文章信息
- 温涛, 宋志会, 李真真, 等.
- WEN Tao, SONG Zhihui, LI Zhenzhen, et al.
- 基于血清代谢组学分析冠心病痰瘀互结证患者的代谢差异物及通路
- Analysis of metabolic differentiators and pathways in patients with coronary artery disease with phlegm and blood stasis syndrome based on serum metabolomics
- 天津中医药, 2026, 43(2): 147-153
- Tianjin Journal of Traditional Chinese Medicine, 2026, 43(2): 147-153
- http://dx.doi.org/10.11656/j.issn.1672-1519.2026.02.03
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文章历史
- 收稿日期: 2025-09-28
2. 天津中医药大学第二附属医院,天津 300250;
3. 天津市胸科医院,天津 300222
冠心病(CHD)是由心脏冠状动脉粥样硬化性狭窄或闭塞引起的慢性冠状动脉疾病,以心肌缺血、缺氧和坏死为主要病理表现[1]。《金匮要略》最早记载了“胸痹”这一症状,在中医领域,冠心病被归类为“胸痹心痛”范畴。中医看来,“痰”反映了动脉粥样硬化以及血脂升高的情况,而“瘀”则体现了心肌缺血及血液流变学的异常变化,因此,痰瘀被视为冠心病发病的关键因素[2]。代谢组学研究机体新陈代谢过程中产生的内源性小分子物质在种类、浓度或相对比例方面的变化。痰瘀互结证的核心是痰浊、瘀血等病理产物,也属于代谢产物的一部分,通过代谢组学研究,痰、瘀等继发性病理产物可得到定性描述与定量表征,痰瘀互结证的代谢机制有望得到进一步阐明[3]。本研究以代谢组学和痰瘀互结为切入点,探索冠心病痰瘀互结证(CHD-TYHJ)患者和健康对照组的代谢物差异,为冠心病临床辨证施治提供理论及实验依据。
1 材料和方法 1.1 病例来源及分组选取来自天津市胸科医院2023年3—7月,经1名主治医师和1名主任医师严格诊断后辨证为CHD-TYHJ的患者。正常对照组选取来自天津中医药大学第二附属医院体检科、无心脏病史和其他重大疾病的患者。根据疾病和证型共分2组,包括CHD-TYHJ组42例、正常对照组20例受试者。本研究已通过临床伦理审批(批号:2021KY-011-01)。
1.2 纳入排除标准 1.2.1 疾病诊断标准及证候诊断标准西医诊断标准:参考《缺血性心脏病的命名及诊断》和《中国血脂管理指南2024年》。中医证候诊断标准:参考《中药(新药)临床研究指导原则2002版》和《中医内科学》,并由临床中医主任医师辅助诊断,提高准确性。
1.2.2 纳入及排除标准1)纳入标准:①西医符合急性心肌梗死和高脂血症诊断标准(未检测心电图和心肌酶指标),中医符合痰瘀互结证诊断标准;②年龄在35~85周岁之间,性别不限。
2)排除标准:①诊断为非痰瘀互结证的中医证型患者;②合并严重神经及精神疾病的患者;③合并严重原发性疾病、恶性肿瘤患者;④妊娠期、哺乳期妇女。
3)样本剔除标准:血液样本出现污染或损坏者。
1.3 实验试剂与仪器甲醇(ME)、甲酸、水、乙腈(ACN),均购自美国Sigma-Aldrich公司。超声波清洗机,购自美国Sigma-Aldrich公司;漩涡振荡器,购自德国IKA公司;台式高速冷冻离心机、冷冻浓缩离心干燥器,购自德国Eppendorf公司;高分辨质谱仪、高效液相色谱仪,购自美国Thermo Scientific公司;色谱柱,购自美国Waters公司。
2 研究方法 2.1 标本采集使用真空采集管空腹采取受试者静脉血2 mL,常温静置1 h后进行血清提取,将血液在4 ℃下以4 000 r/min离心15 min,离心半径15 cm。取上清液并储存在-80 ℃冰箱中。
2.2 血清血脂检测使用全自动生化仪检测两组血清中总胆固醇(TC)、三酰甘油(TG)、高密度脂蛋白胆固醇(HDL-C)和低密度脂蛋白胆固醇(LDL-C)的水平。
2.3 血清样本处理在100 μL血清样本中加入3倍量甲醇,涡旋振荡后在13 000 r/min,4 ℃条件下离心15 min,离心半径8 cm,吸取上清备用。
2.4 液相色谱-质谱检测条件1)色谱条件:流动相由水、乙腈、0.1% 甲酸(A)和0.1% 甲酸(B)组成,柱温40 ℃,流速0.4 mL/min,进样体积5 μL。优化梯度条件为0~3.5 min,5%~15%A;3.5~6.5 min,15%~30%A;6.5~12.5 min,30%~70%A;12.5~18.5 min,70%~100%A。
2)质谱条件:以两种离子模式进行质谱分析(MS)和串联质谱分析(MS/MS)扫描。以下参数设置如下:在正离子和负离子模式下,碰撞能量40 eV/40 eV,碰撞能量差20 V。ESI离子源参数设置如下:雾化压力(GS1)55 psi,辅助压力(GS2)55 psi,气幕压力35 psi,源温度500 ℃,喷雾电压5 500 V(正离子模式)或4 500 V(负离子模式),扫描范围100~1 500 Da。
2.5 数据处理与分析首先将数据导入Progenesis QI软件进行峰提取,获得代谢物相关的质荷比、保留时间和离子面积等信息,采用多变量偏最小二乘法判别分析(PLS-DA)模型前两个主成分的VIP值,结合单变量分析差异倍数和P值进行质荷比的筛选,通过检索人类代谢组数据库(HMDB)、京都基因和基因组百科全书数据库(KEGG)定性可能的差异性代谢物,最后对差异性代谢物所在的通路进行综合分析(包含富集分析和拓扑分析),找到与代谢差异物相关性最高的关键通路。
临床资料血脂数据采用SPSS 26.0统计软件进行分析,计量资料采用均数±标准差(x±s)表示,组间比较采用t检验,P < 0.05表示差异具有统计学意义。
3 研究结果 3.1 临床资料比较CHD-TYHJ组中男32例,女10例,平均年龄为(58.64±7.16)岁;正常对照组中男12例,女8例,平均年龄(57.23±7.93)岁。两组一般资料比较差异无统计学意义(P > 0.05)。
3.2 血脂结果分析与CHD-TYHJ组相比,正常对照组血清HDL-C水平显著降低(P < 0.01)、LDL-C水平降低(P < 0.05),TC和TG水平无显著差异(P > 0.05)。见表 1。
| mmol/L | |||||||||||||||||||||||||||||
| 组别 | 例数 | TC | TG | HDL-C | LDL-C | ||||||||||||||||||||||||
| 正常对照组 | 20 | 4.15±0.17 | 1.40±1.00 | 1.39±0.29** | 2.47±0.27* | ||||||||||||||||||||||||
| CHD-TYHJ组 | 42 | 4.81±1.08 | 1.93±1.03 | 1.02±0.23 | 3.25±1.07 | ||||||||||||||||||||||||
| 注:与CHD-TYHJ组比较,*P < 0.05,**P < 0.01。 | |||||||||||||||||||||||||||||
PCA分析结果显示CHD-TYHJ组与正常对照组的代谢物谱呈现一定的区分度。见图 1。
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| 注:左图为阳离子模式;右图为阴离子模式。红色为CHD-TYHJ组;蓝色为正常对照组。 图 1 CHD-TYHJ组与正常对照组PCA模式下样本分布示意图 Fig. 1 Schematic diagram of sample distribution under PCA mode between the CHD-TYHJ group and control group |
PLS-DA分析结果见图 2。由图可知,CHD-TYHJ组与正常对照组代谢谱区分度良好。
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| 注:左图为阳离子模式;右图为阴离子模式。红色为CHD-TYHJ组;蓝色为正常对照组。 图 2 CHD-TYHJ组与正常对照组PLS-DA模式下样本分布示意图 Fig. 2 Schematic diagram of sample distribution under PLS-DA analysis between the CHD-TYHJ group and control group |
采用OPLS-DA对CHD-TYHJ组与正常对照组进行多元统计比较,两组中大部分样本点在椭圆内,即95% 的置信区间内,2个比较组之间明显分离,说明两组的代谢物谱有显著改变。见图 3。OPLS-DA模型性能均良好,并且CHD-TYHJ组与正常对照组都能呈现良好的聚类效果,组间明显区分。见图 4。采用置换检验对OPLS-DA模型进行验证,Q2在Y轴截距均为负值,表明所建立的OPLS-DA模型未过度拟合,结果可靠。
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| 注:左图为阳离子模式;右图为阴离子模式。红色为CHD-TYHJ组;蓝色为正常对照组。 图 3 CHD-TYHJ组与正常对照组OPLS-DA模式下样本分布示意图 Fig. 3 Schematic diagram of sample distribution under OPLS-DA analysis between the CHD-TYHJ group and control group |
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| 注:左图为阳离子模式;右图为阴离子模式。 图 4 正负离子模型验证图 Fig. 4 Verification diagram of the positive and negative ion model |
利用数据库对CHD-TYHJ组与正常对照组的差异代谢物进行聚类分析,数据表明,两组差异代谢物的组间分离度良好;表明上述差异代谢物筛选方法合理可靠。见图 5。
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| 注:左图为阳离子模式;右图为阴离子模式。热图VIP值前50位的差异代谢物聚类结果,越红表示表达丰度越高。 图 5 差异代谢物热图 Fig. 5 Heatmap of differentially metabolized compounds |
CHD-TYHJ组与正常对照组的差异代谢物,在正离子模式中,共有82个代谢物上调,19个代谢物下调;在负离子模式中,共有12个代谢物上调,19个代谢物下调。见图 6。正负离子整合模式下标志性代谢物见表 2。
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| 注:左图为阳离子模式;右图为阴离子模式。柱状图表示代谢物分布情况,红色表示上调,蓝色表示下调。 图 6 差异代谢物柱状图 Fig. 6 Bar chart of differentially expressed metabolites |
| 名称 | P | VIP | 化学式 | 质荷比 | 名称 | P | VIP | 化学式 | 质荷比 | |
| 4-Hydroxybenzoic acid | 0.020 380 7 | 11.254 | C7H6O3 | 137.024 | N-[[(2S, 3S, 4R, 5R)-5-[2-Chloro-6-[(3-iodophenyl)methylamino] purin-9-yl]-3, 4-dihydroxyoxolan-2-yl]-hydroxymethyl]-N-methylformamide | 8.06E-09 | 4.939 | C19H20ClI N6O5 | 619.021 | |
| PC(16:0/20:3(8Z, 11Z, 14Z)) | 0.000 427 3 | 9.706 | C44H82NO8P | 784.583 | Sodium formate | 2.78E-19 | 4.633 | CHNaO2 | 112.986 | |
| Cavipetin C | 1.83E-12 | 9.705 | C24H36O4 | 433.260 | PC(DiMe(11, 5)/22:6(5Z, 8E, 10Z, 13Z, 15E, 19Z)-2OH(7S, 17S)) | 1.61E-22 | 4.523 | C52H86NO11P | 914.595 | |
| Tropolone | 1.54E-11 | 9.519 | C7H6O2 | 121.029 | Hovenine A | 9.37E-26 | 4.294 | C27H42N4O4 | 509.311 | |
| 4-Hydroxy-2, 6, 6-trimethyl-3-oxo-1, 4-cyclohexadiene-1-carboxaldehyde | 8.62E-11 | 9.276 | C10H12O3 | 179.071 | PC(20:0/18:3(6Z, 9Z, 12Z)) | 0.0013614 | 4.215 | C46H86NO8P | 834.599 | |
| D-Glucose | 3.92E-05 | 7.598 | C6H12O6 | 179.056 | Ethoxyacetic acid | 3.72E-06 | 4.156 | C4H8O3 | 103.040 | |
| metergoline | 6.45E-27 | 6.788 | C25H29N3O2 | 421.259 | PG(a-25:0/5-iso PGF2VI) | 1.82E-29 | 3.928 | C49H91O13P | 936.651 | |
| 2-Azetidinecarboxylic acid, 3-(3-((aminoiminomethyl)amino)propyl)-1-((4-(((1, 1-dimethylethyl)amino)carbonyl)-1-piperazinyl)carbonyl)-4-oxo-, (2S, 3R)- | 1.88E-26 | 6.766 | C18H31N7O5 | 443.272 | 3-O-Sulfogalactosylceramide (d18:1/24:0) | 5.29E-31 | 3.863 | C48H93NO11S | 914.638 | |
| 3-O-Methyl-D-glucopyranose | 1.75E-06 | 6.232 | C7H14O6 | 239.077 | 2, 2′-{Oxybis[(2, 1-phenylene)oxy]}bis(N, N-dicyclohexylacetamide) | 1.33E-25 | 3.838 | C40H56N2O5 | 645.427 | |
| PE-NMe2(22:5(4Z, 7Z, 10Z, 13Z, 16Z)/22:6(4Z, 7Z, 10Z, 13Z, 16Z, 19Z)) | 2.46E-25 | 5.954 | C51H80NO8P | 848.556 | 13-Demethylspirolide C | 8.02E-23 | 3.748 | C42H61NO7 | 674.443 | |
| PI(16:0/16:1(9Z)) | 4.47E-26 | 5.895 | C41H77O13P | 826.543 | PA(24:0/6 keto-PGF1alpha) | 5.26E-32 | 3.691 | C47H87O12P | 892.625 | |
| PS(P-20:0/22:6(4Z, 7Z, 10Z, 13Z, 16Z, 19Z)) | 2.20E-26 | 5.888 | C48H82NO9P | 870.568 | PA(14:0/PGF1alpha) | 7.37E-27 | 3.577 | C37H69O11P | 738.491 | |
| PC(18:1(11Z)/18:1(11Z)) | 0.000 361 7 | 5.340 | C44H84NO8P | 808.583 | (2-((3, 5-Di-t-butyl-4-hydroxyphenyl)thio)-1-methylpropoxy)acetic acid | 0.000 290 6 | 3.550 | C20H32O4S | 413.200 | |
| PE-NMe2(22:4(7Z, 10Z, 13Z, 16Z)/22:5(4Z, 7Z, 10Z, 13Z, 16Z)) | 6.62E-24 | 5.334 | C51H84NO8P | 892.582 | Bilirubin | 2.43E-06 | 3.296 | C33H36N4O6 | 585.270 | |
| 1-Nonadecanoyl-glycero-3-phosphoethanolamine | 9.14E-21 | 5.311 | C24H50NO7P | 540.331 | PC(DiMe(11, 3)/MonoMe(11, 3)) | 3.29E-32 | 3.195 | C47H83NO10P+ | 870.612 | |
| Prehumulone | 6.65E-28 | 3.182 | C22H32O5 | 377.232 |
对冠心病痰瘀互结证的差异代谢物进行信号通路富集分析,与差异代谢物相关性较高的4个关键通路依次为甘油磷脂代谢、花生四烯酸代谢、亚油酸代谢和α-亚麻酸代谢。见图 7。
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| 图 7 CHD-TYHJ组与正常对照组血清差异代谢物的代谢通路分析图 Fig. 7 Metabolic pathway analysis of serum differential metabolites between the CHD-TYHJ group and control group |
冠心病是心血管系统的常见疾病,中医临床上以痰、瘀相关证较为多见。痰湿证是冠心病的病程发展阶段的一个证型,随着疾病的进展和变化,可能形成痰瘀互结证[4]。此前张伯礼院士已经提出“痰瘀互生”的病因病机理论,认为痰瘀可互生,痰是瘀的初期阶段,瘀是痰浊的进一步发展,痰与瘀是疾病发生、发展、恶化的基本继发因素,痰瘀互生是“病重之源”[5]。
本研究借助代谢组学筛选冠心病痰瘀互结的血清差异代谢物。通过对冠心病痰瘀互结患者的血清进行代谢组学分析,在正负离子整合模式下,有80个代谢物上调,36个代谢物下调,其中包括对羟基苯甲酸D-葡萄糖等关键差异代谢物。生物信息学分析显示,与代谢物差异相关性较高的4个关键通路依次甘油磷脂代谢、花生四烯酸代谢、亚油酸代谢和α-亚麻酸代谢。甘油磷脂代谢在细胞生理过程中具有重要作用,其关键酶参与细胞膜的合成、修复和降解,维持细胞膜稳定。此前心肌脂质代谢研究发现,甘油磷脂代谢是治疗心力衰竭的关键通路[6]。花生四烯酸代谢涉及环氧合酶、脂氧合酶和细胞色素P450调控的3种代谢途径,广泛参与炎症反应和药物代谢等生理和病理过程[7]。花生四烯酸与心血管疾病的发展密切相关,研究表明,花生四烯酸通过肌醇需求酶1α(IRE1α)/剪接型X盒结合蛋白1(XBP1s)/Runt相关转录因子2(RUNX2)/ 骨桥蛋白(OPN)信号级联参与高盐饮食诱导的冠状动脉重塑[8]。亚油酸代谢是脂肪酸合成和分解的机制,其重要功能之一就是对人体血糖的控制。亚油酸代谢可能对慢性心力衰竭发挥保护作用[9]。α-亚麻酸代谢具有抗代谢综合征、抗炎、抗氧化、抗肥胖等作用,实验研究证实,α-亚麻酸可预防心室颤动、降低血小板聚集[10]。
此前研究表明,冠心病心绞痛痰瘀互结证患者血清标志性代谢差异物为6-去氢睾酮葡糖苷酸、甘氨鹅脱氧胆酸等[11]。冠心病痰瘀互结证患者血清中涉及的代谢通路包括赖氨酸降解、氰基氨基酸代谢、甲苯降解、亚油酸代谢、甘油磷脂代谢、花生四烯酸代谢、咖啡因代谢、视黄醇代谢、精氨酸和脯氨酸代谢、细胞色素P450通路[4, 12-14]。本研究与此前研究的代谢通路基本一致,而α-亚麻酸代谢为首次在冠心病痰瘀互结患者血清代谢组学研究中发现,为冠心病痰瘀互结证的代谢研究丰富了生物基础。
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