天津中医药  2024, Vol. 41 Issue (12): 1593-1598

文章信息

王瑞琪, 庞国明, 李立.
WANG Ruiqi, PANG Guoming, LI Li.
贝母素乙通过调节Gas6/Axl信号通路对糖尿病大鼠心肌纤维化的影响
Effect of Peiminine B on myocardial fibrosis in diabetes rats by regulating Gas6/Axl signaling pathway
天津中医药, 2024, 41(12): 1593-1598
Tianjin Journal of Traditional Chinese Medicine, 2024, 41(12): 1593-1598
http://dx.doi.org/10.11656/j.issn.1672-1519.2024.12.18

文章历史

收稿日期: 2024-07-12
贝母素乙通过调节Gas6/Axl信号通路对糖尿病大鼠心肌纤维化的影响
王瑞琪1 , 庞国明2 , 李立1     
1. 中国中医科学院中医临床基础医学研究所, 北京 100700;
2. 开封市中医院内分泌科, 开封 475002
摘要:[目的] 探讨贝母素乙(PMI)对糖尿病(DM)大鼠心肌纤维化及生长停滞特异性蛋白6(Gas6)/Axl信号通路的影响。[方法] 构建DM大鼠模型,将48只造模成功大鼠随机分为DM组、贝母素乙低、高剂量组(PMI-L、PMI-H组)、贝母素乙高剂量+通路抑制剂R428组(PMI-H+R428组),各12只,另取12只正常大鼠作对照组(Control组);超声检查各组大鼠心功能指标;全自动血液分析仪检测各组大鼠空腹血糖(FBG)及血清肌酸激酶同工酶(CK-MB)、乳酸脱氢酶(LDH)水平;苏木精-伊红(HE)染色及Masson染色分别观察各组大鼠心肌组织病理变化及纤维化程度;TUNEL染色检测心肌组织细胞凋亡情况;免疫组化检测胶原蛋白Ⅰ(COLⅠ)、胶原蛋白Ⅲ(COLⅢ)表达;蛋白免疫印迹法检测Gas6、p-Axl/Axl表达。[结果] DM组较Control组心肌纤维断裂,心肌细胞排列紊乱,细胞肥大,细胞核固缩深染,炎性细胞浸润明显,细胞减少,蓝色胶原纤维沉积增多,且排列紊乱,分布弥散,左室舒张末期内径(LVEDD)、左室收缩末期内径(LVESD)和FBG、CK-MB、LDH水平及COLⅠ、COLⅢ表达升高,LVFS及Gas6、p-Axl/Axl表达降低(P < 0.05);PMI-L、PMI-H组较DM组心肌纤维排列相对整齐,细胞形态相对正常,炎性细胞浸润减少,细胞增多,纤维化现象减少,蓝色胶原纤维沉积减少,且细胞排列相对整齐,LVEDD、LVESD和FBG、CK-MB、LDH水平及COLⅠ、COLⅢ表达降低,LVFS及Gas6、p-Axl/Axl表达升高(P < 0.05);PMI-H+R248组较PMI-H组心肌组织病理损伤加重,炎性细胞浸润及心肌组织纤维化明显,蓝色胶原纤维沉积明显增多,LVEDD、LVESD和FBG、CK-MB、LDH水平及COLⅠ、COLⅢ表达升高,LVFS及Gas6、p-Axl/Axl表达降低(P < 0.05)。[结论] 贝母素乙可抑制DM大鼠心肌纤维化,其作用机制与激活GAS6/Axl信号通路有关。
关键词贝母素乙    生长停滞特异性蛋白6/Axl信号通路    糖尿病    心肌纤维化    

糖尿病属于第三大慢性非传染性疾病,且随着人们饮食与生活方式的改变,中国糖尿病患者数量持续增加[1-2]。而持续高糖易引起糖尿病心肌病,主要表现为心肌纤维化,进而导致心脏功能降低、心脏器质性病变,甚至死亡,严重威胁患者生命健康[3]。因此控制血糖、抑制心肌纤维化对于延缓糖尿病引起的心肌病至关重要。贝母素乙提取自贝母的干燥鳞茎,具有降糖降脂、抗炎、抗凋亡、抗癌等多种药用价值,对心肌梗死诱导的心肌损伤和纤维化具有保护作用[4]。生长停滞特异性蛋白6(GAS6)/Axl信号通路参与多种生理病理活动,已知激活GAS6/Axl信号通路可改善衰老相关心脏重塑,减轻心肌纤维化和细胞凋亡[5]。贝母素乙能否通过调控GAS6/Axl信号通路改善糖尿病大鼠心肌纤维化尚未可知。本研究主要通过探究贝母素乙对糖尿病大鼠心肌纤维化及GAS6/Axl信号通路的影响,以期为糖尿病心肌纤维化治疗寻求新途径。

1 材料与方法 1.1 主要材料

60只8周龄、体质量190~210 g SPF级雄性SD大鼠购自中国医学科学院医学生物学研究所,生产许可号为SCXK(滇)K2022-0002,本研究已获得动物伦理委员会批准(批号:2300419);贝母素乙(HPLC≥98%,Y10055-LFT)购自北京百奥博莱科技有限公司;乳酸脱氢酶(LDH)、血清肌酸激酶同工酶(CK-MB)酶联免疫吸附实验(ELISA)试剂盒(FY-A014670、FY-A014596)购自上海富雨生物科技有限公司;苏木精-伊红(HE)染色试剂盒(G1120-100)购自北京索莱宝科技公司;Masson染色(G1006)购于武汉塞维尔生物;R428(> 98 %,ab141364)及Gas6、Axl抗体(ab232720、ab215205)购自英国Abcam公司;p-Axl抗体(SAB4504605)购自德国默克集团。

1.2 方法 1.2.1 构建糖尿病大鼠模型

先适应性喂养1周,所有48只造模大鼠给予单次腹腔注射55 mg/kg链脲佐菌素,72 h后血糖仪随机测大鼠空腹血糖(FBG),FBG≥16.7 mmol/L表示糖尿病大鼠模型构建成功,随后造模大鼠给予高脂饲料喂养4周,对照组大鼠给予普通饲料喂养[6]

1.2.2 分组与处理

将造模成功大鼠随机分为模型组(DM组)、贝母素乙低、高剂量组(PMI-L、PMI-H组)、贝母素乙高剂量+通路抑制剂R428组(PMI-H+R428组),各12只,另取12只正常大鼠作对照组(Control组);PMI-L、PMI-H组[7]:分别给予10、20 mg/kg贝母素乙灌胃;PMI-H+R428组[8]:给予20 mg/kg贝母素乙灌胃及腹腔注射75 mg/kg R428;Control组与DM组灌胃与PMI-L、PMI-H组等量生理盐水;给药持续4周。

1.2.3 心肌功能检测

给药结束,30 mg/kg戊巴比妥钠麻醉并固定大鼠,M型超声心动图连续测量5个心动周期的左室舒张末期内径(LVEDD)、左室收缩末期内径(LVESD),计算左室短轴缩短率(LVFS)。

1.2.4 FBG及心肌损伤标志物水平检测

心功能检测完毕,30 mg/kg戊巴比妥钠麻醉各组大鼠,腹主动脉取血5 mL,随后处死取心肌组织,冷冻待用。将血液静置后,2 500 r/min离心5 min,离心半径10 cm,取上清液,全自动血液分析仪检测FBG、CK-MB、LDH水平。

1.2.5 心肌组织病理观察

取1.2.3收集的各组6个心肌组织,甲醛固定后浸蜡包埋,制成4 μm厚石蜡切片,然后脱蜡水化,HE染色,DAB显色,冲洗干净后,干燥封片,显微镜观察心肌组织切片病理情况。

1.2.6 心肌纤维化观察

取1.2.4制备的石蜡切片,常规脱蜡水化,加入Masson染色,冲洗后,加入苯胺蓝染色,水洗后干燥封片,显微镜观察心肌组织切片纤维化程度。

1.2.7 心肌细胞凋亡检测

取1.2.4制备的石蜡切片,脱蜡后,加入Triton X-100室温反应,再依次加入TUNEL、DAPI室温孵育,脱水封片,显微镜下观察TUNEL阳性细胞即凋亡细胞,分析心肌组织细胞凋亡情况。

1.2.8 心肌组织胶原蛋白检测

取1.2.4制备的石蜡切片,脱蜡后与0.01 mol/L枸橼酸钠溶液反应进行抗原修复,冷却后,加入过氧化氢反应,血清封片,加入胶原蛋白Ⅰ(COLⅠ)、胶原蛋白Ⅲ(COLⅢ)抗体4 ℃过夜孵育,次日加入山羊抗兔二抗室温孵育30 min,再依次与DAB、苏木素反应,脱水封片,荧光显微镜观察染色区域并收集图像,Image软件分析阳性染色区域光密度取均值。

1.2.9 Gas6/Axl信号通路相关蛋白检测

将各组剩余6个心肌组织蛋白裂解后,提取总蛋白BCA法定量,再将蛋白变性后40~60 V凝胶电泳4~5 h、200 V湿转膜1~2 h,封闭,然后将膜与兔源Gas6(1∶1 000)、p-Axl(1∶1 000)、Axl(1∶1 000)一抗4 ℃过夜共孵育,洗膜3次后再与山羊抗兔二抗孵育2 h,ECL显影,收集图像并进行条带灰度分析。

1.3 统计学方法

采用SPSS 25.0进行统计分析,实验数据符合正态分布,以均数±标准差(x±s)表示,多组间比较采用单因素方差分析,组间两两比较采用LSD-t检验。以P<0.05时表示差异有统计学意义。

2 结果 2.1 贝母素乙对糖尿病大鼠心肌功能的影响

DM组较Control组LVEDD、LVESD增大,LVFS降低(P < 0.05);PMI-L、PMI-H组较DM组LVEDD、LVESD减小,LVFS升高(P < 0.05);PMI-H+R248组较PMI-H组LVEDD、LVESD增大,LVFS降低(P<0.05)。见表 1

表 1 各组大鼠心功能比较(x±s Tab. 1 Comparison of cardiac function of rats in each group (x±s)
2.2 贝母素乙对糖尿病大鼠血糖及心肌损伤标志物水平的影响

DM组较Control组FBG、CK-MB、LDH水平升高(P<0.05);PMI-L、PMI-H组较DM组FBG、CK-MB、LDH水平降低(P<0.05);PMI-H+R248组较PMI-H组FBG、CK-MB、LDH水平升高(P<0.05)。见表 2

表 2 各组大鼠空腹血糖及心肌损伤标志物水平比较(x±s Tab. 2 Comparison of fasting blood glucose and markers of myocardial injury of rats in each group (x±s)
2.3 贝母素乙对糖尿病大鼠心肌组织病理变化的影响

Control组心肌纤维排列整齐,心肌细胞完整有序,无炎性细胞浸润;DM组较Control组心肌纤维断裂,心肌细胞排列紊乱,细胞肥大,细胞核固缩深染,炎性细胞浸润明显,细胞减少,可见纤维化;PMI-L、PMI-H组较DM组心肌纤维排列相对整齐,细胞形态相对正常,炎性细胞浸润减少,细胞增多,纤维化现象减少;PMI-H+R248组较PMI-H组心肌组织病理损伤加重,炎性细胞浸润及心肌组织纤维化明显。见图 1

注:图A,Control组;图B,DM组;图C,PMI-L组;图D,PMI-H组;图E,PMI-H+R248组。 图 1 HE染色观察各组大鼠心肌组织病理变化(×200) Fig. 1 Pathological changes of myocardial tissue of rats in each group observed by HE staining (×200)
2.4 贝母素乙对糖尿病大鼠心肌组织纤维化程度的影响

胶原纤维呈蓝色,Control组存在少量胶原纤维;DM组较Control组胶原纤维沉积增多,且排列紊乱,分布弥散;PMI-L、PMI-H组较DM组胶原纤维沉积减少,且排列相对整齐;PMI-H+R248组较PMI-H组胶原纤维沉积明显增多。见图 2

注:图A,Control组;图B,DM组;图C,PMI-L组;图D,PMI-H组;图E,PMI-H+R248组。 图 2 Masson染色观察各组大鼠心肌组织胶原纤维化情况(×200) Fig. 2 Masson staining observation of myocardial collagen fibrosis of rats in each group (×200)
2.5 贝母素乙对糖尿病大鼠心肌组织胶原蛋白的影响

DM组较Control组COLⅠ、COLⅢ表达升高(P<0.05);PMI-L、PMI-H组较DM组COLⅠ、COLⅢ表达降低(P<0.05);PMI-H+R248组较PMI-H组COLⅠ、COLⅢ表达升高(P<0.05)。见图 3表 3

图 3 免疫组化检测各组大鼠心肌组织纤维化相关蛋白表达(×200) Fig. 3 Immunohistochemical detection of fibrosis-related protein expression in myocardial tissue of rats in each group (×200)
表 3 各组大鼠心肌组织COLⅠ、COLⅢ蛋白表达比较(x±s Tab. 3 Comparison of COLⅠ and COLⅢ protein expression in myocardial tissue of rats in each group (x±s)
2.6 贝母素乙对Gas6/Axl信号通路的影响

DM组较Control组Gas6、p-Axl/Axl表达降低(P<0.05);PMI-L、PMI-H组较DM组Gas6、p-Axl/Axl表达升高(P<0.05);PMI-H+R248组较PMI-H组Gas6、p-Axl/Axl表达降低(P<0.05)。见图 4表 4

注:A,Control组;B,DM组;C,PMI-L组;D,PMI-H组;E,PMI-H+ R428组。 图 4 Western Blot检测Gas6、p-Axl、Axl表达 Fig. 4 Western Blot analysis of Gas6, p-Axl and Axl expression
表 4 各组大鼠心肌组织Gas6、p-Axl/Axl表达比较(x±s Tab. 4 Comparison of Gas6 and p-Axl/Axl expression in myocardial tissue of rats in each group (x±s)
3 讨论

糖尿病发病受糖代谢异常、遗传、氧化应激等多因素相互作用影响,加剧病情,诱发心肌纤维化,心肌细胞凋亡,心功能障碍,进而引发心力衰竭甚至死亡。贝母素乙在治疗糖尿病、保护心功能等方面具有重要作用。研究显示,贝母素乙可抑制肾小球系膜氧化应激水平及细胞凋亡,保护糖尿病肾病大鼠肾功能[7];还可以抑制心肌细胞的凋亡,缓解炎症水平,保护柯萨奇B病毒性心肌炎新生小鼠心肌受损,并显著改善其心脏功能[9]。本研究结果显示,贝母素乙可降低血糖,减少胶原纤维沉积及心肌细胞凋亡,保护糖尿病大鼠心肌损伤。

心肌纤维化是糖尿病心肌病主要病理基础,主要是由于胶原纤维过量沉积导致,而COLⅠ、COLⅢ胶原蛋白主要分布在心脏细胞外基质,是造成胶原纤维沉积的主要成分,参与糖尿病心肌病发生发展进程,并发挥重要作用[10]。心肌胶原蛋白的合成与降解处于平衡状态,对于维持心脏结构和功能具有重要作用,而心肌胶原蛋白合成增多会导致胶原纤维沉积,促使心肌纤维化,引发心功能障碍,甚至死亡。研究显示,减少COLⅠ、COLⅢ的合成可以减缓心肌纤维化症状[11]。另外抑制COLⅠ、COLⅢ表达可改善心肌收缩功能障碍及肥厚和损伤,减轻2型糖尿病大鼠心肌纤维化[12]。本研究显示,贝母素乙可抑制COLⅠ、COLⅢ表达,抑制糖尿病大鼠心肌纤维化。

心肌纤维化的最终将会导致心功能障碍,甚至死亡,期间往往伴随着心肌损伤。LVEDD、LVESD、LVFS等心功能相关指标的高低是评价心功能最直接表现方式,LVEDD、LVESD减小,LVFS升高可以改善糖尿病大鼠心功能[13]。另外研究显示,抑制COLⅠ、COLⅢ表达,升高LVFS,可减轻心肌纤维化程度,改善糖尿病心肌病大鼠心功能[14]。CK-MB、LDH是心肌损伤常见标志物,降低CK-MB、LDH水平,可以减轻心肌损伤,减少心肌细胞凋亡,减少心肌胶原纤维,保护糖尿病大鼠[15]。研究显示,降低CK-MB、LDH水平,抑制COLⅠ、COLⅢ表达,可减轻2型糖尿病大鼠心肌纤维化,发挥保护心脏作用[16]。本研究结果显示,贝母素乙治疗大鼠后,大鼠心功能指标明显改善,提示贝母素乙可改善糖尿病大鼠心功能。

GAS6/Axl信号通路参与调控细胞增殖、凋亡、趋化、免疫调节等多种细胞功能,还有降血糖、保护心肌等作用。已知GAS6属于维生素K依赖性蛋白家族成员,单跨膜蛋白Axl属于TAM(Tyro3、Axl和Mertk)受体酪氨酸激酶家族,GAS6可通过与其位于细胞膜表面的受体Axl结合,激活AXL,进而调控多种通路,抑制胶原合成及心肌细胞凋亡等进程,维持体内的稳定,发挥心肌保护的作用。研究显示,上调GAS6表达可以降低2型糖尿病小鼠的高血糖,维持体内葡萄糖稳态[17]。Axl的表达水平与心肌纤维化过程密切相关,上调Axl表达可降低心肌纤维化细胞的活力,抑制细胞增殖,进而改善心肌纤维化,延缓心肌重构[18-19]。激活GAS6/Axl信号通路可抑制心肌氧化应激、炎症反应、细胞凋亡和线粒体功能障碍,减轻心肌组织损伤,发挥心肌保护作用[20-21]。本研究结果显示,贝母素乙可上调Gas6、p-Axl/Axl表达,推测其可能激活GAS6/Axl信号通路抑制糖尿病大鼠心肌纤维化,另外对糖尿病大鼠进行通路抑制剂R248处理,发现R248可逆转贝母素乙对DM大鼠心肌纤维化的改善作用,说明贝母素乙可通过激活GAS6/Axl信号通路抑制糖尿病大鼠心肌纤维化。

综上所述,贝母素乙可抑制糖尿病大鼠心肌纤维化,其作用机制与激活GAS6/Axl信号通路有关。本研究仍存在不足之处,贝母素乙参与糖尿病、心肌损伤等进程的GAS6/Axl信号通路,对糖尿病引起的心肌纤维化具体作用机制尚不清晰,另外本研究初次探讨贝母素乙对糖尿病引起的心肌纤维化的影响,其中间的调控机制尚不清楚,可能通过调控多条通路影响糖尿病大鼠心肌纤维化,其具体作用机制还需进一步探究。

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Effect of Peiminine B on myocardial fibrosis in diabetes rats by regulating Gas6/Axl signaling pathway
WANG Ruiqi1 , PANG Guoming2 , LI Li1     
1. Institute of Basic Research in Clinical Medicine, China Academy of Chinese Medical Sciences, Beijing 100700, China;
2. Department of Endocrinology, Kaifeng Hospital of Traditional Chinese Medicine, Kaifeng 475002, China
Abstract: [Objective] This study was designed to investigate the effects of Peiminine B (PMI) on myocardial fibrosis and growth arrest-specific protein 6(Gas6)/Axl signaling pathway in diabetes (DM) rats. [Methods] We constructed a DM rat model and randomly divided the successfully modeled rats into a DM group, a low-dose and high-dose PMI group (PMI-L, PMI-H group), and a high-dose PMI+pathway inhibitor R428 group (PMI-H+R428 group), with 12 rats in each group. Additionally, 12 normal rats were regarded as the control group. Ultrasound was applied to examine the cardiac function indicators of rats in each group. An automatic blood analyzer was applied to detect fasting blood glucose (FBG) and serum creatine kinase isoenzyme (CK-MB), and lactate dehydrogenase (LDH) levels were detected in rats in each group. HE staining and Masson staining were applied to observe the pathological changes and fibrosis degree of myocardial tissue of rats in each group. TUNEL staining was applied to detect apoptosis in myocardial tissue cells. Immunohistochemistry was applied to detect the expression of collagen Ⅰ(COL Ⅰ) and collagen Ⅲ(COL Ⅲ). Immunoblotting was applied to detect the expression of Gas6 and p-Axl/Axl. [Results] Compared with the Control group, the DM group had myocardial fiber rupture, disordered arrangement of myocardial cells, cell hypertrophy, nuclear pyknosis and deep staining, obvious infiltration of inflammatory cells, decreased cell count, increased deposition of blue collagen fibers, and disordered arrangement with scattered distribution, the LVEDD, LVESD, levels of FBG, CK-MB, LDH, and expression of COL Ⅰ and COL Ⅲ elevated, the expression of LVFS and Gas6, p-Axl/Axl reduced (P < 0.05). The arrangement of myocardial fibers in the PMI-L and PMI-H groups was relatively neat compared to the DM group, with relatively normal cell morphology, reduced inflammatory cell infiltration, increased cell count, reduced fibrosis, reduced deposition of blue collagen fibers, and relatively neat cell arrangement, the LVEDD, LVESD, levels of FBG, CK-MB, LDH, and expression of COL Ⅰ and COL Ⅲ reduced, the expression of LVFS and Gas6, p-Axl/Axl increased (P < 0.05). The pathological damage to myocardial tissue in the PMI-H+R248 group was more severe than that in the PMI-H group, with obvious infiltration of inflammatory cells and fibrosis of myocardial tissue, the deposition of blue collagen fibers was increased, the LVEDD, LVESD, levels of FBG, CK-MB, LDH, and expression of COL Ⅰ and COL Ⅲ increased, the expression of LVFS and Gas6, p-Axl/Axl reduced (P < 0.05). [Conclusion] Peiminine B can inhibit myocardial fibrosis in diabetes rats, and its mechanism is related to the activation of GAS6/Axl signaling pathway.
Key words: Peiminine B    growth arrest-specific protein 6/Axl signaling pathway    diabetes    myocardial fibrosis