天津中医药大学学报  2025, Vol. 44 Issue (8): 691-697

文章信息

唐诗倩, 栾梦琪, 刘志东, 邓秀平
TANG Shiqian, LUAN Mengqi, LIU Zhidong, DENG Xiuping
经典名方苏葶丸的质量控制方法研究
Research on the quality control method of classical Suting Pills
天津中医药大学学报, 2025, 44(8): 691-697
Journal of Tianjin University of Traditional Chinese Medicine, 2025, 44(8): 691-697
http://dx.doi.org/10.11656/j.issn.1673-9043.2025.08.04

文章历史

收稿日期: 2025-03-10
经典名方苏葶丸的质量控制方法研究
唐诗倩1,2 , 栾梦琪1,2 , 刘志东1,2 , 邓秀平2,3     
1. 天津中医药大学中药学院, 天津 301617;
2. 天津中医药大学现代中药发现与制剂技术教育部工程研究中心, 天津 301617;
3. 天津中医药大学中医药研究院, 天津 301617
摘要: [目的] 建立经典名方苏葶丸的质量控制方法。[方法] 采用薄层色谱法(TLC)定性鉴别苏葶丸中的炒紫苏子和炒葶苈子;采用高效液相色谱法(HPLC)进行定量分析,并建立指纹图谱。色谱柱为InfinttyLab Poroshell 120 EC-C18(4.6 mm×150 mm,4 μm),进样量为8 μL,柱温30 ℃,流速为0.8 mL/min,以0.1%磷酸水溶液(A)-乙腈(B)为流动相梯度洗脱(0~6 min,7%~9%B;6~30 min,9%~43%B;30~32 min,43%~90%B;32~40 min,90%B)。指纹图谱及槲皮素-3-O-β-D-葡萄糖-7-O-β-D-龙胆双糖苷含量测定波长为254 nm,迷迭香酸为320 nm。采集10批苏葶丸指纹图谱,利用“中药色谱指纹图谱相似度评价系统”(2012年版)进行相似度评价,并使用HPLC法同时测定2种指标成分含量。[结果] 薄层色谱分离效果良好,特征斑点显示清晰,且阴性对照无干扰。10批苏葶丸指纹图谱相似度均大于0.9,共标定7个共有峰。槲皮素-3-O-β-D-葡萄糖-7-O-β-D-龙胆双糖苷和迷迭香酸的平均加样回收率分别为99.90%、96.06%,RSD均小于3%,各成分在一定进样范围内呈现良好的线性关系。10批苏葶丸中槲皮素-3-O-β-D-葡萄糖-7-O-β-D-龙胆双糖苷和迷迭香酸的质量分数范围分别为0.081~0.459、1.228~1.618 mg/g。[结论] 该方法简便、稳定、准确可靠,可用于苏葶丸的质量控制,同时为苏葶丸的相关制剂开发奠定基础。
关键词: 苏葶丸    质量控制    薄层色谱    指纹图谱    含量测定    
Research on the quality control method of classical Suting Pills
TANG Shiqian1,2 , LUAN Mengqi1,2 , LIU Zhidong1,2 , DENG Xiuping2,3     
1. School of Chinese Materia Medica, Tianjin University of Traditional Chinese Medicine, Tianjin 301617, China;
2. Engineering Research Center of Modern Chinese Medicine Discovery and Preparation Technique, Ministry of Education, Tianjin University of Traditional Chinese Medicine, Tianjin 301617, China;
3. The Institute of Traditional Chinese Medicine, Tianjin University of Traditional Chinese Medicine, Tianjin 301617, China
Abstract: [Objective] To establish the quality control method of classical Suting Pills. [Method] TLC was used to characterize the identification of fried Perilla frutescens seed and stir-fried Descurainiae Semen in Suting Pills. High performance liquid chromatography(HPLC) was used for quantitative analysis and fingerprinting. The column was InfinttyLab Poroshell 120 EC-C18 column(4.6×150 mm, 4 μm), with an injection volume of 8 μL, a column temperature of 30 ℃, a flow rate of 0.8 mL/min, and a gradient elution with 0.1% phosphoric acid aqueous solution(A)-acetonitrile(B) as the mobile phase(0~6 min, 7%~9%B; 6~30 min, 9%~43%B; 30~32 min, 43%~90%B; 32~40 min, 90%B). The fingerprint and the detection wavelength of quercetin-3-O-β-D-glucose-7-O-β-D-gentiobioside were 254 nm, and rosmarinic acid was 320 nm. The fingerprints of 10 batches of Sufa Pills were collected and evaluated for similarity using the "Chinese Medicine Chromatographic Fingerprint Evaluation System"(2012 Eidition), and the contents of the two index components were determined simultaneously using the HPLC method. [Results] he results of TLC separation were good, the characteristic spots were clearly displayed, and there was no interference in the negative control. The similarity of the fingerprints of 10 batches of Sulphur scape pills was greater than 0.9, and a total of 7 common peaks were identified. The average spiked recoveries of quercetin-3-O-β-D-glucose-7-O-β-D-gentiobioside and rosmarinic acid were 99.90% and 96.06%, respectively, and the RSD was less than 3%, and the components showed a good linear relationship within a certain injection range. The mass fractions of quercetin-3-O-β-D-glucose-7-O-β-D-gentiobioside and rosmarinic acid in 10 batches of Suting Pills ranged from 0.081~0.459 and 1.228~1.618 mg/g, respectively. [Conclusion] This method is simple, stable, accurate and reliable, and can be used for the quality control of Suting Pills, as well as laying the foundation for the development of related formulations of Suting Pills.
Key words: Suting Pill    quality control    TLC    fingerprint spectrum    content determination    

苏葶丸收录于2022年公布的《古代经典名方目录(第二批儿科部分)》[1],源自《医宗金鉴》(清·吴谦),全称苏葶定喘丸,功效为泻饮降逆,主治小儿饮停上焦攻肺,喘急不得卧[2]。其组成为紫苏子、葶苈子和大枣,紫苏子和葶苈子配伍,一寒一温,可增强降气化痰平喘之功。临床上将苏葶丸与其他方剂联合使用,用于治疗心脑血管、呼吸系统等疾病[3-5]

目前,对苏葶丸的研究多集中在临床应用方面,对其质量控制的研究极少。虽然报道苏葶丸的研究并不多,但其作为广为流传的儿科经典名方,疗效确切,完善其质量控制方法,具有重要的价值。本研究采用薄层色谱法(TLC)对炒紫苏子和炒葶苈子进行定性鉴别,建立苏葶丸的指纹图谱,同时测定样品中槲皮素-3-O-β-D-葡萄糖-7-O-β-D-龙胆双糖苷(QGG)、迷迭香酸2种成分的含量,以期建立苏葶丸的质量控制方法。

1 仪器与材料 1.1 仪器

Agilent 1260高效液相色谱仪,美国Agilent公司;XP205型十万分之一电子分析天平,瑞士METTLER TOLEDO公司;AX224ZH型万分之一天平,奥豪斯仪器(常州)有限公司;YP5001N型电子天平,上海箐海仪器有限公司;ZDHW型电热套,北京中兴伟业仪器有限公司;DLSB-5/25型低温冷却循环泵,天津科普仪器设备有限公司;Milli-Q academic超纯水系统,美国Miliipore公司;1000C型多功能粉碎机,永康市红太阳机电有限公司。

1.2 试剂及药材

甲醇、乙腈均为色谱纯,美国Fisher公司;去离子水由Milli-Q超纯水机制备;磷酸,色谱纯,Acid 85%,赛默飞世尔科技有限公司;QGG(批号:111854-201905,纯度94.5%),购自中国食品药品检定研究院;迷迭香酸(批号:A20IB223325,纯度98.2%),购自上海源叶生物科技有限公司;紫苏子对照药材(批号:121614-201803),购自中国食品药品检定研究院。

炒葶苈子、炒紫苏子、大枣均购于其道地产地或主产区,对药材进行鉴定,均符合《中国药典》2020版项下规定:炒葶苈子为十字花科植物播娘蒿Descurainia sophia(L.)Webb. ex Prantl的干燥成熟种子照清炒法(通则0213)炮制而成;炒紫苏子为唇形科植物紫苏Perilla frutescens(L.)Britt.的干燥成熟果实照清炒法(通则0213)炮制而成;大枣为鼠李科植物枣Ziziphus jujuba Mill.的干燥成熟果实;各批次药材的产地及批号信息如表 1所示。

表 1 各批次药材的产地及批号信息
批次 炒紫苏子 炒葶苈子 大枣
1 河北231201 湖南240226 河北240401
2 河北210501 河北240101 河北230801
3 河北240201 河北211001 河北231101
4 - 河北230301 -
2 方法与结果 2.1 苏葶丸的制备

苏葶丸原文制法记载“南苏子(炒)、苦葶苈子(微炒)各等分。以上为细末,蒸枣肉为丸,如麻子大。每服五丸至七丸,淡姜汤下。”查阅文献资料,确定苏葶丸为3~4 mm的丸剂[6]。根据3味饮片的编号,采用随机数表法组合制备将各味药的不同批次饮片随机组合得到10批苏葶丸样品并编号,组合具体信息见表 2。分别取各批炒紫苏子和炒葶苈子粉碎,其中炒紫苏子粉过药典筛2号筛,炒葶苈子粉过药典筛4号筛,大枣去核后蒸制枣泥;取等量炒紫苏子粉和炒葶苈子粉,按总药粉量与枣泥量比例为1∶0.45混匀,用搓丸板制成3 mm的丸剂,得到10批苏葶丸,编号依次为S1-S10,于干燥器内保存。

表 2 10批苏葶丸样品组合信息
样品 产地
炒紫苏子 炒葶苈子 大枣
S1 河北231201-1 湖南240226-1 河北240401-1
S2 河北210501-1 河北240101-1 河北240401-2
S3 河北240201-1 河北211001-1 河北230801-1
S4 河北231201-2 河北230301-1 河北230801-2
S5 河北240201-2 河北240101-2 河北231101-1
S6 河北231201-2 河北240101-3 河北231101-2
S7 河北231201-3 河北211001-2 河北231101-3
S8 河北210501-2 湖南240226-2 河北231101-4
S9 河北240201-3 湖南240226-3 河北230801-3
S10 河北210501-3 河北230301-2 河北230801-4
2.2 薄层色谱鉴别 2.2.1 炒紫苏子

取苏葶丸适量,研碎,称取粉末3 g,加甲醇25 mL,超声处理30 min,滤过,滤液蒸干,残渣加甲醇1 mL使溶解,作为供试品溶液。取紫苏子对照药材1 g,同法制成对照药材溶液。另取处方中不含炒紫苏子的其他药材,按本品制法及上述供试品制备方法制成阴性样品溶液。照TLC(通则0502)试验[7],吸取上述两种溶液各2 μL,分别点于同一硅胶G薄层板上,以正己烷-甲苯-乙酸乙酯-甲酸(2∶5∶2.5∶0.5)为展开剂,展开,取出,晾干,喷以三氯化铝试液,置紫外光灯(365 nm)下检视。结果供试品溶液色谱中,在与对照药材色谱相应位置显相同颜色的斑点,且阴性对照无干扰。见图 1

注:1~5、8~12:供试品溶液(S1~S10样品);6:缺炒紫苏子阴性样品;7:紫苏子对照药材。 图 1 炒紫苏子薄层色谱图
2.2.2 炒葶苈子

取苏葶丸适量,研碎,称取粉末3 g,加70%甲醇20 mL,加热回流1 h,滤过,取滤液作为供试品溶液。取QGG对照品,加30%甲醇制成每1 mL含80 μg的溶液,作为对照品溶液。另取处方中不含炒葶苈子的其他药材,按本品制法及上述供试品制备方法制成阴性样品溶液。照TLC(通则0502)试验[7],吸取上述两种溶液各2 μL,分别点于同一聚酰胺薄膜上,以丙酮-水-冰乙酸(2∶5∶0.25)为展开剂,展开,取出,晾干,喷以2%三氯化铝乙醇溶液,热风吹干,置紫外光灯(365 nm)下检视。结果供试品溶液色谱中,在与对照品色谱相应位置显相同的黄色荧光斑点,且阴性对照无干扰。见图 2

注:1~5,8~12:供试品溶液(S1~S10样品);6:缺炒葶苈子阴性样品;7:QGG对照品。 图 2 炒葶苈子薄层色谱图
2.3 色谱条件

InfinttyLab Poroshell 120 EC-C18色谱柱(4.6 mm×150 mm,4 μm),进样量为8 μL,柱温30 ℃,流速为0.8 mL/min,流动相为0.1%磷酸水(A)-乙腈(B),梯度洗脱(0~6 min,7%~9%B;6~30 min,9%~43%B;30~32 min,43%~90%B;32~40 min,90%B),检测波长分别为指纹图谱254 nm,含量测定中QGG 254 nm、迷迭香酸320 nm。

2.4 指纹图谱研究 2.4.1 溶液的制备 2.4.1.1 混合对照品溶液的制备

精密称取QGG、迷迭香酸对照品适量,分别置于10 mL容量瓶中,加甲醇溶解并定容至刻度,分别制成每1 mL含411.075 μg QGG、813.096 μg迷迭香酸的对照品溶液,分别精密量取上述对照品溶液适量,置于10 mL容量瓶中,加50%甲醇定容至刻度,摇匀,制成每1 mL含32.886 μg QGG、162.619 μg迷迭香酸的混合对照品溶液。

2.4.1.2 供试品溶液的制备

取苏葶丸适量,研碎,精密称取粉末0.6 g于100 mL圆底烧瓶中,精密加入25 mL 50%甲醇,称定质量,回流提取60 min,取出于室温放冷后补足失重,摇匀,静置,取上清液过0.22 μm有机微孔滤膜,取续滤液,即得。

2.4.1.3 单味药材样品溶液的制备

按苏葶丸中药材比例折算,分别取苏葶丸中3味药材粉末,分别按“2.4.2”项下供试品溶液制备方法制备,即得。

2.4.2 精密度考察

取苏葶丸样品S1,按“2.4.1.2”项下方法制备供试品溶液,按“2.3”项下色谱条件连续进样6次,记录HPLC图,以QGG为参照峰,计算各共有峰的相对保留时间、相对峰面积及其RSD。结果显示,各共有峰相对保留时间的RSD均小于0.2%,相对峰面积的RSD均小于2.0%,表明仪器精密度良好。

2.4.3 稳定性考察

取苏葶丸样品S1,按“2.4.1.2”项下方法制备供试品溶液,按“2.3”项下色谱条件,分别于0 h、4 h、8 h、12 h、24 h、48 h进样,记录HPLC图,以QGG为参照峰,计算各共有峰的相对保留时间、相对峰面积及其RSD。结果显示,各共有峰相对保留时间的RSD均小于0.3%,相对峰面积的RSD均小于3.0%,表明供试品溶液在48 h内稳定性良好。

2.4.4 重复性考察

取苏葶丸样品S1,按“2.4.1.2”项下方法制备供试品溶液,按“2.3”项下色谱条件测定,记录HPLC图,以QGG为参照峰,计算各共有峰的相对保留时间、相对峰面积及其RSD。结果显示,各共有峰相对保留时间的RSD均小于0.2%,相对峰面积的RSD均小于2.0%,表明该方法的重复性良好。

2.4.5 指纹图谱建立与相似度评价

采用“2.4.1.2”项下方法分别制备10批苏葶丸的供试品溶液,按“2.3”项下色谱条件测定,记录HPLC图。采用“中药色谱指纹图谱相似度评价系统”(2012版)进行数据分析,以样品S1图谱为参照图谱,采用中位数法,时间窗宽度为0.1,进行多点校正和Mark峰匹配,生成苏葶丸的对照指纹图谱,见图 3,共标定7个共有峰,与对照品图谱比对,指认其中2个色谱峰,分别是2号峰QGG、6号峰迷迭香酸。匹配后的10批样品色谱图见图 4,以对照指纹图谱为基准,进行各样品相似度评价,10批苏葶丸指纹图谱相似度分别为0.973、0.989、0.988、0.983、0.991、0.989、0.986、0.969、0.968、0.986。

图 3 混合对照品(A)和苏葶丸对照(B)指纹图谱
图 4 10批苏葶丸样品指纹图谱
2.4.6 色谱峰药材归属

取“2.4.1”项下混合对照品溶液、供试品溶液、单味药材样品溶液,按“2.3”项下色谱条件分别进样分析,记录色谱图,确定指纹图谱中各共有峰的药味归属,具体见图 5。峰1、峰2(QGG)、峰3、峰4、峰7为炒葶苈子色谱峰,峰5、峰6(迷迭香酸)为炒紫苏子色谱峰。

图 5 指纹图谱色谱峰归属图
2.5 多指标成分含量测定 2.5.1 溶液的制备 2.5.1.1 混合对照品溶液的制备

同指纹图谱“2.4.1.1”项下混合对照品溶液的制备。

2.5.1.2 供试品溶液的制备

同指纹图谱“2.4.1.2”项下供试品溶液的制备。

2.5.1.3 阴性样品溶液的制备

按苏葶丸中药材比例折算,分别制备缺炒葶苈子、缺炒紫苏子、缺大枣的阴性样品,分别按指纹图谱“2.4.1.2”项下供试品溶液制备方法制备,即得。

2.5.2 专属性考察

分别吸取“2.5.1”项下混合对照品溶液、供试品溶液及阴性样品溶液,按“2.3”项下色谱条件进样分析,记录色谱图。结果表明,阴性样品溶液在指标性成分出峰处无干扰,说明该方法专属性良好。

2.5.3 线性关系考察

分别精密称取对照品QGG、迷迭香酸适量,加甲醇超声溶解并定容,制成每1 mL含QGG 103.194 μg、迷迭香酸469.396 μg的溶液为母液备用。吸取QGG母液,加50%甲醇稀释成浓度分别为1.032、5.160、20.639、41.278、51.146 μg/mL的QGG对照品线性溶液;吸取迷迭香酸母液,加50%甲醇稀释成浓度分别为23.470、46.940、93.879、117.349、187.758 μg/mL的迷迭香酸对照品线性溶液。按“2.3”项下色谱条件进样分析,并以浓度(μg/mL)为横坐标(X),峰面积A(Y)为纵坐标,绘制标准曲线,结果见表 3。从表 3中可以看出,QGG在1.032~51.146 μg/mL范围内、迷迭香酸在23.470~187.758 μg/mL范围内线性关系良好。

表 3 线性关系
指标成分 回归方程 线性范围μg/mL R2
QGG y=14.836x-10.516 1.032~ 51.146 0.999 5
迷迭香酸 y=26.85x-295.99 23.470~187.758 0.999 0
2.5.4 精密度考察

精密吸取浓度为32.886 μg/mL QGG和162.619 μg/mL迷迭香酸的混合对照品溶液10 μL,按“2.3”项下色谱条件连续进样6次,记录指标成分峰面积,计算RSD,结果QGG和迷迭香酸峰面积的RSD分别为0.70%、0.09%,表明仪器的精密度良好。

2.5.5 稳定性考察

取苏葶丸样品S1,按“2.4.1.2”项下方法制备供试品溶液,按“2.3”项下色谱条件,分别于0 h、2 h、4 h、6 h、8 h、10 h、12 h、24 h、48 h进样,记录指标成分峰面积,并计算RSD,结果QGG和迷迭香酸峰面积的RSD分别为1.80%、0.39%,表明供试品溶液在48 h内稳定性良好。

2.5.6 重复性考察

取苏葶丸样品S1,按“2.4.1.2”项下方法平行制备供试品溶液(共6份),按2.3”项下色谱条件连续测定,记录指标成分峰面积,并计算含量RSD,结果QGG和迷迭香酸含量的RSD分别为1.52%、1.94%,结果表明该方法的重复性良好。

2.5.7 加样回收率考察

称取已知指标成分含量的苏葶丸(样品S1)0.3 g,精密称定,平行6份,精密加入适量的QGG和迷迭香酸对照品溶液,按“2.4.1.2”项下方法制备供试品溶液,按“2.3”项下色谱条件测定,并计算加样回收率。结果QGG和迷迭香酸的加样回收率分别为99.50%~101.33%、94.73%~97.22%,RSD分别为1.30%、0.96%,结果表明该方法准确度良好。

2.5.8 样品的含量测定

取10批苏葶丸样品,分别按“2.4.1.2”项下方法制备供试品溶液,按“2.3”项下色谱条件测定,见图 6。计算样品中QGG和迷迭香酸的含量,结果见表 4。10批样品QGG和迷迭香酸的平均质量分数分别为0.201 mg/g,1.443 mg/g,样品S1、S8、S9中QGG含量较高,其药材均来源于湖南,由此可知产于湖南的葶苈子中QGG含量较产于河北的高。

图 6 苏葶丸含量测定图谱
表 4 样品含量测定
样品批号 质量分数(mg/g)
QGG 迷迭香酸
S1 0.459 1.498
S2 0.107 1.260
S3 0.081 1.618
S4 0.087 1.519
S5 0.095 1.468
S6 0.112 1.228
S7 0.082 1.487
S8 0.445 1.424
S9 0.446 1.412
S10 0.095 1.517
均值 0.201 1.443
3 讨论 3.1 TLC条件选择

炒葶苈子:曾按2020年版《中国药典(一部)》收载方法展开剂选用乙酸乙酯-甲醇-水(7∶2∶1),预实验结果显示,供试品溶液色谱与对照品色谱的荧光斑点Rf值不一致。后续将展开剂换为丙酮-水-冰乙酸(2∶5∶0.25),结果显示供试品溶液色谱中,在与对照品色谱相应位置显相同的黄色荧光斑点。

3.2 供试品溶液制备方法考察

本研究考察了不同取样量(0.4、0.5、0.6、0.7 g),不同提取溶剂(甲醇、水),不同浓度的甲醇(30%甲醇、50%甲醇、70%甲醇),不同提取方式(超声、回流)及不同提取时间(30、60、90、120 min)制备的供试品溶液,采用HPLC,对样品的数量、峰形、分离度和被测成分的含量进行比较研究。结果表明在取样量为0.6 g采用50%甲醇、回流提取60 min时色谱峰较丰富,各色谱峰响应良好,指标成分提取率较高。

3.3 色谱条件考察

本实验考察了乙腈-0.1%醋酸水、乙腈-0.1%磷酸水两种溶剂系统。其中乙腈-0.1%磷酸水溶剂系统显示出良好的峰形和分离度,且基线平稳,因此选择乙腈-0.1%磷酸水为流动相。采用DAD检测器对供试品溶液进行全波长扫描,分析发现,在254 nm波长下,样品中的各个峰均表现出较高的响应值,而320 nm下迷迭香酸的峰形较好,吸收较大。综合考虑多个因素,如基线、峰形、峰数、分离度及指标成分响应值等,最终选择254 nm作为指纹图谱和QGG含量测定的检测波长,选择320 nm作为迷迭香酸含量测定的检测波长。

3.4 指标成分的选择

苏葶丸主要由葶苈子和紫苏子组成,葶苈子中黄酮类成分具有广泛的药理作用[8-10],而QGG含量最高[11],且仅存在于南葶苈子,同时也是《中国药典》2020版中葶苈子的含量测定指标成分。紫苏子的化学成分主要有酚酸、挥发油和黄酮类等,其中酚酸类中迷迭香酸含量最高,具有抗炎、抗菌、抗病毒、抗氧化、抗肿瘤等功效[12-16],同时也是《中国药典》2020版中紫苏子的含量测定指标成分。故本研究选择QGG和迷迭香酸作为苏葶丸质量控制的指标成分。

4 结语

为适应中医药理论体系下的产品多样性和便捷性,开发经典名方复方制剂是中医药新时期发展的客观需要,也是中医药走向规范化、现代化进程中不可或缺的一环。以经典名方为契机,对其产品的各个环节进行研究,并对其质量进行严格控制。故本研究从定性和定量两方面建立苏葶丸的质量控制方法,采用TLC定性鉴别了苏葶丸中炒紫苏子和炒葶苈子两味中药,建立了10批苏葶丸HPLC指纹图谱,其相似度高、分离度好,同时对部分共有峰进行了化学成分指认并进行定量分析,从而控制其质量,可为苏葶丸相关制剂研发提供依据。然而,本研究的定量分析指标较少,未来应筛选与药效相关的多个指标成分,建立同时测定多成分含量的方法,实现更精准的质量控制。此外,本研究的药材批次数量相对有限,来源可能不够广泛,未来可扩大样本量以更充分评估其稳定性和代表性。

参考文献
[1]
国家中医药管理局. 国家中医药管理局关于发布《古代经典名方目录(第二批儿科部分)》的通知[EB/OL]. (2022-09-14)[2024-07-30]. http://www.natcm.gov.cn/kejisi/gongzuodongtai/2022-09-15/27665.html.
[2]
吴谦. 医宗金鉴[M]. 北京: 人民卫生出版社, 2017: 685.
[3]
祝志朋, 田新磊, 赵文锦, 等. 平陈汤合苏葶丸加减治疗痰湿闭阻型小儿肺炎支原体肺炎的临床研究[J]. 时珍国医国药, 2020, 31(10): 2422-2425.
[4]
刘泉, 郭光辉, 蒋心悦, 等. 真武汤合苏葶丸治疗肺源性心脏病急性发作期合并左心衰竭的效果探讨[J]. 世界中医药, 2019, 14(7): 1813-1816. DOI:10.3969/j.issn.1673-7202.2019.07.041
[5]
钟振环, 胡文杰, 苏小霞, 等. 苏葶定喘汤加推拿疗法治疗小儿喘息样支气管炎56例[J]. 临床合理用药杂志, 2017, 10(2): 168-169.
[6]
王薇, 王岚, 柯苹, 等. 基于古代文献计量分析的经典名方苏葶丸关键信息考证[J]. 中国医院用药评价与分析, 2024, 24(2): 157-160, 164.
[7]
国家药典委员会. 中华人民共和国药典[M]. 北京: 中国医药科技出版社, 2020: 59-60.
[8]
冯卫生, 杨方方, 张莉, 等. 南葶苈子水提物对多柔比星诱导H9c2细胞凋亡和氧化应激的抑制作用[J]. 中国药学杂志, 2018, 53(23): 1999-2007. DOI:10.11669/cpj.2018.23.005
[9]
张桐茂, 刘炜, 孔德颖. 南葶苈子中的指标成分槲皮素-3-O-β-D-葡萄糖基-7-O-β-D-龙胆双糖苷对慢性阻塞性肺疾病大鼠肺部免疫功能调节机制研究[J]. 中草药, 2019, 50(4): 910-917.
[10]
袁方. 南葶苈子总黄酮对大鼠气道平滑肌细胞增殖的影响[D]. 长春: 吉林大学, 2010.
[11]
王爱芹, 王秀坤, 闫兴丽, 等. HPLC测定南葶苈子中槲皮素-3-O-β-D-葡萄糖-7-O-β-D-龙胆双糖苷的含量[J]. 中国中药杂志, 2004, 29(10): 34-36.
[12]
ROCHA J, EDUARDO-FIGUEIRA M, BARATEIRO A, et al. Anti-inflammatory effect of rosmarinic acid and an extract of Rosmarinus officinalis in rat models of local and systemic inflammation[J]. Basic & Clinical Pharmacology & Toxicology, 2015, 116(5): 398-413.
[13]
SLOBODNÍKOVÁ L, FIALOVÁ S, HUPKOVÁ H, et al. Rosmarinic acid interaction with planktonic and biofilm Staphylococcus aureus[J]. Natural Product Communications, 2013, 8(12): 1747-1750.
[14]
DUBOIS M, BAILLY F, MBEMBA G, et al. Reaction of rosmarinic acid with nitrite ions in acidic conditions: Discovery of nitro-and dinitrorosmarinic acids as new anti-HIV-1 agents[J]. Journal of Medicinal Chemistry, 2008, 51(8): 2575-2579.
[15]
ASSEFA A D, JEONG Y J, KIM D J, et al. Characterization, identification, and quantification of phenolic compounds using UPLC-Q-TOF-MS and evaluation of antioxidant activity of 73 Perilla frutescens accessions[J]. Food Research International, 2018, 111: 153-167.
[16]
KARTHIKKUMAR V, SIVAGAMI G, VINOTHKUMAR R, et al. Modulatory efficacy of rosmarinic acid on premalignant lesions and antioxidant status in 1, 2-dimethylhydrazine induced rat colon carcinogenesis[J]. Environmental Toxicology and Pharmacology, 2012, 34(3): 949-958.