文章信息
- 唐诗倩, 栾梦琪, 刘志东, 邓秀平
- TANG Shiqian, LUAN Mengqi, LIU Zhidong, DENG Xiuping
- 经典名方苏葶丸的质量控制方法研究
- Research on the quality control method of classical Suting Pills
- 天津中医药大学学报, 2025, 44(8): 691-697
- Journal of Tianjin University of Traditional Chinese Medicine, 2025, 44(8): 691-697
- http://dx.doi.org/10.11656/j.issn.1673-9043.2025.08.04
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文章历史
收稿日期: 2025-03-10
2. 天津中医药大学现代中药发现与制剂技术教育部工程研究中心, 天津 301617;
3. 天津中医药大学中医药研究院, 天津 301617
2. Engineering Research Center of Modern Chinese Medicine Discovery and Preparation Technique, Ministry of Education, Tianjin University of Traditional Chinese Medicine, Tianjin 301617, China;
3. The Institute of Traditional Chinese Medicine, Tianjin University of Traditional Chinese Medicine, Tianjin 301617, China
苏葶丸收录于2022年公布的《古代经典名方目录(第二批儿科部分)》[1],源自《医宗金鉴》(清·吴谦),全称苏葶定喘丸,功效为泻饮降逆,主治小儿饮停上焦攻肺,喘急不得卧[2]。其组成为紫苏子、葶苈子和大枣,紫苏子和葶苈子配伍,一寒一温,可增强降气化痰平喘之功。临床上将苏葶丸与其他方剂联合使用,用于治疗心脑血管、呼吸系统等疾病[3-5]。
目前,对苏葶丸的研究多集中在临床应用方面,对其质量控制的研究极少。虽然报道苏葶丸的研究并不多,但其作为广为流传的儿科经典名方,疗效确切,完善其质量控制方法,具有重要的价值。本研究采用薄层色谱法(TLC)对炒紫苏子和炒葶苈子进行定性鉴别,建立苏葶丸的指纹图谱,同时测定样品中槲皮素-3-O-β-D-葡萄糖-7-O-β-D-龙胆双糖苷(QGG)、迷迭香酸2种成分的含量,以期建立苏葶丸的质量控制方法。
1 仪器与材料 1.1 仪器Agilent 1260高效液相色谱仪,美国Agilent公司;XP205型十万分之一电子分析天平,瑞士METTLER TOLEDO公司;AX224ZH型万分之一天平,奥豪斯仪器(常州)有限公司;YP5001N型电子天平,上海箐海仪器有限公司;ZDHW型电热套,北京中兴伟业仪器有限公司;DLSB-5/25型低温冷却循环泵,天津科普仪器设备有限公司;Milli-Q academic超纯水系统,美国Miliipore公司;1000C型多功能粉碎机,永康市红太阳机电有限公司。
1.2 试剂及药材甲醇、乙腈均为色谱纯,美国Fisher公司;去离子水由Milli-Q超纯水机制备;磷酸,色谱纯,Acid 85%,赛默飞世尔科技有限公司;QGG(批号:111854-201905,纯度94.5%),购自中国食品药品检定研究院;迷迭香酸(批号:A20IB223325,纯度98.2%),购自上海源叶生物科技有限公司;紫苏子对照药材(批号:121614-201803),购自中国食品药品检定研究院。
炒葶苈子、炒紫苏子、大枣均购于其道地产地或主产区,对药材进行鉴定,均符合《中国药典》2020版项下规定:炒葶苈子为十字花科植物播娘蒿Descurainia sophia(L.)Webb. ex Prantl的干燥成熟种子照清炒法(通则0213)炮制而成;炒紫苏子为唇形科植物紫苏Perilla frutescens(L.)Britt.的干燥成熟果实照清炒法(通则0213)炮制而成;大枣为鼠李科植物枣Ziziphus jujuba Mill.的干燥成熟果实;各批次药材的产地及批号信息如表 1所示。
| 批次 | 炒紫苏子 | 炒葶苈子 | 大枣 |
| 1 | 河北231201 | 湖南240226 | 河北240401 |
| 2 | 河北210501 | 河北240101 | 河北230801 |
| 3 | 河北240201 | 河北211001 | 河北231101 |
| 4 | - | 河北230301 | - |
苏葶丸原文制法记载“南苏子(炒)、苦葶苈子(微炒)各等分。以上为细末,蒸枣肉为丸,如麻子大。每服五丸至七丸,淡姜汤下。”查阅文献资料,确定苏葶丸为3~4 mm的丸剂[6]。根据3味饮片的编号,采用随机数表法组合制备将各味药的不同批次饮片随机组合得到10批苏葶丸样品并编号,组合具体信息见表 2。分别取各批炒紫苏子和炒葶苈子粉碎,其中炒紫苏子粉过药典筛2号筛,炒葶苈子粉过药典筛4号筛,大枣去核后蒸制枣泥;取等量炒紫苏子粉和炒葶苈子粉,按总药粉量与枣泥量比例为1∶0.45混匀,用搓丸板制成3 mm的丸剂,得到10批苏葶丸,编号依次为S1-S10,于干燥器内保存。
| 样品 | 产地 | ||
| 炒紫苏子 | 炒葶苈子 | 大枣 | |
| S1 | 河北231201-1 | 湖南240226-1 | 河北240401-1 |
| S2 | 河北210501-1 | 河北240101-1 | 河北240401-2 |
| S3 | 河北240201-1 | 河北211001-1 | 河北230801-1 |
| S4 | 河北231201-2 | 河北230301-1 | 河北230801-2 |
| S5 | 河北240201-2 | 河北240101-2 | 河北231101-1 |
| S6 | 河北231201-2 | 河北240101-3 | 河北231101-2 |
| S7 | 河北231201-3 | 河北211001-2 | 河北231101-3 |
| S8 | 河北210501-2 | 湖南240226-2 | 河北231101-4 |
| S9 | 河北240201-3 | 湖南240226-3 | 河北230801-3 |
| S10 | 河北210501-3 | 河北230301-2 | 河北230801-4 |
取苏葶丸适量,研碎,称取粉末3 g,加甲醇25 mL,超声处理30 min,滤过,滤液蒸干,残渣加甲醇1 mL使溶解,作为供试品溶液。取紫苏子对照药材1 g,同法制成对照药材溶液。另取处方中不含炒紫苏子的其他药材,按本品制法及上述供试品制备方法制成阴性样品溶液。照TLC(通则0502)试验[7],吸取上述两种溶液各2 μL,分别点于同一硅胶G薄层板上,以正己烷-甲苯-乙酸乙酯-甲酸(2∶5∶2.5∶0.5)为展开剂,展开,取出,晾干,喷以三氯化铝试液,置紫外光灯(365 nm)下检视。结果供试品溶液色谱中,在与对照药材色谱相应位置显相同颜色的斑点,且阴性对照无干扰。见图 1。
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| 注:1~5、8~12:供试品溶液(S1~S10样品);6:缺炒紫苏子阴性样品;7:紫苏子对照药材。 图 1 炒紫苏子薄层色谱图 |
取苏葶丸适量,研碎,称取粉末3 g,加70%甲醇20 mL,加热回流1 h,滤过,取滤液作为供试品溶液。取QGG对照品,加30%甲醇制成每1 mL含80 μg的溶液,作为对照品溶液。另取处方中不含炒葶苈子的其他药材,按本品制法及上述供试品制备方法制成阴性样品溶液。照TLC(通则0502)试验[7],吸取上述两种溶液各2 μL,分别点于同一聚酰胺薄膜上,以丙酮-水-冰乙酸(2∶5∶0.25)为展开剂,展开,取出,晾干,喷以2%三氯化铝乙醇溶液,热风吹干,置紫外光灯(365 nm)下检视。结果供试品溶液色谱中,在与对照品色谱相应位置显相同的黄色荧光斑点,且阴性对照无干扰。见图 2。
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| 注:1~5,8~12:供试品溶液(S1~S10样品);6:缺炒葶苈子阴性样品;7:QGG对照品。 图 2 炒葶苈子薄层色谱图 |
InfinttyLab Poroshell 120 EC-C18色谱柱(4.6 mm×150 mm,4 μm),进样量为8 μL,柱温30 ℃,流速为0.8 mL/min,流动相为0.1%磷酸水(A)-乙腈(B),梯度洗脱(0~6 min,7%~9%B;6~30 min,9%~43%B;30~32 min,43%~90%B;32~40 min,90%B),检测波长分别为指纹图谱254 nm,含量测定中QGG 254 nm、迷迭香酸320 nm。
2.4 指纹图谱研究 2.4.1 溶液的制备 2.4.1.1 混合对照品溶液的制备精密称取QGG、迷迭香酸对照品适量,分别置于10 mL容量瓶中,加甲醇溶解并定容至刻度,分别制成每1 mL含411.075 μg QGG、813.096 μg迷迭香酸的对照品溶液,分别精密量取上述对照品溶液适量,置于10 mL容量瓶中,加50%甲醇定容至刻度,摇匀,制成每1 mL含32.886 μg QGG、162.619 μg迷迭香酸的混合对照品溶液。
2.4.1.2 供试品溶液的制备取苏葶丸适量,研碎,精密称取粉末0.6 g于100 mL圆底烧瓶中,精密加入25 mL 50%甲醇,称定质量,回流提取60 min,取出于室温放冷后补足失重,摇匀,静置,取上清液过0.22 μm有机微孔滤膜,取续滤液,即得。
2.4.1.3 单味药材样品溶液的制备按苏葶丸中药材比例折算,分别取苏葶丸中3味药材粉末,分别按“2.4.2”项下供试品溶液制备方法制备,即得。
2.4.2 精密度考察取苏葶丸样品S1,按“2.4.1.2”项下方法制备供试品溶液,按“2.3”项下色谱条件连续进样6次,记录HPLC图,以QGG为参照峰,计算各共有峰的相对保留时间、相对峰面积及其RSD。结果显示,各共有峰相对保留时间的RSD均小于0.2%,相对峰面积的RSD均小于2.0%,表明仪器精密度良好。
2.4.3 稳定性考察取苏葶丸样品S1,按“2.4.1.2”项下方法制备供试品溶液,按“2.3”项下色谱条件,分别于0 h、4 h、8 h、12 h、24 h、48 h进样,记录HPLC图,以QGG为参照峰,计算各共有峰的相对保留时间、相对峰面积及其RSD。结果显示,各共有峰相对保留时间的RSD均小于0.3%,相对峰面积的RSD均小于3.0%,表明供试品溶液在48 h内稳定性良好。
2.4.4 重复性考察取苏葶丸样品S1,按“2.4.1.2”项下方法制备供试品溶液,按“2.3”项下色谱条件测定,记录HPLC图,以QGG为参照峰,计算各共有峰的相对保留时间、相对峰面积及其RSD。结果显示,各共有峰相对保留时间的RSD均小于0.2%,相对峰面积的RSD均小于2.0%,表明该方法的重复性良好。
2.4.5 指纹图谱建立与相似度评价采用“2.4.1.2”项下方法分别制备10批苏葶丸的供试品溶液,按“2.3”项下色谱条件测定,记录HPLC图。采用“中药色谱指纹图谱相似度评价系统”(2012版)进行数据分析,以样品S1图谱为参照图谱,采用中位数法,时间窗宽度为0.1,进行多点校正和Mark峰匹配,生成苏葶丸的对照指纹图谱,见图 3,共标定7个共有峰,与对照品图谱比对,指认其中2个色谱峰,分别是2号峰QGG、6号峰迷迭香酸。匹配后的10批样品色谱图见图 4,以对照指纹图谱为基准,进行各样品相似度评价,10批苏葶丸指纹图谱相似度分别为0.973、0.989、0.988、0.983、0.991、0.989、0.986、0.969、0.968、0.986。
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| 图 3 混合对照品(A)和苏葶丸对照(B)指纹图谱 |
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| 图 4 10批苏葶丸样品指纹图谱 |
取“2.4.1”项下混合对照品溶液、供试品溶液、单味药材样品溶液,按“2.3”项下色谱条件分别进样分析,记录色谱图,确定指纹图谱中各共有峰的药味归属,具体见图 5。峰1、峰2(QGG)、峰3、峰4、峰7为炒葶苈子色谱峰,峰5、峰6(迷迭香酸)为炒紫苏子色谱峰。
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| 图 5 指纹图谱色谱峰归属图 |
同指纹图谱“2.4.1.1”项下混合对照品溶液的制备。
2.5.1.2 供试品溶液的制备同指纹图谱“2.4.1.2”项下供试品溶液的制备。
2.5.1.3 阴性样品溶液的制备按苏葶丸中药材比例折算,分别制备缺炒葶苈子、缺炒紫苏子、缺大枣的阴性样品,分别按指纹图谱“2.4.1.2”项下供试品溶液制备方法制备,即得。
2.5.2 专属性考察分别吸取“2.5.1”项下混合对照品溶液、供试品溶液及阴性样品溶液,按“2.3”项下色谱条件进样分析,记录色谱图。结果表明,阴性样品溶液在指标性成分出峰处无干扰,说明该方法专属性良好。
2.5.3 线性关系考察分别精密称取对照品QGG、迷迭香酸适量,加甲醇超声溶解并定容,制成每1 mL含QGG 103.194 μg、迷迭香酸469.396 μg的溶液为母液备用。吸取QGG母液,加50%甲醇稀释成浓度分别为1.032、5.160、20.639、41.278、51.146 μg/mL的QGG对照品线性溶液;吸取迷迭香酸母液,加50%甲醇稀释成浓度分别为23.470、46.940、93.879、117.349、187.758 μg/mL的迷迭香酸对照品线性溶液。按“2.3”项下色谱条件进样分析,并以浓度(μg/mL)为横坐标(X),峰面积A(Y)为纵坐标,绘制标准曲线,结果见表 3。从表 3中可以看出,QGG在1.032~51.146 μg/mL范围内、迷迭香酸在23.470~187.758 μg/mL范围内线性关系良好。
| 指标成分 | 回归方程 | 线性范围μg/mL | R2 |
| QGG | y=14.836x-10.516 | 1.032~ 51.146 | 0.999 5 |
| 迷迭香酸 | y=26.85x-295.99 | 23.470~187.758 | 0.999 0 |
精密吸取浓度为32.886 μg/mL QGG和162.619 μg/mL迷迭香酸的混合对照品溶液10 μL,按“2.3”项下色谱条件连续进样6次,记录指标成分峰面积,计算RSD,结果QGG和迷迭香酸峰面积的RSD分别为0.70%、0.09%,表明仪器的精密度良好。
2.5.5 稳定性考察取苏葶丸样品S1,按“2.4.1.2”项下方法制备供试品溶液,按“2.3”项下色谱条件,分别于0 h、2 h、4 h、6 h、8 h、10 h、12 h、24 h、48 h进样,记录指标成分峰面积,并计算RSD,结果QGG和迷迭香酸峰面积的RSD分别为1.80%、0.39%,表明供试品溶液在48 h内稳定性良好。
2.5.6 重复性考察取苏葶丸样品S1,按“2.4.1.2”项下方法平行制备供试品溶液(共6份),按2.3”项下色谱条件连续测定,记录指标成分峰面积,并计算含量RSD,结果QGG和迷迭香酸含量的RSD分别为1.52%、1.94%,结果表明该方法的重复性良好。
2.5.7 加样回收率考察称取已知指标成分含量的苏葶丸(样品S1)0.3 g,精密称定,平行6份,精密加入适量的QGG和迷迭香酸对照品溶液,按“2.4.1.2”项下方法制备供试品溶液,按“2.3”项下色谱条件测定,并计算加样回收率。结果QGG和迷迭香酸的加样回收率分别为99.50%~101.33%、94.73%~97.22%,RSD分别为1.30%、0.96%,结果表明该方法准确度良好。
2.5.8 样品的含量测定取10批苏葶丸样品,分别按“2.4.1.2”项下方法制备供试品溶液,按“2.3”项下色谱条件测定,见图 6。计算样品中QGG和迷迭香酸的含量,结果见表 4。10批样品QGG和迷迭香酸的平均质量分数分别为0.201 mg/g,1.443 mg/g,样品S1、S8、S9中QGG含量较高,其药材均来源于湖南,由此可知产于湖南的葶苈子中QGG含量较产于河北的高。
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| 图 6 苏葶丸含量测定图谱 |
| 样品批号 | 质量分数(mg/g) | |
| QGG | 迷迭香酸 | |
| S1 | 0.459 | 1.498 |
| S2 | 0.107 | 1.260 |
| S3 | 0.081 | 1.618 |
| S4 | 0.087 | 1.519 |
| S5 | 0.095 | 1.468 |
| S6 | 0.112 | 1.228 |
| S7 | 0.082 | 1.487 |
| S8 | 0.445 | 1.424 |
| S9 | 0.446 | 1.412 |
| S10 | 0.095 | 1.517 |
| 均值 | 0.201 | 1.443 |
炒葶苈子:曾按2020年版《中国药典(一部)》收载方法展开剂选用乙酸乙酯-甲醇-水(7∶2∶1),预实验结果显示,供试品溶液色谱与对照品色谱的荧光斑点Rf值不一致。后续将展开剂换为丙酮-水-冰乙酸(2∶5∶0.25),结果显示供试品溶液色谱中,在与对照品色谱相应位置显相同的黄色荧光斑点。
3.2 供试品溶液制备方法考察本研究考察了不同取样量(0.4、0.5、0.6、0.7 g),不同提取溶剂(甲醇、水),不同浓度的甲醇(30%甲醇、50%甲醇、70%甲醇),不同提取方式(超声、回流)及不同提取时间(30、60、90、120 min)制备的供试品溶液,采用HPLC,对样品的数量、峰形、分离度和被测成分的含量进行比较研究。结果表明在取样量为0.6 g采用50%甲醇、回流提取60 min时色谱峰较丰富,各色谱峰响应良好,指标成分提取率较高。
3.3 色谱条件考察本实验考察了乙腈-0.1%醋酸水、乙腈-0.1%磷酸水两种溶剂系统。其中乙腈-0.1%磷酸水溶剂系统显示出良好的峰形和分离度,且基线平稳,因此选择乙腈-0.1%磷酸水为流动相。采用DAD检测器对供试品溶液进行全波长扫描,分析发现,在254 nm波长下,样品中的各个峰均表现出较高的响应值,而320 nm下迷迭香酸的峰形较好,吸收较大。综合考虑多个因素,如基线、峰形、峰数、分离度及指标成分响应值等,最终选择254 nm作为指纹图谱和QGG含量测定的检测波长,选择320 nm作为迷迭香酸含量测定的检测波长。
3.4 指标成分的选择苏葶丸主要由葶苈子和紫苏子组成,葶苈子中黄酮类成分具有广泛的药理作用[8-10],而QGG含量最高[11],且仅存在于南葶苈子,同时也是《中国药典》2020版中葶苈子的含量测定指标成分。紫苏子的化学成分主要有酚酸、挥发油和黄酮类等,其中酚酸类中迷迭香酸含量最高,具有抗炎、抗菌、抗病毒、抗氧化、抗肿瘤等功效[12-16],同时也是《中国药典》2020版中紫苏子的含量测定指标成分。故本研究选择QGG和迷迭香酸作为苏葶丸质量控制的指标成分。
4 结语为适应中医药理论体系下的产品多样性和便捷性,开发经典名方复方制剂是中医药新时期发展的客观需要,也是中医药走向规范化、现代化进程中不可或缺的一环。以经典名方为契机,对其产品的各个环节进行研究,并对其质量进行严格控制。故本研究从定性和定量两方面建立苏葶丸的质量控制方法,采用TLC定性鉴别了苏葶丸中炒紫苏子和炒葶苈子两味中药,建立了10批苏葶丸HPLC指纹图谱,其相似度高、分离度好,同时对部分共有峰进行了化学成分指认并进行定量分析,从而控制其质量,可为苏葶丸相关制剂研发提供依据。然而,本研究的定量分析指标较少,未来应筛选与药效相关的多个指标成分,建立同时测定多成分含量的方法,实现更精准的质量控制。此外,本研究的药材批次数量相对有限,来源可能不够广泛,未来可扩大样本量以更充分评估其稳定性和代表性。
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