天津中医药  2026, Vol. 43 Issue (2): 147-153

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温涛, 宋志会, 李真真, 等.
WEN Tao, SONG Zhihui, LI Zhenzhen, et al.
基于血清代谢组学分析冠心病痰瘀互结证患者的代谢差异物及通路
Analysis of metabolic differentiators and pathways in patients with coronary artery disease with phlegm and blood stasis syndrome based on serum metabolomics
天津中医药, 2026, 43(2): 147-153
Tianjin Journal of Traditional Chinese Medicine, 2026, 43(2): 147-153
http://dx.doi.org/10.11656/j.issn.1672-1519.2026.02.03

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收稿日期: 2025-09-28
基于血清代谢组学分析冠心病痰瘀互结证患者的代谢差异物及通路
温涛1 , 宋志会1 , 李真真1 , 肖扬2 , 赵佳3 , 王怡1     
1. 天津中医药大学中医药研究院,天津 301617;
2. 天津中医药大学第二附属医院,天津 300250;
3. 天津市胸科医院,天津 300222
摘要:[目的] 应用代谢组学技术分析冠心病痰瘀互结证患者血清中差异代谢物和通路,丰富冠心病痰瘀互结证的代谢组学研究。[方法] 收集天津市胸科医院2023年3—7月的冠心病患者共62例,根据疾病和证型分为冠心病痰瘀互结证组(CHD-TYHJ组)42例和正常对照组20例。空腹抽取受试者静脉血2 mL,常温静置1 h后进行血清提取,使用全自动生化仪检测两组血清中总胆固醇(TC)、三酰甘油(TG)、高密度脂蛋白胆固醇(HDL-C)和低密度脂蛋白胆固醇(LDL-C)水平,随后分析比较两组血清代谢物,并利用Metabo Analyst平台对CHD-TYHJ组的差异代谢物进行信号通路富集分析。[结果] 与CHD-TYHJ组相比,正常对照组血清HDL-C和LDL-C水平降低(P < 0.05),TC和TG水平差异无统计学意义(P > 0.05)。CHD-TYHJ组与正常对照组代谢谱区分度良好,正交偏最小二乘判别分析(OPLS-DA)模型未过度拟合,所示结果可靠。CHD-TYHJ组与正常对照组相比,在正离子模式中,共有82个代谢物上调,19个代谢物下调;在负离子模式中,共有12个代谢物上调,19个代谢物下调。与代谢物差异相关性最高的4个关键通路依次为甘油磷脂代谢、花生四烯酸代谢、亚油酸代谢和α-亚麻酸代谢。[结论] CHD-TYHJ组和正常对照组之间存在差异代谢物,其中α-亚麻酸代谢途径为首次在冠心病痰瘀互结患者血清代谢组学中发现。
关键词代谢组学    冠心病    痰瘀互结    中医    

冠心病(CHD)是由心脏冠状动脉粥样硬化性狭窄或闭塞引起的慢性冠状动脉疾病,以心肌缺血、缺氧和坏死为主要病理表现[1]。《金匮要略》最早记载了“胸痹”这一症状,在中医领域,冠心病被归类为“胸痹心痛”范畴。中医看来,“痰”反映了动脉粥样硬化以及血脂升高的情况,而“瘀”则体现了心肌缺血及血液流变学的异常变化,因此,痰瘀被视为冠心病发病的关键因素[2]。代谢组学研究机体新陈代谢过程中产生的内源性小分子物质在种类、浓度或相对比例方面的变化。痰瘀互结证的核心是痰浊、瘀血等病理产物,也属于代谢产物的一部分,通过代谢组学研究,痰、瘀等继发性病理产物可得到定性描述与定量表征,痰瘀互结证的代谢机制有望得到进一步阐明[3]。本研究以代谢组学和痰瘀互结为切入点,探索冠心病痰瘀互结证(CHD-TYHJ)患者和健康对照组的代谢物差异,为冠心病临床辨证施治提供理论及实验依据。

1 材料和方法 1.1 病例来源及分组

选取来自天津市胸科医院2023年3—7月,经1名主治医师和1名主任医师严格诊断后辨证为CHD-TYHJ的患者。正常对照组选取来自天津中医药大学第二附属医院体检科、无心脏病史和其他重大疾病的患者。根据疾病和证型共分2组,包括CHD-TYHJ组42例、正常对照组20例受试者。本研究已通过临床伦理审批(批号:2021KY-011-01)。

1.2 纳入排除标准 1.2.1 疾病诊断标准及证候诊断标准

西医诊断标准:参考《缺血性心脏病的命名及诊断》和《中国血脂管理指南2024年》。中医证候诊断标准:参考《中药(新药)临床研究指导原则2002版》和《中医内科学》,并由临床中医主任医师辅助诊断,提高准确性。

1.2.2 纳入及排除标准

1)纳入标准:①西医符合急性心肌梗死和高脂血症诊断标准(未检测心电图和心肌酶指标),中医符合痰瘀互结证诊断标准;②年龄在35~85周岁之间,性别不限。

2)排除标准:①诊断为非痰瘀互结证的中医证型患者;②合并严重神经及精神疾病的患者;③合并严重原发性疾病、恶性肿瘤患者;④妊娠期、哺乳期妇女。

3)样本剔除标准:血液样本出现污染或损坏者。

1.3 实验试剂与仪器

甲醇(ME)、甲酸、水、乙腈(ACN),均购自美国Sigma-Aldrich公司。超声波清洗机,购自美国Sigma-Aldrich公司;漩涡振荡器,购自德国IKA公司;台式高速冷冻离心机、冷冻浓缩离心干燥器,购自德国Eppendorf公司;高分辨质谱仪、高效液相色谱仪,购自美国Thermo Scientific公司;色谱柱,购自美国Waters公司。

2 研究方法 2.1 标本采集

使用真空采集管空腹采取受试者静脉血2 mL,常温静置1 h后进行血清提取,将血液在4 ℃下以4 000 r/min离心15 min,离心半径15 cm。取上清液并储存在-80 ℃冰箱中。

2.2 血清血脂检测

使用全自动生化仪检测两组血清中总胆固醇(TC)、三酰甘油(TG)、高密度脂蛋白胆固醇(HDL-C)和低密度脂蛋白胆固醇(LDL-C)的水平。

2.3 血清样本处理

在100 μL血清样本中加入3倍量甲醇,涡旋振荡后在13 000 r/min,4 ℃条件下离心15 min,离心半径8 cm,吸取上清备用。

2.4 液相色谱-质谱检测条件

1)色谱条件:流动相由水、乙腈、0.1% 甲酸(A)和0.1% 甲酸(B)组成,柱温40 ℃,流速0.4 mL/min,进样体积5 μL。优化梯度条件为0~3.5 min,5%~15%A;3.5~6.5 min,15%~30%A;6.5~12.5 min,30%~70%A;12.5~18.5 min,70%~100%A。

2)质谱条件:以两种离子模式进行质谱分析(MS)和串联质谱分析(MS/MS)扫描。以下参数设置如下:在正离子和负离子模式下,碰撞能量40 eV/40 eV,碰撞能量差20 V。ESI离子源参数设置如下:雾化压力(GS1)55 psi,辅助压力(GS2)55 psi,气幕压力35 psi,源温度500 ℃,喷雾电压5 500 V(正离子模式)或4 500 V(负离子模式),扫描范围100~1 500 Da。

2.5 数据处理与分析

首先将数据导入Progenesis QI软件进行峰提取,获得代谢物相关的质荷比、保留时间和离子面积等信息,采用多变量偏最小二乘法判别分析(PLS-DA)模型前两个主成分的VIP值,结合单变量分析差异倍数和P值进行质荷比的筛选,通过检索人类代谢组数据库(HMDB)、京都基因和基因组百科全书数据库(KEGG)定性可能的差异性代谢物,最后对差异性代谢物所在的通路进行综合分析(包含富集分析和拓扑分析),找到与代谢差异物相关性最高的关键通路。

临床资料血脂数据采用SPSS 26.0统计软件进行分析,计量资料采用均数±标准差(x±s)表示,组间比较采用t检验,P < 0.05表示差异具有统计学意义。

3 研究结果 3.1 临床资料比较

CHD-TYHJ组中男32例,女10例,平均年龄为(58.64±7.16)岁;正常对照组中男12例,女8例,平均年龄(57.23±7.93)岁。两组一般资料比较差异无统计学意义(P > 0.05)。

3.2 血脂结果分析

与CHD-TYHJ组相比,正常对照组血清HDL-C水平显著降低(P < 0.01)、LDL-C水平降低(P < 0.05),TC和TG水平无显著差异(P > 0.05)。见表 1

表 1 CHD-TYHJ组与正常对照组血脂比较(x±s Tab. 1 Comparison of blood lipids between CHD-TYHJ group and control group(x±s)  
mmol/L
组别 例数 TC TG HDL-C LDL-C
正常对照组 20 4.15±0.17 1.40±1.00 1.39±0.29** 2.47±0.27*
CHD-TYHJ组 42 4.81±1.08 1.93±1.03 1.02±0.23 3.25±1.07
注:与CHD-TYHJ组比较,*P < 0.05,**P < 0.01。
3.3 多元统计分析差异代谢物 3.3.1 代谢物主成分(PCA)分析

PCA分析结果显示CHD-TYHJ组与正常对照组的代谢物谱呈现一定的区分度。见图 1

注:左图为阳离子模式;右图为阴离子模式。红色为CHD-TYHJ组;蓝色为正常对照组。 图 1 CHD-TYHJ组与正常对照组PCA模式下样本分布示意图 Fig. 1 Schematic diagram of sample distribution under PCA mode between the CHD-TYHJ group and control group
3.3.2 代谢物PLS-DA分析

PLS-DA分析结果见图 2。由图可知,CHD-TYHJ组与正常对照组代谢谱区分度良好。

注:左图为阳离子模式;右图为阴离子模式。红色为CHD-TYHJ组;蓝色为正常对照组。 图 2 CHD-TYHJ组与正常对照组PLS-DA模式下样本分布示意图 Fig. 2 Schematic diagram of sample distribution under PLS-DA analysis between the CHD-TYHJ group and control group
3.3.3 代谢物正交偏最小二乘判别分析(OPLSDA)

采用OPLS-DA对CHD-TYHJ组与正常对照组进行多元统计比较,两组中大部分样本点在椭圆内,即95% 的置信区间内,2个比较组之间明显分离,说明两组的代谢物谱有显著改变。见图 3。OPLS-DA模型性能均良好,并且CHD-TYHJ组与正常对照组都能呈现良好的聚类效果,组间明显区分。见图 4。采用置换检验对OPLS-DA模型进行验证,Q2在Y轴截距均为负值,表明所建立的OPLS-DA模型未过度拟合,结果可靠。

注:左图为阳离子模式;右图为阴离子模式。红色为CHD-TYHJ组;蓝色为正常对照组。 图 3 CHD-TYHJ组与正常对照组OPLS-DA模式下样本分布示意图 Fig. 3 Schematic diagram of sample distribution under OPLS-DA analysis between the CHD-TYHJ group and control group
注:左图为阳离子模式;右图为阴离子模式。 图 4 正负离子模型验证图 Fig. 4 Verification diagram of the positive and negative ion model
3.4 冠心病痰瘀互结证差异代谢物 3.4.1 差异物分组聚类分析热图

利用数据库对CHD-TYHJ组与正常对照组的差异代谢物进行聚类分析,数据表明,两组差异代谢物的组间分离度良好;表明上述差异代谢物筛选方法合理可靠。见图 5

注:左图为阳离子模式;右图为阴离子模式。热图VIP值前50位的差异代谢物聚类结果,越红表示表达丰度越高。 图 5 差异代谢物热图 Fig. 5 Heatmap of differentially metabolized compounds
3.4.2 代谢物差异柱状图

CHD-TYHJ组与正常对照组的差异代谢物,在正离子模式中,共有82个代谢物上调,19个代谢物下调;在负离子模式中,共有12个代谢物上调,19个代谢物下调。见图 6。正负离子整合模式下标志性代谢物见表 2

注:左图为阳离子模式;右图为阴离子模式。柱状图表示代谢物分布情况,红色表示上调,蓝色表示下调。 图 6 差异代谢物柱状图 Fig. 6 Bar chart of differentially expressed metabolites
表 2 正负离子整合模式下差异代谢物(分辨率、质量精确度、倍性变化数值) Tab. 2 Differentially metabolized compounds under positive-negative ion integration mode(resolution, mass accuracy, multiplicity change value)
名称 P VIP 化学式 质荷比 名称 P VIP 化学式 质荷比
4-Hydroxybenzoic acid 0.020 380 7 11.254 C7H6O3 137.024 N-[[(2S, 3S, 4R, 5R)-5-[2-Chloro-6-[(3-iodophenyl)methylamino] purin-9-yl]-3, 4-dihydroxyoxolan-2-yl]-hydroxymethyl]-N-methylformamide 8.06E-09 4.939 C19H20ClI N6O5 619.021
PC(16:0/20:3(8Z, 11Z, 14Z)) 0.000 427 3 9.706 C44H82NO8P 784.583 Sodium formate 2.78E-19 4.633 CHNaO2 112.986
Cavipetin C 1.83E-12 9.705 C24H36O4 433.260 PC(DiMe(11, 5)/22:6(5Z, 8E, 10Z, 13Z, 15E, 19Z)-2OH(7S, 17S)) 1.61E-22 4.523 C52H86NO11P 914.595
Tropolone 1.54E-11 9.519 C7H6O2 121.029 Hovenine A 9.37E-26 4.294 C27H42N4O4 509.311
4-Hydroxy-2, 6, 6-trimethyl-3-oxo-1, 4-cyclohexadiene-1-carboxaldehyde 8.62E-11 9.276 C10H12O3 179.071 PC(20:0/18:3(6Z, 9Z, 12Z)) 0.0013614 4.215 C46H86NO8P 834.599
D-Glucose 3.92E-05 7.598 C6H12O6 179.056 Ethoxyacetic acid 3.72E-06 4.156 C4H8O3 103.040
metergoline 6.45E-27 6.788 C25H29N3O2 421.259 PG(a-25:0/5-iso PGF2VI) 1.82E-29 3.928 C49H91O13P 936.651
2-Azetidinecarboxylic acid, 3-(3-((aminoiminomethyl)amino)propyl)-1-((4-(((1, 1-dimethylethyl)amino)carbonyl)-1-piperazinyl)carbonyl)-4-oxo-, (2S, 3R)- 1.88E-26 6.766 C18H31N7O5 443.272 3-O-Sulfogalactosylceramide (d18:1/24:0) 5.29E-31 3.863 C48H93NO11S 914.638
3-O-Methyl-D-glucopyranose 1.75E-06 6.232 C7H14O6 239.077 2, 2′-{Oxybis[(2, 1-phenylene)oxy]}bis(N, N-dicyclohexylacetamide) 1.33E-25 3.838 C40H56N2O5 645.427
PE-NMe2(22:5(4Z, 7Z, 10Z, 13Z, 16Z)/22:6(4Z, 7Z, 10Z, 13Z, 16Z, 19Z)) 2.46E-25 5.954 C51H80NO8P 848.556 13-Demethylspirolide C 8.02E-23 3.748 C42H61NO7 674.443
PI(16:0/16:1(9Z)) 4.47E-26 5.895 C41H77O13P 826.543 PA(24:0/6 keto-PGF1alpha) 5.26E-32 3.691 C47H87O12P 892.625
PS(P-20:0/22:6(4Z, 7Z, 10Z, 13Z, 16Z, 19Z)) 2.20E-26 5.888 C48H82NO9P 870.568 PA(14:0/PGF1alpha) 7.37E-27 3.577 C37H69O11P 738.491
PC(18:1(11Z)/18:1(11Z)) 0.000 361 7 5.340 C44H84NO8P 808.583 (2-((3, 5-Di-t-butyl-4-hydroxyphenyl)thio)-1-methylpropoxy)acetic acid 0.000 290 6 3.550 C20H32O4S 413.200
PE-NMe2(22:4(7Z, 10Z, 13Z, 16Z)/22:5(4Z, 7Z, 10Z, 13Z, 16Z)) 6.62E-24 5.334 C51H84NO8P 892.582 Bilirubin 2.43E-06 3.296 C33H36N4O6 585.270
1-Nonadecanoyl-glycero-3-phosphoethanolamine 9.14E-21 5.311 C24H50NO7P 540.331 PC(DiMe(11, 3)/MonoMe(11, 3)) 3.29E-32 3.195 C47H83NO10P+ 870.612
Prehumulone 6.65E-28 3.182 C22H32O5 377.232
3.5 冠心病心绞痛痰瘀互结证差异代谢物生物信息学分析

对冠心病痰瘀互结证的差异代谢物进行信号通路富集分析,与差异代谢物相关性较高的4个关键通路依次为甘油磷脂代谢、花生四烯酸代谢、亚油酸代谢和α-亚麻酸代谢。见图 7

图 7 CHD-TYHJ组与正常对照组血清差异代谢物的代谢通路分析图 Fig. 7 Metabolic pathway analysis of serum differential metabolites between the CHD-TYHJ group and control group
4 讨论

冠心病是心血管系统的常见疾病,中医临床上以痰、瘀相关证较为多见。痰湿证是冠心病的病程发展阶段的一个证型,随着疾病的进展和变化,可能形成痰瘀互结证[4]。此前张伯礼院士已经提出“痰瘀互生”的病因病机理论,认为痰瘀可互生,痰是瘀的初期阶段,瘀是痰浊的进一步发展,痰与瘀是疾病发生、发展、恶化的基本继发因素,痰瘀互生是“病重之源”[5]

本研究借助代谢组学筛选冠心病痰瘀互结的血清差异代谢物。通过对冠心病痰瘀互结患者的血清进行代谢组学分析,在正负离子整合模式下,有80个代谢物上调,36个代谢物下调,其中包括对羟基苯甲酸D-葡萄糖等关键差异代谢物。生物信息学分析显示,与代谢物差异相关性较高的4个关键通路依次甘油磷脂代谢、花生四烯酸代谢、亚油酸代谢和α-亚麻酸代谢。甘油磷脂代谢在细胞生理过程中具有重要作用,其关键酶参与细胞膜的合成、修复和降解,维持细胞膜稳定。此前心肌脂质代谢研究发现,甘油磷脂代谢是治疗心力衰竭的关键通路[6]。花生四烯酸代谢涉及环氧合酶、脂氧合酶和细胞色素P450调控的3种代谢途径,广泛参与炎症反应和药物代谢等生理和病理过程[7]。花生四烯酸与心血管疾病的发展密切相关,研究表明,花生四烯酸通过肌醇需求酶1α(IRE1α)/剪接型X盒结合蛋白1(XBP1s)/Runt相关转录因子2(RUNX2)/ 骨桥蛋白(OPN)信号级联参与高盐饮食诱导的冠状动脉重塑[8]。亚油酸代谢是脂肪酸合成和分解的机制,其重要功能之一就是对人体血糖的控制。亚油酸代谢可能对慢性心力衰竭发挥保护作用[9]。α-亚麻酸代谢具有抗代谢综合征、抗炎、抗氧化、抗肥胖等作用,实验研究证实,α-亚麻酸可预防心室颤动、降低血小板聚集[10]

此前研究表明,冠心病心绞痛痰瘀互结证患者血清标志性代谢差异物为6-去氢睾酮葡糖苷酸、甘氨鹅脱氧胆酸等[11]。冠心病痰瘀互结证患者血清中涉及的代谢通路包括赖氨酸降解、氰基氨基酸代谢、甲苯降解、亚油酸代谢、甘油磷脂代谢、花生四烯酸代谢、咖啡因代谢、视黄醇代谢、精氨酸和脯氨酸代谢、细胞色素P450通路[4, 12-14]。本研究与此前研究的代谢通路基本一致,而α-亚麻酸代谢为首次在冠心病痰瘀互结患者血清代谢组学研究中发现,为冠心病痰瘀互结证的代谢研究丰富了生物基础。

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Analysis of metabolic differentiators and pathways in patients with coronary artery disease with phlegm and blood stasis syndrome based on serum metabolomics
WEN Tao1 , SONG Zhihui1 , LI Zhenzhen1 , XIAO Yang2 , ZHAO Jia3 , WANG Yi1     
1. Institute of Traditional Chinese Medicine, Tianjin University of Traditional Chinese Medicine, Tianjin 301617, China;
2. The Second Affiliated Hospital of Tianjin University of Traditional Chinese Medicine, Tianjin 300250, China;
3. Tianjin Chest Hospital, Tianjin 300222, China
Abstract: [Objective] To apply metabolomics technology to analyze the metabolic differentiations and pathways in the serum of patients with coronary heart disease with phlegm and blood stasis syndrome, and to enrich the metabolomics study of coronary heart disease with phlegm and blood stasis syndrome. [Methods] A total of 62 patients with coronary heart disease in Tianjin Chest Hospital from March 2023 to July 2023 were collected and divided into 42 cases in the CHD-TYHJ group and 20 cases in the control group according to the disease and evidence type. The 2 mL of venous blood was drawn from the subjects on an empty stomach, and the serum was extracted after standing at room temperature for 1 hour. The levels of TC, TG, HDL-C and LDL-C in the sera of the two groups were detected by using fully automated biochemistry, followed by comparison of the metabolites in the sera of the two groups and signaling pathway enrichment analysis of the differential metabolites in the evidence of CHO-HYHJ by using the Metabo Analyst platform. [Results] Compared with the CHD-TYHJ group, serum HDL-C and LDL-C levels were reduced in the control group(P < 0.05), and there was no significant difference in TC and TG levels(P > 0.05).The metabolic profiles of the CHD-TYHJ group were well differentiated from those of the control group, and the OPLS-DA model was not overfitted, and the results shown were reliable. The metabolic profiles of the CHD-TYHJ group were better differentiated from those of the control group. Control group, a total of 82 metabolites were up-regulated and 19 metabolites were down-regulated in the positive ion model, and a total of 12 metabolites were up-regulated and 19 metabolites were down-regulated in the negative ion model. The four key pathways with the highest correlation with metabolite differences were, in order, glycerophospholipid metabolism, arachidonic acid metabolism, linoleic acid metabolism, and alpha-linolenic acid metabolism, linoleic acid metabolism, and alpha-linolenic acid metabolism. [Conclusion] Differential metabolites existed between CHD-TYHJ and control group, and the alpha-linolenic acid metabolic pathway was the first time to be found in the serum metabolomics of patients with coronary heart disease with phlegm and blood stasis syndrome.
Key words: metabolomics    coronary heart disease    phlegm and blood stasis    Chinese medicine