天津中医药大学学报  2025, Vol. 44 Issue (3): 226-232

文章信息

李雪梅, 刘源, 乔乐天, 王子亮, 方明
LI Xuemei, LIU Yuan, QIAO Letian, WANG Ziliang, FANG Ming
炙甘草汤调控SIRT1/PGC-1α通路改善CCl4致小鼠急性肝损伤的作用机制
Mechanism of Fried glycyrrhizae decoction in improving CCl4 induced acute liver injury in mice by regulating the SIRT1/PGC-1α pathway
天津中医药大学学报, 2025, 44(3): 226-232
Journal of Tianjin University of Traditional Chinese Medicine, 2025, 44(3): 226-232
http://dx.doi.org/10.11656/j.issn.1673-9043.2025.03.06

文章历史

收稿日期: 2024-12-10
炙甘草汤调控SIRT1/PGC-1α通路改善CCl4致小鼠急性肝损伤的作用机制
李雪梅1 , 刘源1 , 乔乐天1 , 王子亮1 , 方明2     
1. 商丘市第一人民医院药学部, 商丘 476100;
2. 商丘医学高等专科学校药理学教研室, 商丘 476002
摘要: [目的] 探讨炙甘草汤调控沉默信息调节因子1(SIRT1)/过氧化物酶体增殖物激活受体γ共激活剂-1α(PGC-1α)通路改善四氯化碳(CCl4)致小鼠急性肝损伤的作用机制。[方法] 小鼠随机分为对照组、CCl4组、炙甘草汤低、中、高(炙甘草汤-L、炙甘草汤-M、炙甘草汤-H)剂量(2、4、8 mL/kg)组、炙甘草汤-H+SIRT1抑制剂-sirtinol(2 mg/kg sirtinol)组、奥贝胆酸(30 mg/kg)组,除对照组外,其余各组均通过注射CCl4建立小鼠急性肝损伤模型,观察小鼠一般状态及肝脏外观,收集血清,检测白细胞介素(IL)-6、丙氨酸氨基转移酶(ALT)、肿瘤坏死因子-α(TNF-α)、天冬氨酸氨基转移酶(AST)水平;收集肝脏组织,检测超氧化物歧化酶(SOD)、丙二醛(MDA)水平、病理损伤以及SIRT1/PGC-1α通路蛋白表达。[结果] 与对照组相比,CCl4组细胞出现坏死、炎性浸润及胶原纤维增生,血清中AST、ALT水平、TNF-α、IL-6水平、肝脏组织MDA增加,SOD、SIRT1、PGC-1α表达降低(P<0.05);与CCl4组相比,炙甘草汤-L、炙甘草汤-M、炙甘草汤-H组、奥贝胆酸组病理损伤得到改善,血清中AST、ALT水平、TNF-α、IL-6水平、肝脏组织MDA降低,SOD、SIRT1、PGC-1α表达增加,不同浓度炙甘草汤差异具有统计学意义(P<0.05),但炙甘草汤-H组与奥贝胆酸组相比无差异(P>0.05);与炙甘草汤-H组相比,炙甘草汤-H+sirtinol组炎性浸润及胶原沉积增加,血清中AST、ALT水平、TNF-α、IL-6水平、肝脏组织MDA增加,SOD、SIRT1、PGC-1α表达降低(P<0.05)。[结论] 炙甘草汤调控SIRT1/PGC-1α通路改善CCl4致小鼠急性肝损伤。
关键词: 炙甘草汤    沉默信息调节因子1/过氧化物酶体增殖物激活受体γ共激活剂-1α通路    四氯化碳    急性肝损伤    
Mechanism of Fried glycyrrhizae decoction in improving CCl4 induced acute liver injury in mice by regulating the SIRT1/PGC-1α pathway
LI Xuemei1 , LIU Yuan1 , QIAO Letian1 , WANG Ziliang1 , FANG Ming2     
1. Department of Pharmacy, Shangqiu First People's Hospital, Shangqiu 476100, China;
2. Department of Pharmacology, Shangqiu Medical College, Shangqiu 476002, China
Abstract: [Objective] To explore the mechanism of Fried glycyrrhizae decoction in improving carbon tetrachloride(CCl4) induced acute liver injury in mice by regulating the silent information regulation 1(SIRT1)/peroxisome proliferator activated receptor-gamma coactivator-1α(PGC-1α) pathway. [Methods] Mice were randomly grouped into a control group, a CCl4 group, a low, medium, and high(Fried glycyrrhizae decoction-L, Fried glycyrrhizae decoction-M, Fried glycyrrhizae decoction-H) dose groups(2 mL/kg, 4 mL/kg, 8 mL/kg), a Fried glycyrrhizae decoction-H+SIRT1 inhibitor sirtinol(2 mg/kg sirtinol) group, and obeticholic acid(30 mg/kg) group, except for the control group, all other groups established mouse acute liver injury models by injecting CCl4, the general state and liver appearance of mice were observed, serum was collected, and levels of interleukin-6(IL-6), alanine aminotransferase(ALT), tumor necrosis factor-α(TNF-α), and aspartate aminotransferase(AST) were detected; liver tissue was collected, and levels of superoxide dismutase(SOD), glutaraldehyde(MDA), pathological damage, and SIRT1/PGC-1α pathway protein expression were detected. [Results] Compared with the control group, CCl4 group cells showed necrosis, inflammatory infiltration, and collagen fiber proliferation, the levels of AST, ALT, TNF-α, IL-6 in serum, and MDA in liver tissue obviously increased, the expression of SOD, SIRT1, and PGC-1α obviously reduced(P < 0.05);compared with the CCl4 group, the pathological damage in the Fried glycyrrhizae decoction-L, Fried glycyrrhizae decoction-M, Fried glycyrrhizae decoction-H groups, and obeticholic acid group was improved, the levels of AST, ALT, TNF-α, IL-6 in serum, and MDA in liver tissue obviously reduced, the expression of SOD, SIRT1, and PGC-1α obviously increased, different concentrations of Fried glycyrrhizae decoction showed statistical differences(P < 0.05), however, there was no difference between the Fried glycyrrhizae decoction-H group and the obeticholic acid group(P > 0.05);compared with the Fried glycyrrhizae decoction-H group, the Fried glycyrrhizae decoction-H+sirtinol group showed an increase in inflammatory infiltration and collagen deposition, the levels of AST, ALT, TNF-α, IL-6 in serum, and MDA in liver tissue obviously increased, the expression of SOD, SIRT1, and PGC-1α obviously reduced(P < 0.05). [Conclusion] Fried glycyrrhizae decoction regulates the SIRT1/PGC-1α pathway to improve CCl4 induced acute liver injury in mice.
Key words: Fried glycyrrhizae decoction    SIRT1/PGC-1α pathway    CCl4    acute liver injury    

急性肝损伤是由于药物中毒、病毒感染、免疫反应等原因引发的肝功能异常及肝细胞损伤[1]。目前急性肝损伤有多种建模方式,但四氯化碳(CCl4)构建小鼠急性肝损伤模型因其造模效果较佳、操作要求低但重复性高而被广泛认可、应用[2]。急性肝损伤目前尚无有效的治疗方法,多数患者会发展为肝纤维化、肝癌,甚至威胁其生命[3]。研究发现中药作为近年来研究的热点,在治疗肝损伤中疗效显著,如姜黄[4]。急性肝损伤的临床症状多为食欲不振、身目黄染、胁痛等,故中医认为急性肝损伤属于黄疸、胁痛等范畴,其病因在于外感药毒之邪,或先天禀赋不足,或机体正气亏虚,其治疗方法应以滋阴补肾、疏肝理气、补血活血及调和肝脾为宗旨[5-6]。炙甘草汤由多种药物构成,如炙甘草、生姜、人参、桂枝、麻仁、麦冬等,为甘温之润剂,其中炙甘草可益气滋阴、补脾和胃、通阳复脉;人参可滋补肝肾、生津养血;阿胶、大枣具有滋阴补血的功效;桂枝性温、甘,具有杀菌抗病毒、滋而不腻、消炎止痛等多种药理作用;生姜、麦冬具有镇痛抗炎、抗氧化、提高免疫力、抗癌等作用,单味药的药理作用应用广泛,使得该汤药在多种疾病中被研究[7-9],但其在急性肝损伤中研究甚少[10]。据报道氧化应激、炎症反应往往参与CCl4建立的急性肝损伤[11]。沉默信息调节因子1(SIRT1)是一种组蛋白脱乙酰酶,过氧化物酶体增殖物激活受体γ共激活剂-1α(PGC-1α)是SIRT1的下游靶标,在各种疾病中起着关键作用,包括氧化应激、衰老和炎症[12],且已有研究表明SIRT1/PGC-1α通路是治疗肝损伤的潜在靶点[13]。同时,激活SIRT1/PGC-1α通路有助于减轻药物诱导的肝损伤[14]。鉴于此,本研究旨在探讨炙甘草汤对CCl4导致小鼠急性肝损伤的影响及相关作用机制。

1 材料 1.1 动物

北京斯贝福生物技术有限公司提供70只C57BL/6 J雄性小鼠[体质量(20±3)g,7周龄,SPF级],许可证号:SCXK(京)2019-0010。小鼠饲养在合适的湿度、温度的SPF级动物房中,12 h光照/12 h明暗交替循环,自由饮水、进食,该研究已获得动物护理和使用委员会的批准(202306008)。

1.2 药物与试剂

北京德寿堂药房提供炙甘草、麦冬、麻仁、阿胶、桂枝、生地黄等炙甘草汤组方,小火浓煎至生药含量3 g/mL;上海源叶生物科技有限公司提供SIRT1抑制剂sirtinol(批号S80707);上海士锋生物科技有限公司提供奥贝胆酸(批号20052315);建成生物工程研究所提供白细胞介素(IL)-6(批号20220105)、丙二醛(MDA)(批号20100813)、肿瘤坏死因子-α(TNF-α)(批号20220120)、丙氨酸氨基转移酶(ALT)(批号20190120)、超氧化物歧化酶(SOD)(批号20100811)、天冬氨酸氨基转移酶(AST)(批号20190110)试剂盒;Abcam公司提供SIRT1(批号ab110304)、PGC-1α(批号ab176328)一抗。

1.3 仪器

美国BioTek公司提供Epoch长酶标仪;Leica公司提供光学显微镜;美国Scilogex公司提供D3024R离心机。

2 方法 2.1 实验小鼠干预、分组及模型构建

喂养1周的C57BL/6 J小鼠随机分为对照组、CCl4组、炙甘草汤低、中、高(炙甘草汤-L、炙甘草汤-M、炙甘草汤-H)剂量组、炙甘草汤-H+sirtinol组、奥贝胆酸组,每组10只。其中对照组以10 mL/kg橄榄油腹腔注射,其余各组以10 mL/kg 0.1% CCl4腹腔注射进行构建急性肝损伤[15],禁食24 h后,炙甘草汤-L、炙甘草汤-M、炙甘草汤-H组分别给予2 mL/kg、4 mL/kg、8 mL/kg的炙甘草汤灌胃干预[16];炙甘草汤-H+sirtinol组给予8 mL/kg的炙甘草汤灌胃干预同时,尾部静脉注射2 mg/kg sirtinol干预[17];奥贝胆酸组以30 mg/kg奥贝胆酸灌胃干预[18];对照组、CCl4组分别给予等体积的生理盐水干预,每天干预1次。

2.2 小鼠一般状况

观察小鼠饮食、精神状态;造模完成后16 h,麻醉小鼠,采集血液,并分离小鼠肝脏,观察颜色及质地。

2.3 检测小鼠肝功能

造模完成后16 h,腹腔注射巴比妥钠麻醉小鼠,仰卧位固定在操作板上,右手持采血管,从眼眶内侧(靠近鼻侧)轻轻插入,将采集血液迅速注入无菌离心管中,离心半径15 cm,以3 000 r/min离心10 min,用移液器小心吸取血清,按照试剂盒步骤检测AST、ALT水平。

2.4 检测小鼠血清中炎症因子水平

取2.3中血清样本,酶联免疫吸附实验(ELISA)检测血清中TNF-α、IL-6水平。

2.5 检测小鼠肝脏组织中氧化应激水平

收集小鼠部分肝脏组织,并进行组织匀浆,检测肝脏组织中MDA、SOD水平。

2.6 检测肝脏组织病理学变化

用生理盐水清洗小鼠部分肝脏,并用10%中性福尔马林固定,并将组织脱钙、包埋在石蜡中,切成厚度约4 μm切片,将切片用二甲苯脱蜡,梯度酒精水合、苏木精-伊红(HE)溶液、天狼猩红染色,光镜下观察肝脏组织病理学变化。

2.7 SIRT1/PGC-1α通路相关蛋白表达

收集小鼠部分肝脏组织,将组织剪成小块,加入适量的预冷放射免疫沉淀实验裂解液,使用匀浆器在冰上匀浆、裂解,裂解后的样品离心,用移液器小心吸取上清液,并测定其浓度,经电泳分离、转模后进行封闭,随后加入SIRT1、PGC-1α一抗孵育过夜,之后以二抗孵育、增强化学发光试剂曝光显影,Image J软件分析灰度值。

2.8 统计学方法

采用SPSS 27.0软件分析实验数据,P < 0.05时,认为差异有统计学意义。数据以均数±标准差(x ± s)表示,单因素方差分析用于多组间比较,符合正态分布和方差齐性,以SNK-q检验进一步两两比较。

3 结果 3.1 炙甘草汤对各组小鼠一般状况影响

对照组小鼠活动量正常,皮毛光泽,精神状态较佳,肝脏光滑,无颗粒感,呈鲜红色;CCl4组小鼠精神涣散,慵懒,皮毛无光泽,肝脏粗糙,呈暗红色;炙甘草汤-L、炙甘草汤-M、炙甘草汤-H组、炙甘草汤-H+sirtinol组、奥贝胆酸组小鼠状态及肝脏外观得到改善,见图 1

图 1 各组小鼠肝脏外观变化
3.2 炙甘草汤对小鼠肝功能的影响

与对照组相比,CCl4组血清中AST、ALT水平增加(P < 0.01);与CCl4组相比,炙甘草汤-L、炙甘草汤-M、炙甘草汤-H组、奥贝胆酸组血清中AST、ALT水平降低,不同浓度炙甘草汤差异具有统计学意义(P < 0.01),但炙甘草汤-H组与奥贝胆酸组无差异(P > 0.05);与炙甘草汤-H组相比,炙甘草汤-H+sirtinol组血清中AST、ALT水平增加(P < 0.01),见表 1

表 1 各组小鼠血清中AST、ALT水平的比较(x ± s
3.3 炙甘草汤对小鼠血清中炎症因子的影响

与对照组相比,CCl4组血清中TNF-α、IL-6水平增加(P < 0.01);与CCl4组相比,炙甘草汤-L、炙甘草汤-M、炙甘草汤-H组、奥贝胆酸组血清中TNF-α、IL-6水平降低,不同浓度炙甘草汤具有统计学差异(P < 0.01),但炙甘草汤-H组与奥贝胆酸组无差异(P > 0.05);与炙甘草汤-H组相比,炙甘草汤-H+sirtinol组血清中TNF-α、IL-6水平增加(P < 0.01),见表 2

表 2 各组小鼠血清中TNF-α、IL-6水平的比较(x ± s
3.4 炙甘草汤对小鼠肝脏组织中氧化应激的影响

与对照组相比,CCl4组肝脏组织MDA增加,SOD降低(P < 0.01);与CCl4组相比,炙甘草汤-L、炙甘草汤-M、炙甘草汤-H组、奥贝胆酸组肝脏组织MDA降低,SOD增加,不同浓度炙甘草汤具有统计学差异(P < 0.05),但炙甘草汤-H组与奥贝胆酸组无差异(P > 0.05);与炙甘草汤-H组相比,炙甘草汤-H+sirtinol组肝脏组织MDA增加,SOD降低(P < 0.01),见表 3

表 3 各组小鼠肝脏组织MDA、SOD水平比较(x ± s
3.5 炙甘草汤对小鼠肝脏组织病理变化的影响

对照组小鼠结构完整,细胞结构清晰、排列有序,无炎性浸润;CCl4组细胞出现坏死及炎性浸润;炙甘草汤-L、炙甘草汤-M、炙甘草汤-H组、奥贝胆酸组细胞逐渐排列有序,肝损伤程度降低,以炙甘草汤-H组、奥贝胆酸组炎性浸润、细胞坏死等改善最为明显;炙甘草汤-H+sirtinol组细胞肿胀、浸润较炙甘草汤-H组严重,见图 2

图 2 肝组织病理学变化(HE,×200)

对照组小鼠肝小叶结构完整;CCl4组有胶原纤维增生产生,肝小叶被破坏;炙甘草汤-L、炙甘草汤-M、炙甘草汤-H组、奥贝胆酸组胶原沉积得到改善,以炙甘草汤-H组、奥贝胆酸组改善最为明显;炙甘草汤-H+sirtinol组胶原沉积程度较炙甘草汤-H组严重,见图 3

图 3 肝组织病理学变化(天狼猩红,×200)
3.6 炙甘草汤对SIRT1/PGC-1α通路相关蛋白表达的影响

与对照组相比,CCl4组SIRT1、PGC-1α表达降低(P < 0.01);与CCl4组相比,炙甘草汤-L、炙甘草汤-M、炙甘草汤-H组、奥贝胆酸组SIRT1、PGC-1α表达增加,不同浓度炙甘草汤具有统计学差异(P < 0.01),但炙甘草汤-H组与奥贝胆酸组无差异(P > 0.05);与炙甘草汤-H组相比,炙甘草汤-H+sirtinol组SIRT1、PGC-1α表达降低(P < 0.01),见图 4表 4

注:A,对照组;B,CCl4组;C,炙甘草汤-L组;D,炙甘草汤-M组;E,炙甘草汤-H组;F,奥贝胆酸组;G,炙甘草汤-H+sirtinol组。 图 4 肝组织中SIRT1、PGC-1α蛋白表达
表 4 各组小鼠肝组织中SIRT1、PGC-1α蛋白表达比较(x ± s
4 讨论

肝脏被认为是身体的重要器官,参与调节物质的生物转化和解毒[19]。CCl4是一种众所周知的肝毒素,可以通过氧化应激、炎症反应等多种机制诱导肝损伤,可用于药物治疗或开发[20]。急性肝损伤可发展成急性肝衰竭,预后差且病死率高[21],迄今为止,还没有发现治疗急性肝损伤的有效方法。

急性肝损伤的发生机制较为复杂,氧化应激被认为是CCl4诱导肝损伤的主要发病过程。当机体受到某些有害因素刺激时,过量的活性氧的产生导致氧化-抗氧化防御系统失衡,引发抗氧化酶SOD活性降低,同时脂质过氧化产物MDA增加。细胞炎性浸润发生,肝组织细胞损伤加剧,细胞膜通透性增加,ALT和AST可以大量释放到血液中[22]。当CCl4诱导急性肝损伤时,多种细胞被激活,引起促炎因子TNF-α的释放,可直接或间接地导致肝细胞坏死,其诱导IL-6的产生,又加重肝损伤的发生[23-24]。研究发现CCl4诱导的小鼠血清中肝功能指标AST、ALT水平与炎症因子TNF-α、IL-6水平明显增加,肝脏组织MDA显著增加,SOD水平降低,肝脏组织形态也出现明显的病理改变,这与LI等[25]研究的结果一致,提示CCl4诱导的小鼠肝功能异常,氧化应激及炎症反应明显增加。急性肝损伤的治疗应以调和肝脾、疏肝理气、扶正补虚为主,同时辅以清热药物[26],而炙甘草汤源自汉代张仲景的《伤寒论》,为补益剂,具有益气滋阴,通阳复脉之功效。主治阴血阳气虚弱,心脉失养证,其中生姜调和胃气、降逆止呕;炙甘草、大枣益气和中,扶正祛邪,在小柴胡汤中作为重要成分,发挥保护肝损伤的作用;而人参作为传统名贵中药,可以增强肝脏代谢酶活性以发挥解毒功能,具有抗肝损伤作用[27]。桂枝在助脾气上升的同时,与麦冬相配又可理肝气,诸药合用达到驱邪扶正、养阴益气等功效,且药理学研究表明该汤药具有抗氧化、抗炎以及提高免疫力的作用,副作用少、安全性高[28-29]。在乙型肝炎肝硬化腹水研究中[30],炙甘草汤联合猪苓汤治疗效果显著。研究发现,炙甘草汤干预后,小鼠肝功能得到改善,TNF-α、IL-6水平下降,肝脏组织MDA下降,SOD水平增高,肝组织损伤得到缓解,表明炙甘草汤可抑制肝组织的氧化应激反应和全身炎症,通过其抗氧化和抗炎作用改善CCl4诱导的急性肝损伤,未来需要进一步的临床研究来验证其疗效及机制。

肝损伤的主要致病基础是CCl4引发的炎症反应、氧化应激,因此治疗肝病的有效手段是抑制肝组织氧化应激及炎症反应[31]。线粒体是肝细胞中氧化代谢的主要场所和主要能量来源,参与维持肝功能,而氧化应激是大多数肝病的共同特征[32]。激活SIRT1信号可一定程度抑制氧化应激发生,抑制肝细胞凋亡,改善急性肝损伤,PGC-1α是SIRT1下游因子,是线粒体生物发生和功能以及氧化应激的关键调节因子[18, 33]。在乙醇诱导的肝损伤中,烟酰胺核苷提供激活SIRT1/PGC-1α通减少脂质积聚及线粒体生物合成,减轻肝组织受损[34]。化瘀祛痰方可抑制炎性反应,改善肝脏脂质沉积,与SIRT1/PGC-1α信号通路调节线粒体功能相关[35]。研究发现CCl4诱导的小鼠肝组织中SIRT1、PGC-1α表达降低,提示CCl4引发的肝损伤可能与SIRT1/PGC-1α通路被抑制有关。但经炙甘草汤干预后,SIRT1、PGC-1α表达上调,肝功能及损伤得到改善,推测炙甘草汤可能通过上调SIRT1/PGC-1α通路减轻CCl4引发的肝损伤。为进一步核验该机制,实验以SIRT1抑制剂-sirtinol进行验证,结果发现sirtinol逆转了炙甘草汤对CCl4引发的肝损伤的保护作用,表明炙甘草汤通过上调SIRT1/PGC-1α通路调节线粒体功能,抑制炎症反应和氧化应激,进而保护CCl4引发的肝损伤。

综上所述,炙甘草汤可能通过上调SIRT1/PGC-1α保护CCl4引发的肝损伤,可能与上调SIRT1/PGC-1α通路有关,但仍需进一步的研究来验证其具体机制和临床应用潜力。

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