动物中心伦理委员会的审核,并且在国家卫生研究所关于保护和使用实验动物的方针指导下进行。

1.2 实验试剂

槲皮素(丽珠集团利民制药公司);尿蛋白试剂盒(赛默飞世尔科技有限公司);福尔马林(济南百博生物技术股份有限公司);戊巴比妥钠(上海信裕生物科技有限公司);Weigert铁苏木素染色液(北京博润莱特科技有限公司);Trizol试剂、RIPA缓冲液、PMSF、BSA和BCA试剂(上海碧云天生物技术有限公司);PrimeScript TM RT试剂盒(Takara Biotechnology);SYBR-Green qPCR Master Mix(北京康润诚业生物科技有限公司);兔抗鼠转化生长因子-β(TGF-β)、smad2/3、α-平滑肌肌动蛋白(α-SMA)、Snail、E-钙黏蛋白(E-cadherin)和甘油醛-3-磷酸脱氢酶(GAPDH)单分子抗体(Abcam);山羊抗兔二抗(赛信通生物试剂有限公司);超敏发光液(北京四正柏生物科技有限公司)。

1.3 实验方法 1.3.1 实验动物分组和建模

随机将30只SD大鼠分为3组:对照组、T1DN组和槲皮素组,每组10只。SD大鼠在动物房适应饲养1周后,T1DN组和槲皮素组单次空腹腹腔注射100 mg/kg链脲佐菌素。48 h后尾静脉采血测血糖,血糖含量≥16.7 nmol/L,认定为糖尿病模型构建成功[7]。大鼠糖尿病建模4周后,收集其24 h尿液并测定尿蛋白,为T1DN建模成功。本实验30只SD大鼠血糖含量均≥16.7 nmol/L,尿蛋白>30 mg/24 h,成模率100%。槲皮素干预浓度参考文献,选取100 mg/kg,每次灌胃前将槲皮素与生理盐水涡旋成槲皮素混悬液[8]。血糖检测完毕后,槲皮素组按100 mg/kg槲皮素混悬液灌胃,每日1次。对照组和T1DN组每日灌胃等量生理盐水,连续8周。最后一次灌药结束后收集24 h尿液。在所有大鼠处死之前检测大鼠空腹血糖值,安乐死大鼠后,原位灌洗肾脏后,去除包膜,滤纸吸干后,沿着肾门沿冠状面破开,一半放入福尔马林中固定,通过常规脱水、浸蜡、包埋及切片,另一部分放入液氮中冻存。

1.3.2 24 h尿蛋白检测

收集所有大鼠24 h的尿后,记录尿量。采用尿蛋白试剂盒(比色法)检测尿蛋白的浓度,24 h尿蛋白=尿蛋白浓度×24 h尿量。

1.3.3 天狼星红染色

所有大鼠肾脏5 μm石蜡切片,脱蜡至水化,Weigert铁苏木素染色液染色10 min后,生理盐水冲洗。天狼星红染液染色1~2 h,生理盐水浸泡,脱水,透明,封片后,在光学显微镜下观察各组大鼠肾组织的病理学变化。

1.3.4 实时荧光定量核酸扩增检测系统(qPCR)检测

取所有组大鼠肾脏组织0.5 mg,放入低温匀浆机100 Hz匀浆10 min后,使用Trizol试剂提取总RNA。用NanoDrop 2000分光光度计检测RNA的纯度和浓度后,通过PrimeScript TM RT试剂盒逆转录合成cDNA(反转录条件:37 ℃ 60 min,85 ℃ 5 min)。在ABI 7500实时PCR系统上,实时荧光定量PCR实验。PCR扩增条件为:95 ℃预变性2 min,95 ℃变性15 s,60 ℃退火45 s,72 ℃延伸30 s,共计40个循环。以GAPDH作为mRNA的标准内参基因表达结果均以2-ΔΔct进行统计。目的基因及参考基因序列见表 1

表 1 实时荧光定量PCR所需的引物序列 Tab. 1 Primer sequences required for real-time PCR
1.3.5 蛋白质免疫印记法(Western blot)检测

所有组大鼠肾脏组织0.5 mg放入低温匀浆机100 Hz匀浆10 min后,RIPA缓冲液和PMSF抑制蛋白降解液(100∶1)将样本裂解后提取各组总蛋白。通过BCA试剂检测蛋白质的总浓度,将各组的总蛋白浓度调为一致,将其于100 ℃进行变性后保存至-20 ℃。SDS-PAGE电泳分离总蛋白后,将其转膜至PVDF膜。5%脱脂牛奶封闭2 h,TBST洗涤3次,每次10 min,将其放入对应的一抗(TGF-β、Smad2/3、α-SMA、Snail、E-cadherin和GAPDH)和一抗稀释混悬液(1∶1 000)中,4 ℃孵育过夜。TBST洗涤3次,放入二抗和二抗稀释液(1∶4 000)混悬液中,室温孵育2 h。TBST洗涤3次,每次10 min,将超敏发光液ECL滴在膜上,放入化学发光成像仪(Invitorgen,美国)进行蛋白显影。通过Image J软件进行分析,相对蛋白表达以GAPDH标准化。

1.3.6 统计学方法

应用SPSS 20.0软件进行数据分析,GraphPad Prism Version 7.0计量作图,资料以均数±标准差(x±s)表示,多组数据见的比较采用单因素方差分析(One-way ANOVA),P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果 2.1 大鼠空腹血糖值以及24 h尿蛋白的变化

与对照组空腹血糖值(3.82±0.28)nmol/L比较,T1DN组空腹血糖值(23.25±1.88)nmol/L显著增加(P<0.01)。与T1DN组比较,槲皮素组空腹血糖值(10.57±1.01)nmol/L显著降低(P<0.05)。与对照组的24 h尿蛋白[(41.33±2.64)μg/24 h]比较,T1DN组24 h尿蛋白[(231.42±5.32)μg/24 h]显著增加(P<0.01)。与T1DN组比较,槲皮素组24 h尿蛋白[(73.72±2.51)μg/24 h]显著降低(P<0.05)。见图 1A1B

注:A. 3组大鼠空腹状态下血糖浓度变化柱状图(与对照组比较,**P<0.01;与T1DN组比较,#P<0.05);B. 3组大鼠24 h尿蛋白量变化柱状图(与对照组比较,**P<0.01;与T1DN组比较,#P<0.05)。 图 1 各组大鼠空腹血糖值和24 h尿蛋白含量变化 Fig. 1 Changes of fasting blood glucose and 24 h urine protein content of rats in each group
2.2 大鼠肾脏病理变化

天狼星染色结果显示,对照组大鼠的肾小球和肾小管结构完整,肾小管间质未见胶原纤维沉积。T1DN组肾小球增生,肾小管上皮损伤,肾小管间质胶原纤维沉积明显。槲皮素组大鼠的肾小管结构较完整,肾小球肥大程度减轻,肾小管间质胶原纤维沉积明显降低,见图 2

图 2 各组大鼠肾组织病理变化(×200,标尺=10 μm) Fig. 2 Pathological changes of renal tissue of rats in each group (×200, standard=10 μm)
2.3 大鼠肾组织中肾小管上皮细胞间质转分化标志物的变化

Western blot和qPCR结果显示,与对照组比较,T1DN组的α-SMA、Snail蛋白和mRNA表达显著增加(P<0.05或P<0.01),E-cadherin的蛋白和mRNA表达显著减少(P<0.05或P<0.01)。与T1DN组比较,槲皮素组的α-SMA、Snail蛋白和mRNA表达显著减少(P<0.05),E-cadherin的蛋白和mRNA表达显著增加(P<0.05)。见图 3表 2

注:A. Western blot检测3组大鼠肾组织中上皮细胞间质转分化标志蛋白;B. 3组大鼠肾组织上皮细胞间质转分化标志蛋白表达量柱状图(与对照组比较,**P<0.01;与T1DN组比较,#P<0.05)。 图 3 各组大鼠肾脏组织上皮细胞间质转分化标志蛋白含量变化 Fig. 3 Changes in protein levels of epithelial-mesenchymal transdifferentiation marker proteins in kidney tissue of rats in each group
表 2 各组大鼠肾脏组织中α-SMA、Snail和E-cadherin基因表达量变化(x±s Tab. 2 Changes of α-SMA, Snail and E-cadherin gene expression in kidney tissue of rats in each group (x±s)
2.4 大鼠肾组织中TGF-β/Smad信号通路的变化

Western blot和qPCR结果显示,与对照组比较,T1DN组的TGF-β、Smad2/3蛋白和mRNA表达显著增加(P<0.05或P<0.01)。与T1DN组比较,槲皮素组的TGF-β、Smad2/3蛋白和mRNA表达显著减少(P<0.05)。见图 4表 3

注:A. Western blot检测3组大鼠肾组织中TGF-β/Smad信号通路关键蛋白变化;B. 3组大鼠肾组织TGF-β/Smad信号通路关键蛋白表达量柱状图(与对照组比较,*P<0.05,**P<0.01;与T1DN组比较,#P<0.05)。 图 4 各组大鼠肾脏组织上皮细胞间质转分化标志蛋白含量变化 Fig. 4 Changes in protein levels of epithelial-mesenchymal transdifferentiation marker proteins in kidney tissue of rats in each group
表 3 各组大鼠肾脏组织中TGF-β、Smad2和Smad3基因表达量变化(x±s Tab. 3 Changes of TGF-β, Smad2 and Smad3 gene expression in kidney tissue of rats in each group (x±s)
3 讨论

中国是全世界糖尿病发病的第一大国,超过一半的糖尿病患者会发展成DN [9]。DN的基本机制是细胞内途径的促炎因子和促纤维化因子产生,引起肾损伤和纤维化的过程,并且细胞外基质代谢不正常,在间质内异常积聚[10]。研究表明,肾小管上皮细胞间质转分化的异常导致纤维细胞增加,进而引起蛋白尿和肾小球纤维化,最终发展成终末期肾病,即T1DN[11]。本研究采用一次性腹腔注射链脲佐菌素诱导糖尿病模型,12周后,糖尿病大鼠的24 h尿蛋白和空腹血糖明显增加,肾脏主要的病理变化为肾小球肥大,肾小管扩张和间质胶原纤维沉积增多和基底膜不规则增厚,符合T1DN早期功能和结构的改变,说明实验造模成功。研究表明,慢病肾间质纤维化疾病中,有36%肾间质成纤维细胞是来自肾小管上皮细胞转分化[12-13]。因此,阻碍肾小管上皮细胞间质转分化对T1DN的发生发展具有重要临床意义。α-SMA是肌成纤维细胞的标志蛋白,在纤维化早期高表达,与肾纤维化呈正相关[14]。Snail属于锌指蛋白家族,能促进肾小管上皮细胞间质转分化[15]。Snail直接抑制靶基因E-cadherin的表达,进而启动上皮细胞间质转分化[16]。本研究结果表明,T1DN模型大鼠的α-SMA和Snail表达明显增加,而E-cadherin的表达受到抑制。综上所述,本研究的T1DN构建成功。

槲皮素存在100多种中药草中,对多种疾病具有预防和治疗作用,其中对DN有较好的效果,但作用机制尚不明确[6]。本研究结果显示,槲皮素干预8周后,大鼠血糖和尿蛋白明显降低,并且肾脏组织病理学形态得到改善,胶原纤维减少。Western blot和qPCR结果显示,槲皮素可抑制T1DN大鼠肾组织中的α-SMA和Snail表达,促进E-cadherin的表达,说明槲皮素可抑制肾小管上皮细胞间质转分化,从而改善T1DN大鼠肾组织纤维化。

研究表明,TGF-β/Smad信号通路是调控上皮间质转化的中心环节,主要是TGF-β激活Smad信号蛋白,从而调节靶基因的转录,促进肾小管上皮间质转分化的α-SMA和Snail表达,抑制标志蛋白E-cadherin[17]。本研究结果显示,槲皮素可阻碍TGF-β/Smad信号通路的传导,主要是抑制TGF-β、Smad2/3的表达。综上所述,槲皮素可阻断TGF-β/Smad信号的传递,抑制肾小管上皮细胞间质转分化的标志蛋白α-SMA和Snail表达,促进E-cadherin表达,进而改善T1DN的肾损伤,降低血糖和尿蛋白。因此,槲皮素可改善链脲佐菌素诱导的T1DN,有望成为治疗抗T1DN的药物。

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Effect of quercetin on the mesenchymal transdifferentiation of renal tubular epithelial cells in type 1 diabetic nephropathy
ZHAO Haixia1 , CAO Panpan1 , LIU Linhao1 , LIU Fengxun2     
1. Department of Nephrology and Rheumatology, Henan Provincial Hospital, Zhengzhou 450000, China;
2. Department of Nephrology, The First Affiliated Hospital of Zhengzhou University, Zhengzhou 450000, China
Abstract: [Objective] To study the role of quercetin in the mesenchymal transdifferentiation of renal tubular epithelial cells in type 1 diabetic nephropathy (T1DN). [Methods] Thirty male SD rats were randomly divided into 3 groups: control group (n=10), T1DN group (n=10) and quercetin group(n=10). Except for the control group, other rats were injected with 100 mg/kg streptozotocin on an empty stomach to construct a T1DN model. Rats in the quercetin group were given 100 mg/kg quercetin by intragastric administration, and rats in the control group and T1DN group were given the same dose of normal saline once a day for 8 weeks. Masson and Sirius staining were used to detect renal histopathological changes; Real-time PCR and Western blot were used to detect the expression of TGF-β/Smad signaling pathway, α-SMA, Snail and E-cadherin proteins and genes in the renal cortex. [Results] The results of Sirius staining showed that the renal tissue structure of the control group was intact, and there was no collagen fiber deposition in the renal interstitium. The renal tissue structure of the T1DN group was damaged, and the deposition of interstitial collagen fibers was significantly increased. Quercetin improves renal tissue damage and reduces interstitial collagen fibers. Real-time PCR and Western blot results showed that compared with the control group, the expression of TGF-β, Smad2/3, α-SMA, Snail protein and mRNA in the T1DN group increased significantly(P < 0.05), and the expression of E-cadherin decreased significantly(P < 0.05). Compared with the T1DN group, the expressions of TGF-β, Smad2/3, α-SMA, Snail protein and mRNA in the quercetin group were significantly reduced (P < 0.05), and the expression of E-cadherin was significantly increased (P < 0.05). [Conclusion] Quercetin may reduce the expression of TGF-β, Smad2/3, α-SMA and Snail, and promote the expression of E-cadherin, thereby inhibiting the mesenchymal transdifferentiation of renal tubular epithelial cells and the occurrence and development of renal interstitial fibrosis.
Key words: type 1 diabetic nephropathy    renal tubular epithelial cell mesenchymal transdifferentiation    quercetin    rat experiment