天津中医药大学学报  2026, Vol. 45 Issue (1): 45-54

文章信息

王若溪, 鄢梁裕, 杜小利
WANG Ruoxi, YAN Liangyu, DU Xiaoli
两地汤治疗绝经综合征机制研究
Mechanism study of Liangdi Decoction in treating menopausal syndrome
天津中医药大学学报, 2026, 45(1): 45-54
Journal of Tianjin University of Traditional Chinese Medicine, 2026, 45(1): 45-54
http://dx.doi.org/10.11656/j.issn.1673-9043.2026.01.07

文章历史

收稿日期: 2025-09-01
两地汤治疗绝经综合征机制研究
王若溪1,2 , 鄢梁裕1,2 , 杜小利1,2,3     
1. 宁夏医科大学,银川 750000;
2. 宁夏医科大学中医燥证教育部重点实验室,银川 750000;
3. 宁夏医科大学附属中医医院,吴忠 750006
摘要: [目的] 基于网络药理学分析及体内实验探讨两地汤治疗绝经综合征(MPS)的作用机制。[方法] 利用整合传统中医临床和实验证据的更新数据库(HERB)、有机小分子生物活性数据库(Pubchem)、药物分类和靶点预测数据库(superpred)获得两地汤的主要活性成分及靶点基因。通过人类基因的综合数据库(GeneCards)、人类在线孟德尔遗传搜索数据库(OMIM)、药物数据与全面药物靶点信息数据库(DrugBank)获得MPS的相关靶点。选取药物和疾病交集靶点,并将共同靶点录入STRING数据库,制作蛋白质-蛋白质相互作用网络图(PPI网络图),通过Cytoscape3.10.3软件获得“药物-活性成分-靶点”网络图。基因功能注释及通路富集分析通过DAVID在线数据库予以实施,具体包括基因本体(GO)功能注释与京都基因与基因组百科全书(KEGG)信号通路分析。基于AutoDock Tools 1.5.7软件和CB-Dock2平台,文章对网络药理学所预测的关键信号通路中的蛋白因子与筛选出的核心活性成分进行了分子对接,从而在分子层面验证其相互作用潜能。通过体内实验检测白细胞介素-6(IL-6)、信号转导和转录激活因子3(STAT3)、磷酸化STAT3(P-STAT3)、半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶3(Caspase-3)、B淋巴细胞瘤-2(Bcl-2)、缺氧诱导因子-1(HIF-1)表达,验证其改善MPS卵巢衰老的作用机制。[结果] 筛选得到5个核心蛋白(IL-6、STAT3、HIF-1、Caspase-3、Bcl-2和8个关键活性成分(松柏苷、柳杉酚、儿茶素、异前胡醚、马美辛、白当归醇、金合欢素、醋酸橙黄胺),对接结合能均 < -5 kcal/mol。实验表明,两地汤可以降低IL-6、STAT3、HIF-1、Caspase-3蛋白表达,提高Bcl-2蛋白表达。[结论] 两地汤可能通过抑制HIF-1信号通路,调控IL-6、STAT3、Caspase-3、Bcl-2等蛋白表达,降低缺氧诱导因子水平和炎症水平,增强抗凋亡表达,达到延缓卵巢衰老的作用。
关键词: 两地汤    绝经综合征    炎症性老化    网络药理学    分子对接    
Mechanism study of Liangdi Decoction in treating menopausal syndrome
WANG Ruoxi1,2 , YAN Liangyu1,2 , DU Xiaoli1,2,3     
1. Ningxia Medical University, Yinchuan 750000, China;
2. Key Laboratory of Dryness Syndrome in Chinese Medicine, Ministry of Education, Ningxia Medical University, Yinchuan 750000, China;
3. Affiliated Traditional Chinese Medicine Hospital of Ningxia Medical University, Wuzhong 750006, China
Abstract: [Objective] To explore the mechanism of Liangdi Decoction(LDD) in treating menopausal syndrome(MPS) based on network pharmacology and in vivo experiments. [Methods] The main active ingredients and target genes of LDD were obtained from databases including HERB(a high-throughput experiment- and reference-guided database of traditional Chinese medicine), PubChem, and SuperPred. Disease targets for MPS were retrieved from GeneCards, OMIM, and DrugBank. The common targets between LDD and MPS were selected and imported into the STRING database to construct a protein-protein interaction(PPI) network. The "drug-active ingredient-target" network was visualized using Cytoscape 3.10.3. Gene Ontology(GO) functional annotation and Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes(KEGG) pathway enrichment analysis were performed using the DAVID database. Molecular docking of core active ingredients with key protein factors in predicted signaling pathways was conducted using AutoDock Tools 1.5.7 and CB-Dock2 to validate potential interactions. In vivo experiments were performed to measure the expression levels of interleukin-6(IL-6), signal transducer and activator of transcription 3(STAT3), phosphorylated STAT3(p-STAT3), Caspase-3, B-cell lymphoma-2(Bcl-2), and hypoxia-inducible factor-1α(HIF-1α), verifying the mechanism of LDD in ameliorating ovarian aging in MPS. [Results] Six core proteins(IL-6, STAT3, HIF-1α, Caspase-3, Bcl-2) and eight key active ingredients(coniferin, sugiol, catechin, isoimperatorin, marmesin, byakangelicol, acacetin, poncimarin) were screened. The molecular docking binding energies were all < -5 kcal/mol. Experiments showed that LDD could down-regulate the protein expression of IL-6, STAT3, HIF-1α, and caspase-3, and up-regulate the expression of Bcl-2. [Conclusion] LDD may delay ovarian aging by inhibiting the HIF-1 signaling pathway, regulating the expression of proteins such as IL-6, STAT3, Caspase-3, and Bcl-2, thereby reducing hypoxia-inducible factor levels and inflammation, and enhancing anti-apoptotic expression.
Key words: Liangdi Decoction    menopausal syndrome    inflammaging    network pharmacology    molecular docking    

绝经综合征(MPS)指45~55岁女性所表现出的一系列生理与心理症状,如潮热、失眠和焦虑等[1]。中医既往未见统一病名,称绝经前后诸症。在临床实践中,该病常依据其核心表现不同,分别归属于“年老血崩”“失眠”“心悸”等范畴进行辨证诊治。其核心病机在于“天癸竭”与“肾虚”,肾精亏虚进一步波及并影响其他脏腑,从而引发多种复杂症状[2]。绝经期诸多症状的产生,其根本病机源于“天癸竭”与肾气衰亏。肾为先天之本,主司生殖,对女性生长发育至关重要。《素问· 上古天真论》明确指出,女子约至“七七”之年,由于任脉空虚、太冲脉衰败,天癸枯竭,月经终止而无法生育。任脉作为“阴脉之海”,主管精、血、津、液;冲脉为“十二经之海”和“五脏六腑之海”。肾虚精亏导致冲任两脉虚衰,阴血不足,从而引发符合“阴虚”特征的潮热、盗汗、烦躁、失眠等症状,验证了《格致余论》“阳常有余,阴常不足”的学术观点[3]。在临床上,可以选取舌针穴位肝穴、肾穴等改善失眠及潮热盗汗症状[4]。因此,在绝经期滋阴补血以养肾为关键治疗法则。

两地汤源于《傅青主女科》,由生地黄、玄参、白芍、麦冬、地骨皮、阿胶组成[5]。本方以生地黄与地骨皮共为君药。玄参可以滋阴清热,麦冬则能泻热养阴、生津润燥,玄参、麦冬与生地黄相配,正合增液汤之组成。增液汤以大量滋阴生津之品为主,取其“增水行舟”之意;配伍地骨皮更能增强全方滋阴清热之效。方中另佐白芍以养血敛阴,阿胶以滋阴补血。诸药相合,全方侧重滋阴壮水,水充则火自敛,阴复则阳得固。清代医家傅山称此方“皆用滋水之品”,意在强调其专于补益阴液之功。古代医家多用于治疗月经先期,现代多用于治疗月经失调[6]、崩漏及MPS[7-9],还可以治疗中老年女性阴道干涩[10]。随着西医对两地汤组成中药研究的持续进展,在调节激素水平及改善免疫功能等方面的疗效已经获得科学验证。生地黄通过抗炎、抗氧化发挥抗抑郁作用,降低血压、血脂,保护肾脏[11]。玄参在抗炎、抗氧化的同时还能够保护肝脏[12]。白芍保肝、抗炎,同时对神经、心血管也具有保护作用,可以抑制白细胞介素-6(IL-6)/信号转导和转录激活因子3通路活化[13]。麦冬可以减轻氧化应激引起的线粒体功能障碍,降低血脂水平、镇静催眠、增强免疫[14]。地骨皮改善睡眠,通过清除超氧自由基延缓衰老[15]。现代药理研究发现阿胶具有抗炎、调节免疫、纠正贫血作用,还可以抗衰老、抗疲劳、抗氧化[16]。据此,本研究采用网络药理学结合动物实验的研究方法,旨在阐明两地汤治疗MPS的内在作用机制,以期为该方的临床应用提供理论依据。

1 材料 1.1 动物

纳入SPF级6~8周C57BL/6雌性小鼠,体质量(20±2)g,购自宁夏医科大学实验动物中心。实验通过宁夏医科大学实验动物伦理委员会审查(IACUC-NYLAC-2024-127)。

1.2 药品、试剂

生地黄30g(批号:T000204056)、地骨皮9g(批号:T440203924)、阿胶9g(批号:T121704169)、玄参30g(批号:T000204073)、白芍15g(批号:T001703958)、麦冬15g(批号:T441703928),购自宁夏大医中医医院门诊部中药房,将两地汤免煎颗粒剂研磨成粉末,用0.5%羧甲基纤维素钠(CMC-Na)溶液溶解,浓缩至低剂量0.300g/mL、中剂量0.588g/mL、高剂量1.173g/mL,-4℃保存。

4-乙烯基环己烯二环氧化物(VCD)购自上海易恩化学技术有限公司(批号:RH616091/R017685,25mL),0.2mL溶于10.74mL芝麻油中,配制成20mg/mL的VCD芝麻油溶液,在常温下保存即可。

芬吗通(雌二醇片/雌二醇地屈孕酮片,规格:1/10mg×28片,注册证号:H20150346),采购自宁夏古方汉方大药房有限公司胜利南街店。实验前将药片研磨粉碎,使用0.5%的CMC-Na溶液配制成所需制剂。

IL-6抗体、STAT3抗体、磷酸化STAT3(P-STAT3)抗体、半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶3(Caspase-3)抗体、B淋巴细胞瘤-2(Bcl-2)抗体(武汉三鹰生物技术有限公司,批号分别为:26404-1-AP、10253-2- AP、28945-1-AP、19677-1-AP、26593-1-AP);缺氧诱导因子-1(HIF-1)抗体(成都正能生物技术有限责任公司,批号:340462)。

1.3 仪器

组织石蜡包埋机(ArcadiaH+C,含冷冻台)、全自动组织脱水机(TP1020)、全自动轮转式石蜡切片机(RM2255)、烤片机(HI1210)、摊片机(HI1220)和切片扫描仪(APerioLV1)采购自德国Leica公司。以上设备用于制备免疫组织化学、末端脱氧核苷酸转移酶介导的dUTP缺口末端标记(TUNEL)染色所需石蜡切片及图像扫描。

2 方法 2.1 网络药理学分析两地汤治疗MPS机制 2.1.1 获取活性成分及靶点

对两地汤中6味中药的活性成分、靶点进行检索。由于生地黄、地骨皮、阿胶、玄参、白芍、麦冬不能全部在Traditional Chinese Medicine Systems Pharmacology(TCMSP)数据库中被检索到,但是为了保证得出数据格式统一、标准一致、可比性强,需要方中所有药物均在同一数据库中被检索到,而Herb数据库(http://herb. ac.cn)可以检索到两地汤中全部药物,所以采用Herb数据库进行检索。将检索出的化学成分采用Pubchem数据库(https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov)获取对应的分子结构,并导入superpred数据库(https://prediction.charite.de/index.php),Probability> 60%,获取有效成分基因名称。

2.1.2 获取MPS疾病相关靶点

将“Menopausal Syndrome”作为关键词,在GeneCard数据库(https://www.genecards.org)、OMIM数据库(https://www.omim.org)、DrugBank数据库(https://go.drugbank.com)中检索相关靶点并剔除重复项。

2.1.3 两地汤治疗MPS的可能靶点及蛋白质-蛋白质相互作用网络图(PPI网络图)制作

将MPS疾病相关靶点与两地汤药物活性成分靶点用Venny2.1平台(https://bioinfogp.cnb.csic.es/tools/venny)绘制出韦恩图。将两地汤与MPS的共同靶点录入STRING数据库(https://cn.string-db.org),制作PPI网络图,并通过Cytoscape3.10.3软件获得“药物-活性成分-靶点”网络图。

2.1.4 基因本体(GO)功能注释与京都基因与基因组百科全书(KEGG)通路富集分析

将Cytoscape3.10.3中得到的靶点导入DAVID数据库(https://david.ncifcrf.gov),得出生物过程(BP)、细胞成分(CC)、分子功能(MF)3项分析。选取出GO分析的前10项,KEGG通路与MPS相关通路20项(P < 0.01),并通过微生信平台得到关键通路及其核心蛋白的可视化图。

2.1.5 分子对接分析

选取关键信号通路中的蛋白因子作为分子对接受体,并将通过“药物-活性成分-靶点”筛选流程所得、兼具较高口服生物利用度与类药性的核心活性成分作为对接配体。从Uniprot数据库(http://www.uniprot.org)及PDB数据库(https://www.rcsb.org/)中获取关键靶点蛋白的三维结构文件(格式为.pdb)。活性成分的结构文件(格式为.sdf)则通过PubChem数据库(https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/)下载。蛋白受体PDBID为IL-6:1ALU、STAT3:6NJS、HIF-1:8HE0、Caspase-3:1GFW、Bcl-2:1G5M。小分子配体CompoundCID为松柏苷(coniferin):5280372、柳杉酚(sugiol):94162、儿茶素(catechin):9064、异前胡醚(isoimperatorin):68081、马美辛(Marmesine):334704、白当归醇(senbyakangelicol):156995、金合欢素(acacetin):5280442、醋酸橙黄胺(aurantiamideacetate):10026486。小分子配体经Chem3D软件转换为“.mol2”格式,蛋白受体则使用PyMOL进行结构优化。后续分子对接利用AutoDockTools1.5.7软件和CB-Dock2平台(https://cadd.labshare.cn/cb-dock2/php/index.php)完成,在CB-Dock2平台进行自动盲坞,通常将结合能低于-5kcal/mol作为判断配体与受体间具有良好结合活性的阈值。

2.2 体内实验 2.2.1 分组、造模及给药

SPF级6~8周C57BL/6雌鼠分为空白组、模型组、芬吗通组、两地汤低剂量组、两地汤中剂量组、两地汤高剂量组,每组12只。除空白组外,其余各组分别用VCD以160mg/kg的小鼠剂量腹腔注射15d建立模型。通过前期预实验,发现小鼠体质量下降、动情周期紊乱、卵巢组织染色切片显示卵巢萎缩、卵泡减少,提示模型建立成功。

模型建立成功后进行灌胃治疗,空白组与模型组给予0.9%生理盐水0.3mL/d。芬吗通组21mg(/kg·d)。两地汤各剂量组按照设定剂量给药,低剂量为临床等效剂量1/2,中剂量为临床等效剂量,高剂量为中剂量2倍。每日1次,持续28d。

2.2.2 实验动物生物样本采集

给药干预完成后,待小鼠进入动情间期(人类月经期对应阶段)后取材。动情周期的确认以4~5d为间隔进行监测。摘取双侧卵巢,其中一侧迅速置于干冰上进行冷冻,随后转移至-80℃冰箱贮存;另一侧浸没于4%多聚甲醛溶液固定24h。

2.2.3 TUNEL染色观察小鼠卵巢颗粒细胞凋亡情况

切片经脱蜡与水化处理后,用磷酸缓冲盐溶液(PBS)清洗;随后进行蛋白酶K消化,再次以PBS清洗;接着实施通透处理,并重新使用PBS清洗;后加入TUNEL反应液孵育,反应完毕后再以PBS清洗;对细胞核进行复染,PBS清洗后完成封片,最后于荧光显微镜下观察。其中,绿色荧光标记指示凋亡阳性信号,蓝色荧光代表细胞核。

2.2.4 免疫组织化学法检测卵巢组织中IL-6、STAT3、HIF-1、Caspase-3、Bcl-2蛋白表达

免疫组织化学法检测选取制备完成的卵巢组织石蜡切片,按照以下顺序进行操作:石蜡切片→脱蜡、水化→ PBS漂洗→抗原修复→3%过氧化氢(H2O2)室温10min→一抗孵育→PBS漂洗→二抗孵育→显色→复染细胞核→封片。棕色信号为蛋白表达,蓝色信号为细胞核。

2.2.5 统计学分析

统计学分析及图形生成分别采用SPSS27.0及GraphPadPrism9.5.0软件平台。计量资料采用均数±标准差(x±s)进行描述。多样本计量资料和分类变量的组间比较,依次采用单因素方差分析和卡方检验。若单因素方差分析结果显示差异具有统计学意义,则使用LSD-t检验实施两两比较。P < 0.05为差异具有统计学意义。

3 结果 3.1 网络药理学筛选结果 3.1.1 两地汤主要成分、作用靶点

采用Herb数据库筛选、收集得到生地黄16个、玄参50个、白芍109个、麦冬23个、地骨皮27个、阿胶2个有效成分。删除重复项,得到药物靶点453个。选用GeneCards、OMIM、DrugBank数据库分别获得500、647、78个与MPS相关靶点,删除重复项后共获得1155个与MPS相关的靶点。将两地汤药物靶点与疾病靶点取交集,得到两地汤治疗MPS的潜在靶点68个,韦恩图见图 1。采用Cytoscape3.10.3制作“药物-疾病”共同靶点网络图,见图 2。采用Cytoscape3.10.3制作PPI网络图。通常情况下,某个靶点在疾病网络中扮演的角色越关键、与其他靶点的相互作用越广泛,其对应的节点在图表中的颜色便会越深,面积也越大,见图 3。STAT3、EGFR、ESR1、ERBB2、mTOR为核心靶点。

图 1 两地汤与MPS交集靶点韦恩图
图 2 “药物-疾病”共同靶点PPI网络图
图 3 “药物-疾病”共同靶点
3.1.2 药物-活性成分-靶点预测网络图

将“药物-活性成分-靶点”数据制作“network.xlsx”文件及“type.xlsx”文件,并导入Cytoscape3.10.3得到两地汤治疗MPS的“药物-活性成分-靶点”图,见图 4

图 4 药物-活性成分-靶点网络图
3.1.3 GO分析及KEGG通路富集分析

将68个药物-疾病共同作用靶点提交至DAVID数据库,分别开展GO功能注释与KEGG通路富集分析(显著性阈值设置为P < 0.01),并从BP、CC、MF中分别选取富集显著性排名前10位的条目进行后续分析。结果显示BP涉及信号传导、磷酸化、RNA聚合酶对转录的正向调节Ⅱ等;CC涉及血浆膜、细胞质、核质等;MF涉及蛋白质结合、ATP结合、相同蛋白质结合等,见图 5。通过DAVID数据库共富集得到115条与两地汤治疗MPS相关通路,根据P < 0.01筛选出两地汤与MPS治疗相关的前20条通路。KEGG主要与癌症途径、HIF-1信号通路、ErbB信号通路、内分泌抵抗等有关,见图 6。文献表明,衰老与氧化应激状态相关,由此推测,氧化应激途径可能是两地汤治疗MPS的关键通路,见图 7

图 5 GO分析图
图 6 KEGG通路富集分析结果
图 7 HIF-1通路示意图
3.1.4 分子对接分析结果

将关键通路的上的蛋白因子IL-6、STAT3、HIF-1、Caspase-3、Bcl-2作为分子对接受体,“药物-活性成分-靶点”筛选出的口服生物利用度及类药性高的关键活性成分作为分子对接配体,其中包含生地黄中的松柏苷、玄参和地骨皮中的柳杉酚、白芍中的儿茶素、异前胡醚、马美辛、白当归醇、地骨皮中的金合欢素、醋酸橙黄胺。将受体与配体一一对接,结合能均 < -5kcal/mol(表 1),表明两地汤主要药物成分与IL-6、STAT3、HIF-1、Caspase-3、Bcl-2这5个核心蛋白结合稳定,其中STAT3与柳杉酚结合最强,结合能为-8.3kcal/mol,自动盲坞得到中心位点(16,11,18),对接尺寸(20,20,20),见图 8。对接图中黄色虚线代表配体与受体作用键(2.5、2.1为作用键距离),粉色实线代表氨基酸残基结合位点(LYS-370、THR-440为位点号)。

表 1 蛋白受体-小分子配体结合能 
kcal/mol
蛋白受体/药物配体IL-6 STAT3 HIF-1 Caspase-3 Bcl-2
松柏苷 -6.2 -6.9 -6.4 -6.6 -6.9
柳杉酚 -6.6 -8.3 -6.9 -7.8 -7.8
儿茶素 -6.5 -7.4 -6.3 -7.1 -7.8
异前胡醚 -6.7 -6.9 -6.3 -6.8 -6.9
马美辛 -6.4 -7.4 -6.4 -7.2 -7.6
白当归醇 -6.7 -7.4 -6.9 -7.2 -7.5
金合欢素 -6.3 -7.3 -6.8 -7.5 -7.8
醋酸橙黄胺 -6.8 -7.6 -7.8 -7.9 -7.6
图 8 STAT3-柳杉酚分子对接图
3.2 两地汤治疗MPS实验结果 3.2.1 两地汤对MPS小鼠卵巢组织中IL-6、STAT3、HIF-1、Caspase-3、Bcl-2蛋白的影响

结果显示,与空白组比较,模型组小鼠卵巢组织内IL-6、STAT3、HIF-1、Caspase-3表达均上调(P < 0.0001),而Bcl-2蛋白表达下降(P < 0.0001)。在给予不同剂量两地汤干预后,与模型组比较,各给药组(低、中、高剂量)中IL-6、STAT3、HIF-1表达均出现下降(P < 0.05)。与模型组比较,两地汤中、高剂量组卵巢组织中Caspase-3蛋白表达降低(P < 0.001);与模型组比较,两地汤低、中、高组卵巢组织中Bcl-2蛋白表达升高(P < 0.05)。见图 910111213

注:与模型组比较,****P < 0.0001。 图 9 IL-6蛋白在卵巢组织中的表达水平(x±sn=12)
注:与模型组比较,*P < 0.05,**P < 0.01,****P < 0.0001。 图 10 STAT3蛋白在卵巢组织中的表达水平(x±sn=12)
注:与模型组比较,**P < 0.01,****P < 0.0001。 图 11 HIF-1蛋白在卵巢组织中的表达水平(x±sn=12)
注:与模型组比较,ns表示差异无统计学意义,***P < 0.001,****P < 0.0001。 图 12 Caspase-3蛋白在卵巢组织中的表达水平(x±sn=12)
注:与模型组比较,*P < 0.05,**P < 0.01,***P < 0.001,****P < 0.0001。 图 13 Bcl-2蛋白在卵巢组织中的表达水平(x±sn=12)
3.2.2 两地汤对MPS小鼠卵巢颗粒细胞凋亡的影响T

UNEL染色结果显示,绿色信号为阳性信号,与空白组比较,模型组小鼠卵巢颗粒细胞大量凋亡(P < 0.0001);与模型组比较,各治疗组凋亡数量均见减少(P < 0.0001)。见图 14表 2

图 14 小鼠卵巢颗粒细胞TUNEL染色情况(×10)
表 2 小鼠卵巢颗粒细胞相对TUNEL染色凋亡强度比值(x±s
组别 n 相对TUNEL染色凋亡强度比值
空白组 12 0.58±0.01
模型组 12 2.71±0.01****
芬吗通组 12 1.22±0.01####
两地汤低剂量组 12 1.24±0.01####
两地汤中剂量组 12 1.10±0.01####
两地汤高剂量组 12 1.13±0.01####
注:与空白组比较,****P < 0.000 1;与模型组比较,####P < 0.000 1。
4 讨论

卵巢功能逐步减退会引发体内雌激素水平发生波动并日趋下降,这一变化是导致女性出现一系列身心不适症状的核心原因[17]。性激素与中枢神经递质水平的共同波动,通过影响神经内分泌系统,最终引发多种生理与心理变化及不适感[18]。绝经期的本质是卵巢功能衰竭,而非简单的月经终止。在此过程中,由于卵巢衰退引发的雌激素水平波动性下降成为了关键诱因,它促使内分泌、心血管和神经系统等功能障碍显现或加剧[19]。因此,卵巢衰老被公认为女性衰老历程中的核心节点之一。

随着年龄增长,体内线粒体功能衰退[20]、抗氧化防御能力减弱等均会造成活性氧(ROS)堆积。ROS持续上调是细胞氧化应激的主要特征,也是导致细胞衰老的重要因素[21]。研究表明,氧化应激损伤是卵巢功能衰退的关键因素,卵巢中ROS的过度积累会加速卵巢细胞衰老,炎症反应导致卵泡质量下降与卵泡数量减少,从而降低卵巢功能[22-24]。IL-6通过STAT3上调HIF-1,在慢性炎症或氧化应激环境中,IL-6结合受体gp130激活Janus激酶(JAK),进而将STAT3磷酸化。活化STAT3进入细胞核后直接结合HIF-1基因启动,促进HIF-1转录[25-26]。STAT3还通过诱导雌激素相关受体α(ERRα)表达,ERRα与HIF-1蛋白结合并阻止其降解,进一步增加HIF-1的稳定性[25],同时通过激活自噬相关蛋白Bcl-2触发自噬依赖性衰老[26]。Bcl-2高表达可以抑制线粒体外膜透化,阻断细胞色素c释放,从而抑制Caspase-3激活[27]。相反,当Bcl-2表达较低时,细胞色素c释放到细胞质中,与凋亡蛋白活性因子-1(Apaf-1)等蛋白形成“凋亡体”,Caspase-3被激活[28]。绝经后女性雌激素水平下降,雌激素受体(ESR1)信号减弱,失去对HIF-1的抑制作用,慢性缺氧微环境加速进一步加重衰老(如骨质疏松、血管老化)。结合网络药理学分析结果,推测MPS的发生可能是ROS积累导致衰老细胞积聚,IL-6参与细胞衰老,由衰老细胞产生,并参与衰老诱导的炎症[29],进而激活STAT3,使得HIF-1稳定,释放缺氧因子,导致线粒体功能障碍加剧,并调控下游基因,诱发凋亡,使抗凋亡因子Bcl-2失去抗凋亡功能。IL-6/STAT3虽然不直接参与氧化应激,但是其在HIF-1信号通路中可以激活HIF-1,加剧氧化应激反应。研究表明,给予MPS模型小鼠两地汤灌胃治疗后,IL-6、STAT3、HIF-1、Caspase-3蛋白表达较模型组降低,Bcl-2蛋白表达较模型组升高,最终抑制了小鼠卵巢颗粒细胞凋亡状态。

此外,本研究基于既往临床治疗MPS有效性的基础上开展了分子机制研究,旨在进一步补充两地汤治疗MPS的有效依据。受工作量及研究人员精力影响,此次研究仅完成了体内动物实验,而两地汤治疗MPS卵巢衰老的体外细胞实验尚待完成,以期进行体内外双向验证更加全面地探索两地汤的药理机制。

综上所述,两地汤可以降低小鼠卵巢中IL-6、STAT3、HIF-1、Caspase-3蛋白表达,上调Bcl-2蛋白表达,改善卵巢组织炎症性老化状态,HIF-1信号通路可能是两地汤治疗MPS的关键通路,涉及IL-6、STAT3、HIF-1、Caspase-3、Bcl-2等关键蛋白。

参考文献
[1]
中华医学会妇产科学分会绝经学组. 中国绝经管理与绝经激素治疗指南2023版[J]. 中华妇产科杂志, 2023, 58(1): 4-21.
[2]
王小云, 杜洪艳. 绝经前后诸证[M]. 北京: 中国中医药出版社, 2015: 3.
[3]
王春. 基于"阴虚火旺"理论治疗更年期综合征的临床疗效观察[J]. 中国典型病例大全, 2025, 19(1): 359-361.
[4]
孙杰, 陆瑾, 魏心昶, 等. 舌针结合体针治疗围绝经期失眠及对血清E2、FSH、LH水平的影响[J]. 天津中医药大学学报, 2021, 40(3): 331-335. DOI:10.11656/j.issn.1673-9043.2021.03.13
[5]
傅青主. 傅青主女科(大字本)[M]. 太原: 山西科学技术出版社, 2012.
[6]
苗裕. 两地汤的理论探析及现代应用[J]. 中国中医药现代远程教育, 2020, 18(12): 81-82.
[7]
雷利娟, 温岩, 杨继红. 经典名方两地汤古今文献初探[J]. 中国民间疗法, 2022, 30(18): 10-15.
[8]
陈宏. 两地汤加减治疗围绝经期综合征85例[J]. 浙江中医杂志, 2010, 45(7): 505.
[9]
吴淑玲. 加味两地汤治疗围绝经期综合征32例[J]. 河南中医, 2006, 26(12): 47-48.
[10]
高仁美, 郝培芹. 两地汤加减治疗中老年女性阴道干涩的临床疗效研究[J]. 中医临床研究, 2021, 13(17): 113-115.
[11]
李雪丽, 雷根平, 陆娴, 等. 生地黄药理作用研究进展[J]. 辽宁中医药大学学报, 2024, 26(12): 135-139.
[12]
刘依茹, 刘考铧, 秦路平, 等. 中药玄参的化学成分、药理活性、炮制及临床应用的研究进展[J]. 中国中药杂志, 2023, 48(16): 4302-4319.
[13]
冷嘉怡, 马艳妮, 张超, 等. 白芍化学成分、药理作用及临床应用研究进展[J]. 辽宁中医药大学学报, 2025, 27(8): 124-131.
[14]
常思潮, 常惟智. 麦冬的药理作用及复方临床应用研究进展[J]. 光明中医, 2023, 38(12): 2443-2446.
[15]
陈靖枝, 卢星, 胡运琪, 等. 传统中药地骨皮化学成分和药理活性研究进展[J]. 中国中药杂志, 2021, 46(12): 3066-3075.
[16]
曲媛鑫, 付英杰. 阿胶化学成分、质量控制及药理作用研究进展[J]. 特产研究, 2023, 45(3): 136-143.
[17]
HARLOW S D, GASS M, HALL J E, et al. Executive summary of the Stages of Reproductive Aging Workshop+10:Addressing the unfinished agenda of staging reproductive aging[J]. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism, 2012, 97(4): 1159-1168. DOI:10.1210/jc.2011-3362
[18]
MONTELEONE P, MASCAGNI G, GIANNINI A, et al. Symptoms of menopause-global prevalence, physiology and implications[J]. Nature Reviews Endocrinology, 2018, 14(4): 199-215. DOI:10.1038/nrendo.2017.180
[19]
CHEN W, CHEN M, TANG H, et al. Advances in diagnosis and treatment of perimenopausal syndrome[J]. Open Life Sciences, 2023, 18(1): 20220754. DOI:10.1515/biol-2022-0754
[20]
RIZVI F, PRESTON C C, EMELYANOVA L, et al. Effects of aging on cardiac oxidative stress and transcriptional changes in pathways of reactive oxygen species generation and clearance[J]. Journal of the American Heart Association, 2021, 10(16): e019948. DOI:10.1161/JAHA.120.019948
[21]
JOCHUM W, PASSEGUé E, WAGNER E F. AP-1 in mouse development and tumorigenesis[J]. Oncogene, 2001, 20(19): 2401-2412. DOI:10.1038/sj.onc.1204389
[22]
AGARWAL A, APONTE-MELLADO A, PREMKUMAR B J, et al. The effects of oxidative stress on female reproduction: A review[J]. Reproductive Biology and Endocrinology, 2012, 10: 49. DOI:10.1186/1477-7827-10-49
[23]
SPEARS N, LOPES F, STEFANSDOTTIR A, et al. Ovarian damage from chemotherapy and current approaches to its protection[J]. Human Reproduction Update, 2019, 25(6): 673-693. DOI:10.1093/humupd/dmz027
[24]
ZHANG Z, SCHLAMP F, HUANG L, et al. Inflammaging is associated with shifted macrophage ontogeny and polarization in the aging mouse ovary[J]. Reproduction, 2020, 159(3): 325-337. DOI:10.1530/REP-19-0330
[25]
XU J, WAKAI M, XIONG K, et al. The pro-inflammatory cytokine IL6 suppresses mitochondrial function via the gp130-JAK1/STAT1/3-HIF1α/ERRα axis[J]. Cell Reports, 2025, 44(3): 115403. DOI:10.1016/j.celrep.2025.115403
[26]
WANG K, ZHU X, ZHANG K, et al. Interleukin-6 contributes to chemoresistance in MDA-MB-231 cells via targeting HIF-1α[J]. Journal of Biochemical and Molecular Toxicology, 2018, 32(3): e22039. DOI:10.1002/jbt.22039
[27]
FLORES-ROMERO H, GARCíA-SáEZ A J. The incomplete puzzle of the BCL2 proteins[J]. Cells, 2019, 8(10): 1176. DOI:10.3390/cells8101176
[28]
GAO H, NEPOVIMOVA E, HEGER Z, et al. Role of hypoxia in cellular senescence[J]. Pharmacological Research, 2023, 194: 106841. DOI:10.1016/j.phrs.2023.106841
[29]
KUILMAN T, MICHALOGLOU C, VREDEVELD L C, et al. Oncogene-induced senescence relayed by an interleukin-dependent inflammatory network[J]. Cell, 2008, 133(6): 1019-1031. DOI:10.1016/j.cell.2008.03.039